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茶樹脫水素基因dhn2原核表達(dá)條件優(yōu)化

2011-03-22 02:56房超李葉云常欣丁菲江昌俊
茶業(yè)通報(bào) 2011年4期
關(guān)鍵詞:電泳菌液試管

房超,李葉云,常欣,丁菲,江昌俊

(安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)茶葉生物化學(xué)與生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,安徽合肥230036)

茶樹脫水素基因dhn2原核表達(dá)條件優(yōu)化

房超,李葉云,常欣,丁菲,江昌俊*

(安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)茶葉生物化學(xué)與生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,安徽合肥230036)

為了提高可溶性脫水素dhn2重組蛋白在大腸桿菌的表達(dá)量,研究了不同誘導(dǎo)條件對(duì)其表達(dá)的影響,包括誘導(dǎo)時(shí)間,誘導(dǎo)溫度,IPTG濃度和初始誘導(dǎo)濃度。結(jié)果表明:重組表達(dá)載體pEASY-E1-dhn2在大腸桿菌中最佳誘導(dǎo)時(shí)間為4h,最佳誘導(dǎo)溫度為30℃,最佳IPTG誘導(dǎo)濃度為0.8mmol/L,最佳誘導(dǎo)初始濃度為OD600=0.2。

茶樹;脫水素;條件優(yōu)化

脫水素最早發(fā)現(xiàn)于20世紀(jì)80年代,屬于LEAD-Ⅱ家族,分子量從9到200kD不等[1]。脫水素富含甘氨酸和賴氨酸,具有很高的親水性,能與膜脂結(jié)合阻止水分過多流失,以保護(hù)細(xì)胞免受干旱損傷[2-4]。另外,脫水素還具有蛋白保護(hù)能力,其K片段的雙親水α-螺旋結(jié)構(gòu)可以穩(wěn)定蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu),起到了類似于分子伴侶的作用[5]。柑橘[6]、桃樹[7]和菠菜[8]等植物中發(fā)現(xiàn)脫水素能在低溫下維持乳酸脫氫酶的活性。而茶樹體內(nèi)的脫水素蛋白的功能研究少見報(bào)道。

1 材料和方法

1.1.2 試劑胰蛋白胨,酵母浸出粉,氯霉素,氨芐青霉素購(gòu)自索萊寶公司;異丙基-β-D-硫代半乳糖苷購(gòu)自上海生工;分子質(zhì)量蛋白Marker購(gòu)自北京天根公司。

1.2.1 誘導(dǎo)時(shí)間優(yōu)化

預(yù)培養(yǎng)菌液至OD600=0.5時(shí),分裝5mL菌液至滅菌的試管中,加入終濃度為0.1mmol/L的IPTG,37℃繼續(xù)培養(yǎng)。在0h,2h,3h,4h,6h,8h時(shí)分別取菌液離心收集菌體,用bindingbuffer(50mmol/LPBSBuffer pH7.9,300mmol/LNacl,10mmol/L咪唑)懸浮菌體。冰水浴超聲破碎(功率300W,破碎1s,間隙5s,每次循環(huán)數(shù)50,共5次)后,于4℃,8000r/min離心20min,保存上清。280nm下檢測(cè)上清中蛋白總量,取含等量蛋白質(zhì)的上清處理,參照分子克隆實(shí)驗(yàn)指南[9]方法進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)目的蛋白表達(dá)情況。

1.2.2 誘導(dǎo)溫度優(yōu)化

預(yù)培養(yǎng)菌液至OD600=0.5時(shí),取5mL菌液至滅菌的試管中,加入終濃度為0.1mmol/L的IPTG后,分別轉(zhuǎn)入16℃,25℃,30℃,37℃繼續(xù)培養(yǎng)4h后,按1.2.1方法處理菌液,進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)目的蛋白表達(dá)情況。

1.2.3 IPTG濃度優(yōu)化

預(yù)培養(yǎng)菌液至OD600=0.5時(shí),取5mL菌液至滅菌的試管中,分別向各試管中加入終濃度為0.1mmol/L、0.2mmol/L、0.5mmol/L、0.8mmol/L、1mmol /L、2mmol/L的IPTG,37℃繼續(xù)培養(yǎng)4h后,按1.2.1方法處理菌液,進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)目的蛋白表達(dá)情況。

1.2.4 初始菌液濃度優(yōu)化

預(yù)培養(yǎng)菌液至OD600分別為0.2,0.3,0.5,0.9,1.0時(shí)取5mL菌液分裝至試管中,加入終濃度為0.1mmol/L的IPTG,37℃繼續(xù)培養(yǎng)4h后,按1.2.1方法處理菌液,進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)目的蛋白表達(dá)情況。

2 結(jié)果與分析

圖1 不同誘導(dǎo)時(shí)間誘導(dǎo)的SDS-PAGE分析1:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2:誘導(dǎo)前;3:2h;4:3h;5:4h;6:6h;7:8h

圖2 不同誘導(dǎo)時(shí)間的生物量分析

SDS-PAGE檢測(cè)發(fā)現(xiàn)隨著誘導(dǎo)時(shí)間增加,重組蛋白的表達(dá)量不斷升高,至4h達(dá)到最大,占上清中總蛋白的40.4%,之后表達(dá)量開始減少(圖1,2)。為了使重組蛋白高效表達(dá),選擇4h為最佳的誘導(dǎo)時(shí)間。

SDS-PAGE檢測(cè)結(jié)果如圖3,隨著誘導(dǎo)溫度升高,可溶性蛋白含量增加,30℃時(shí)上清中的目的蛋白含量最高,占總蛋白的54.3%(圖4),之后融合蛋白含量開始下降。所以選用30℃作為最佳誘導(dǎo)溫度。

通過SDS-PAGE檢測(cè)(圖5),菌液的IPTG濃度值在0.1~0.8mmol/L時(shí),誘導(dǎo)蛋白產(chǎn)量逐漸增大,0.8mmol/L時(shí)產(chǎn)量最大,占總蛋白的28%(圖6),之后開始下降。確定0.8mmol/L為IPTG濃度的最適值。

圖3 不同溫度誘導(dǎo)的SDS-PAGE分析1:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2:誘導(dǎo)前;3:25℃;4:16℃;5:30℃;6:37℃

圖4 不同溫度誘導(dǎo)的生物量分析

圖5 不同IPTG濃度誘導(dǎo)的SDS-PAGE分析1:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2:誘導(dǎo)前;3:0.1mmol/L;4:0.2mmol/L;5:0.5mmol/L;6:0.8mmol/L;7:1.0mmol/L;8:2.0mmol/L

圖6 不同IPTG濃度誘導(dǎo)的生物量分析

圖7 不同初始菌液濃度誘導(dǎo)的SDS-PAGE分析1:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2:誘導(dǎo)前;3:OD600=0.2;4:OD600=0.3;5:OD600=0.5;6:OD600=0.9;7:OD600=1

圖8 不同初始菌液OD的生物量分析

如圖7所示,菌液OD600=0.2時(shí),可溶蛋白含量最高,占總蛋白的25.6%,隨后菌液上清中的可溶蛋白量隨著初始誘導(dǎo)濃度的增加而減少,到OD600=1.0時(shí),可溶性蛋白只占總蛋白的12.9%(圖8)。

3 討論

本文研究結(jié)果表明誘導(dǎo)溫度、時(shí)間、IPTG濃度和初始菌液濃度對(duì)可溶性脫水素dhn2重組蛋白的表達(dá)量影響很大,其中以誘導(dǎo)溫度最為明顯??扇苄悦撍厝诤系鞍椎暮繉?duì)之后的蛋白純化影響很大。大量的可溶性蛋白可減少鎳離子親和層析時(shí)的非特異性吸附,因而蛋白純化的效果顯著提高。所以本文選用可溶性蛋白的含量百分?jǐn)?shù)作為選擇原核表達(dá)條件的主要參考標(biāo)準(zhǔn)。經(jīng)過SDS-PAGE電泳和QuantityOne軟件分析,發(fā)現(xiàn)表達(dá)工程菌中的可溶性脫水素蛋白含量在4h表達(dá)量最大,隨后逐漸降低??赡苁请S著時(shí)間的延長(zhǎng),培養(yǎng)基中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)逐漸減少,不能滿足細(xì)菌的生長(zhǎng)需求。誘導(dǎo)溫度對(duì)可溶性融合蛋白的含量影響非常大,低溫下菌體生長(zhǎng)緩慢,表達(dá)的重組蛋白量降低。但溫度過高,蛋白質(zhì)可能會(huì)因非正常折疊而形成包涵體,致使可溶性蛋白含量相應(yīng)減少。低濃度的IPTG對(duì)誘導(dǎo)效果影響不大,高濃度的IPTG對(duì)細(xì)胞的毒性作用使細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢。初始菌液濃度和可溶性脫水素蛋白含量百分比成反比,所以對(duì)高濃度的菌液進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)不利于可溶性蛋白的收集。

[1]Mundy J, Chua N H. 1988. Abscisic acid and water stress induce the expression of a novel rice gene [J]. EMBO, 1988, 7: 2279~2286..

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Q344+.13

A

1006-5768(2011)04-0153-03

2011-05-23

房超(1985-),男,碩士,研究方向?yàn)椴铇渖锛夹g(shù)及種質(zhì)資源。

江昌?。?957-),男,教授,E-mail:jiangcj@ahau.edu.cn

國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No.30871568)和安徽省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(NO.090411014)。

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