蔡自由,李永沖,陳纘光(.廣東食品藥品職業(yè)學(xué)院,廣州市50520;2.中山大學(xué)藥學(xué)院,廣州市50006)
溴吡斯的明(Pyridostigmine bromide)是一種有效的膽堿酯酶抑制藥。文獻(xiàn)報道的有關(guān)溴吡斯的明片含量測定的方法有紫外-可見分光光度法[1]、高效液相色譜(HPLC)法[2~5]等。紫外-可見分光光度法的選擇性相對較低;HPLC法分析成本高、樣品處理較煩瑣,且流動相多為有毒溶劑。采用微流控芯片分析目前國內(nèi)、外尚未見報道。筆者采用微流控芯片非接觸電導(dǎo)檢測法[6]測定溴吡斯的明片中溴吡斯的明的含量,與傳統(tǒng)方法相比具有簡便快速、樣品前處理簡單、重復(fù)性好的特點,為其檢測提供了一種比較方便、準(zhǔn)確、有效的新方法。
PMMA十字通道芯片(大連理工大學(xué)微系統(tǒng)研究中心,微通道上寬30 μm,下寬100 μm,深30 μm,進(jìn)樣通道為十字結(jié)構(gòu),分離通道長44 mm,有效分離長度43 mm);微型壓電陶瓷高壓電源(自制)[7];非接觸電導(dǎo)檢測器(自制)[6];SHZ-D(Ⅲ)型循環(huán)水式真空泵(鞏儀市英峪予華儀器廠);色譜工作站(中山大學(xué)醫(yī)藥儀器與應(yīng)用研究所),數(shù)據(jù)記錄與處理在普通P4微機(jī)上完成。
溴吡斯的明對照品(海南凱健制藥有限公司,純度>99.99%);溴吡斯的明片(上海中西三維制藥有限公司,批號:20090606、20101004、20101005、20101006,規(guī)格:60 mg);2-(N-嗎啉代)乙磺酸(MES)(香港AMRES公司);三(羥甲基)氨基甲烷(Tris)(Farca Chemical Supplies,優(yōu)級純);水為二次蒸餾水,其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
緩沖體系:1 mmol·L-1HAc+1 mmol·L-1NaAc(pH 4.5);分離電壓:1.80 kV;進(jìn)樣時間:10.0 s;不加添加劑;非接觸電導(dǎo)檢測器激發(fā)電壓:60 V(Vp-p),頻率:60 kHz。
2.2.1 對照品溶液的制備 準(zhǔn)確稱取溴吡斯的明對照品0.010 0 g,用二次蒸餾水溶解并定容于10 mL容量瓶中,得1.00 mg·mL-1溴吡斯的明對照品溶液,4℃下保存,臨用時稀釋成各濃度的對照品溶液。
2.2.2 供試品溶液的制備 取溴吡斯的明片20片,精密稱定,研細(xì),精密稱取適量(約相當(dāng)于溴吡斯的明0.012 g),置于200 mL容量瓶中,加水約100 mL,充分振搖使溴吡斯的明溶解,用水稀釋至刻度,搖勻,濾過,得溴吡斯的明片供試品溶液。
制備濃度為 1.0~200 μg·mL-1的系列對照品溶液,按“2.1”項下試驗條件測定。以溴吡斯的明峰面積(Y)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(X,μg·mL-1)為橫坐標(biāo),得線性方程Y=1 887.8X-1 241.3(r=0.999 7)。結(jié)果表明,溴吡斯的明質(zhì)量檢測濃度在10~100 μg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積積分值呈良好線性關(guān)系,檢出限為0.6 μg·mL-1(S/N=3)。
準(zhǔn)確吸取1.00 mg·mL-1溴吡斯的明對照品溶液5.00 mL,加水稀釋100 倍,得50 μg·mL-1溴吡斯的明對照品溶液,重復(fù)進(jìn)樣6次,按“2.1”項下試驗條件測定。結(jié)果,溴吡斯的明峰面積的RSD=1.9%,表明儀器精密度良好。
按“2.2.2”項下方法制備溴吡斯的明供試品(批號:20090606)溶液,4 ℃下保存,按“2.1”項下試驗條件,分別于0、2、4、6、8 h進(jìn)樣測定。結(jié)果,溴吡斯的明峰面積RSD=2.0%,表明測定液在4℃下放置8 h內(nèi)穩(wěn)定。
精密量取溴吡斯的明片供試品(批號:20101005)溶液(59.5 μg·mL-1)5.00 mL 3份,分置于10 mL容量瓶中,分別按供試品含量的80%、100%、120%加入溴吡斯的明對照品溶液(1.00 mg·mL-1)238、298、358 μL,加水稀釋并定容至10.0 mL,分別進(jìn)樣3次,測定結(jié)果見表1。
表1 加樣回收率試驗結(jié)果(n=3)Tab 1 Results of content determination of PBT samples(n=3)
取溴吡斯的明供試品(批號:20090606)溶液和對照品溶液適量,分別進(jìn)樣,記錄電泳圖(見圖1)。結(jié)果,電泳譜圖基本一致,說明供試品輔料不出峰,對本法測定溴吡斯的明不干擾,故未設(shè)陰性對照。
圖1 芯片毛細(xì)管電泳譜圖Fig 1 Capillary electrophotogram of microfluidic chip
取3批供試品(批號:20101004,20101005,20101006)溶液適量,分別進(jìn)樣,記錄電泳圖,根據(jù)“2.3”項下線性方程計算出溴吡斯的明片含溴吡斯的明(C9H13BrN2O2)的標(biāo)示量,結(jié)果見表2。
表2 溴吡斯的明片樣品含量測定結(jié)果Tab 2 Results of recovery test
筆者考察了不同緩沖體系對溴吡斯的明分離檢測的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在MES-Tris、Tris-HC1、Tris-HAc、Tris-H3BO3、檸檬酸-檸檬酸鈉、三乙胺-H3PO4等緩沖溶液中,溴吡斯的明不出峰,其原因可能是上述各種緩沖液的電導(dǎo)與樣品的電導(dǎo)相差不大導(dǎo)致;在MES-His、Tris-His等緩沖溶液中出峰高,但與水峰或雜峰相連;在二乙胺-H3PO4、NaH2PO4-Na2HPO4等緩沖體系中出峰高,但峰形不好,且與雜峰相連;在三乙胺-H3BO3、HAc-NaAc、二乙胺-H3BO3、硼砂-H3BO3等緩沖體系中出峰高,且峰形和分離度都較好。綜合考慮峰形、峰高、分離度、基線和噪聲等因素,選擇了HAc-NaAc緩沖體系,如圖2所示。
圖2 溴吡斯的明在不同緩沖溶液中的芯片毛細(xì)管電泳譜圖Fig 2 Capillary electrophotogram of PB in different buffer solutions
試驗還考察了HAc和NaAc濃度和配比的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著總體濃度的增大,電流也隨著增大,焦耳熱效應(yīng)使基線噪聲也隨之增加;HAc和NaAc配比不同,緩沖體系pH會影響溴吡斯的明出峰的峰形和峰高。在c(HAc)∶c(NaAc)=1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、2∶1、2∶2、2∶3、2∶4、3∶1、3∶2、3∶3、3∶4、4∶1、4∶2、3∶4和4∶4 mmol·L-1的緩沖體系中,都能實現(xiàn)溴吡斯的明分離。綜合考慮峰形、峰高、分離度、基線和噪聲等因素,優(yōu)化選擇1 mmol·L-1HAc+1 mmol·L-1NaAc(pH 4.5)作為緩沖體系。
考察了不同種類的添加劑,如甲醇、乙醇、十二烷基硫酸鈉(SDS)、β-環(huán)糊精(β-CD)等不同加入量對分離檢測(噪聲、拖尾因子、靈敏度和分離度)的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),加入0.1~0.5 mmol·L-1SDS對靈敏度有提高,但遷移時間明顯縮短,樣品峰與雜峰相連,隨著其濃度的增加,離子強(qiáng)度增大,電滲流亦增大,遷移時間變得更小,而且噪聲隨之增大,基線漂移亦隨之明顯。加入體積分?jǐn)?shù)1~10%甲醇和1~10%乙醇,遷移時間隨體積分?jǐn)?shù)增加而增大,檢測靈敏度隨之降低。加入β-CD 0.1~1.0 mmol·L-1對分離檢測無改善。綜合分離檢測效果,優(yōu)化選擇不加添加劑。
試驗考察了分離電壓(1.00 kV~3.00 kV)對分離和檢測的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著分離電壓的升高,樣品出峰時間縮短,電流增大,噪聲也增大。升高分離電壓,遷移時間明顯縮短,有利于加快分析速度,但樣品峰逐漸與雜峰相連,分離度變差,不利于分離;同時,電流增大,焦耳熱亦增大,會導(dǎo)致噪聲大幅度增加。綜合考慮分離度、峰形、噪聲等因素,優(yōu)化選擇分離電壓為1.80 kV。
在其他因素相同的條件下,考察了進(jìn)樣時間對分離和檢測的影響。結(jié)果表明,進(jìn)樣時間在5.0 s~20.0 s范圍,當(dāng)進(jìn)樣時間延長時,峰高與峰面積呈增大趨勢。但當(dāng)進(jìn)樣時間超過15.0 s后,峰高增加的幅度減少,分離效果變差,而且隨著進(jìn)樣時間的增加,一些不利因素如峰展寬和峰形拖尾等影響變得顯著。綜合考慮,優(yōu)化的進(jìn)樣時間為10.0 s。
綜上所述,微流控芯片非接觸電導(dǎo)檢測法測定溴吡斯的明片中溴吡斯的明的含量,方法簡便快速,重復(fù)性好,可用于溴吡斯的明片的質(zhì)量控制。
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[2] 國家藥典委員會編.中華人民共和國藥典(二部)[S].2010年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:1 090.
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