王小娜, 李 正, 王 瑒, 蘭愛平, 吳 文
(1 南方醫(yī)科大學,廣東 廣州510515;2廣東省醫(yī)學科學院,廣東省人民醫(yī)院東病區(qū)內(nèi)分泌科,廣東 廣州510080;3中山大學中山醫(yī)學院生理學教研室,廣東 廣州510080)
雷奈酸鍶(strontium ranelate,Sr)是一種新型的抗骨質(zhì)疏松藥物,具有抑制破骨細胞骨吸收和促進成骨細胞骨形成的雙重作用[1]。臨床試驗表明,它能夠降低絕經(jīng)后婦女發(fā)生椎體骨折和非椎體骨折的風險,同時能預(yù)防骨量減低[2-3]。已有研究表明鍶可通過細胞外信號調(diào)節(jié)激酶1/2(extracellular signal-regulated kinase 1/2,ERK1/2)和p38 絲裂原激活蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)信號通路調(diào)節(jié)成骨細胞特異性轉(zhuǎn)錄因子Runx2 的轉(zhuǎn)錄活性,Runx2 則調(diào)節(jié)下游成骨蛋白,如骨鈣素(osteocalcin,OCN)、骨橋蛋白(osteopontin,OPN)Ⅱ型膠原(collagen type Ⅱ,Col Ⅱ)的表達,促進MSCs 的成骨分化[4-5]。而近年發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化生長因子(transforming growth factor β1,TGF-β1)在大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞(rat bone marrow mesenchymal stem cells,rBMSCs)成骨分化過程中也起著重要作用,具有促進細胞增殖、調(diào)節(jié)細胞分化、促進細胞外基質(zhì)合成和調(diào)節(jié)機體免疫作用[6]。體外實驗表明,TGF-β1可促進骨膜間充質(zhì)干細胞的增殖分化,促進成骨(軟骨)細胞的增殖,刺激Runx2、I 型膠原、骨連結(jié)素(ostocnectin)和OPN 的合成。同時,可抑制破骨細胞的生成以及成熟破骨細胞的活性,從而抑制骨吸收作用,并降低成脂標志物的表達[7]。由此可見,TGF-β1在骨組織代謝過程中起著十分重要的作用。然而,Sr能否通過TGF-β1促進rBMSCs 向成骨細胞分化尚未見報道。為此,本文旨在重點探討:(1)Sr 對rBMSCs TGF-β1表達的影響;(2)TGF-β1是否在Sr 促進rBMSCs 向成骨細胞分化中起作用,以便為Sr 的促成骨作用機制提供實驗資料。
Sr 干混懸劑由Servier 公司提供;4 周齡雄性SD大鼠購自中山大學實驗動物中心;DMEM/F12 培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶購自Gibico;青霉素、鏈霉素購自華北制藥;細胞裂解液、地塞米松、維生素C、β-甘油磷酸鈉、二甲基亞砜(dimethyl sulphoxide,DMSO)購自Sigma;堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所;細胞茜素紅鈣染色試劑盒購自上海杰美基因醫(yī)藥有限公司;兔抗大鼠TGF-β1單克隆抗體和SB431542 購自Bioworld。
2.1 rBMSCs 的分離培養(yǎng)及傳代 取4 周齡,雌雄不限SD 大鼠頸推脫臼處死,75%乙醇浸泡10 min,無菌條件下剪除雙側(cè)股骨和脛骨,剔除其表面肌肉及軟組織,用10 mL 注射器吸取含有10%胎牛血清、1 ×105U/L 青霉素G、100 mg/L 鏈霉素的DMEM/F12 培養(yǎng)液沖洗骨髓腔,直至骨髓腔發(fā)白。移至15 mL離心管,1 000 r/min 離心10 min,制成單細胞懸液,以(1 ~3)×105cells/cm2接種于25 cm2的培養(yǎng)瓶中。在37℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)進行培養(yǎng)。24 h后半量換液,以后每2 ~3 d 換1 次液,至細胞融合至80%時,用成骨誘導(dǎo)液(含10-8地塞米松、0.2 mmol/L維生素C 和10 mmol/L β-甘油磷酸鈉)培養(yǎng)rBMSCs[8]。本實驗原代rBMSCs 培養(yǎng)1 ~2 d 即可見到細胞貼壁,4 ~5 d 觀察到成纖維細胞集落形成,懸浮的淋巴細胞等造血系細胞經(jīng)過換液操作后大部分被去除,9 ~11 d 細胞集落間相互融合成單層,形態(tài)多為梭形成纖維細胞。
2.2 ALP 的測定 取培養(yǎng)第3 ~5 代的細胞,以1 ×108/L 的密度接種于96 孔板,每孔200 μL,每孔設(shè)4個復(fù)孔。檢測時將細胞洗滌后以0.2 % Triton X-100 裂解液及反復(fù)凍融法充分裂解,裂解液經(jīng)低溫離心機12 000 ×g 離心10 min,取上清50 μL ,按試劑盒說明書進行操作,于酶標儀520 nm 波長處測定ALP 值。
2.3 細胞茜素紅鈣結(jié)節(jié)染色 取培養(yǎng)第3 ~5 代細胞,調(diào)整細胞濃度為1 × 108/L ,接種于6 孔板,6 孔板底部預(yù)先置入消毒過的載玻片,給予相應(yīng)的處理因素后第21 d 按照細胞茜素紅鈣結(jié)節(jié)染色試劑盒說明書對樣本進行固定、染色及澄清處理,倒置顯微鏡下觀察鈣結(jié)節(jié)染色情況,每組取4 個樣本,每樣本隨機取1 個視野(×100),比較各組間的差異。
2.4 Western blotting 檢測TGF-β1表達及半定量分析 收集的細胞用冰冷的PBS 洗滌細胞2 次,加適量細胞裂解液,在冰上將細胞迅速刮下,將裂解產(chǎn)物移至EP 管,10 000 r/min 離心10 min,吸出上清液體,用BCA 方法進行蛋白質(zhì)濃度測定。將提取的蛋白質(zhì)樣品加入等體積上樣緩沖液,100 ℃煮5 min,在15%聚丙烯酰氨凝膠電泳,電泳后將膠上所需蛋白條帶轉(zhuǎn)印至PVDF 膜。PVDF 膜用5%脫脂奶粉室溫下封閉90 min,加入1∶1 000 稀釋的抗TGF-β1的Ⅰ抗,置于4 ℃孵育過夜。用含0.1%吐溫-20 的TBST 緩沖液(TBS/T)洗膜3 次,每次5 min。然后加入辣根過氧化物酶標記的Ⅱ抗,以1∶2 500 稀釋,室溫孵育90 min,TBS/T 洗膜3 次,每次5 min。最后采用增強化學發(fā)光法(ECL)顯影,掃描檢測蛋白表達狀況。用Smartview 軟件分析目標條帶灰度值,與內(nèi)參照actin 條帶灰度值校正后進行半定量分析。
圖1 顯示,應(yīng)用0. 1 ~7 mmol/L Sr 分別處理rBMSC 7 d,均能明顯增加ALP 活性,與對照組比較,差異均有統(tǒng)計學意義(均P <0.05)。其中3 mmol/L Sr 對ALP 活性的促進作用最大。
Figure 1. Effects of strontium ranelate (Sr)at different concentrations on activity of ALP in BMSCs of rats. #P <0.05,##P <0.01 vs control.圖1 不同濃度Sr 對rBMSCs ALP 活性的影響
圖2 顯示,3 mmol/L Sr 處理rBMSCs 21 d,可明顯地增加鈣結(jié)節(jié)的數(shù)量及面積。
圖3A 顯示,應(yīng)用0.1 ~5 mmol/L Sr 處理rBMSCs 7 d 均可明顯上調(diào)TGF-β1表達,其中1 mmol/L Sr 對TGF-β1表達的上調(diào)作用最大,TGF-β1表達是對照組的3.1 倍(P <0.01)。但是,7 mmol/L Sr對TGF-β1表達無明顯作用(P >0.05)。圖3B 顯示,在應(yīng)用1 mmol/L Sr 處理rBMSCs 1 ~7 d,Sr 呈時間依賴性地上調(diào)TGF-β1表達,其中處理細胞7 d 時,TGF-β1的表達水平達到最高峰。然而,1 mmol/L Sr 處理rBMSCs 10 d 時對TGF-β1表達無明顯影響。
Figure 3. Effects of Sr on expression of TGF-β1 in BMSCs.A:rBMSCs were treated with Sr at 0.1 to 7 mmol/L for 7 d;B:rBMSCs were treated with 1mmol/L Sr for 1 to 7 d. ±s.n=6. #P <0.05,##P <0.01 vs control.圖3 Sr 對rBMSCs TGF-β1 表達的影響
圖4 顯示,應(yīng)用1 mmol/L Sr 處理rBMSCs 7 d 可明顯上調(diào)TGF-β1的表達(P <0.01);在Sr 處理細胞前2 h,應(yīng)用10 μmol/L SB431542(TGF-β1抑制劑)預(yù)處理細胞可顯著地阻斷Sr 對TGF-β1表達的上調(diào)作用;10 μmol/L SB431542 或DMSO 對TGF-β1的基礎(chǔ)表達水平無明顯影響。
圖5 顯示,應(yīng)用1 mmol/L Sr 處理rBMSCs 7 d 可明顯增加ALP 活性,與對照組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05);在Sr 處理細胞前2 h,用10 μmol/L SB431542(TGF-β1抑制劑)預(yù)處理細胞可明顯地抑制Sr 對ALP 活性的促進作用,與Sr 處理組比較,差異顯著(P <0.05)。10 μmol/L SB431542 或DMSO對ALP 活性無明顯的作用。
Figure 4. SB431542(inhibitor of TGF-β1,10 μmol/L)preconditioning inhibited Sr-induced overexpression of TGF-β1 in rBMSCs.Sr:rBMSCs were treated with 1 mmol/L Sr for 7 d;Sr+SB431542:rBMSCs were pretreated with SB431542 for 2 h,followed by the treatment with Sr(1 mmol/L)for 7 d;SB431542:rBMSCs were treated with SB431542 for 2 h and then with DMSO for 7 d;DMSO:rBMSCs were cultured with DMSO for 7 d. ±s.n=5. ##P <0.01 vs control;**P <0.01 vs Sr.圖4 TGF-β1 抑制劑阻斷Sr 對rBMSCs TGF-β1 表達的上調(diào)作用
Figure 5. Preconditioning with SB431542(10 μmol/L)inhibited Sr-induced activity enhancement of ALP in BMSCs.Sr:rBMSCs were treated with 1 mmol/L Sr for 7 d;Sr+SB431542:rBMSCs were pretreated with SB431542 for 2 h,followed by the treatment with Sr(1 mmol/L)for 7 d;SB431542: rBMSCs were treated with SB431542 for 2 h and then with vechicle for 7 d;DMSO:rBMSCs were cultured by DMSO for 7 d. ±s.n=5. #P <0.05 vs control;* P <0.05 vs Sr.圖5 TGF-β1 抑制劑阻斷Sr 對ALP 活性的增強作用
圖6 顯示,1 mmol/L Sr 處理rBMSCs 21 d 可顯著的增加鈣結(jié)節(jié)的數(shù)量;在Sr 處理細胞前2 h,應(yīng)用TGF-β1抑制劑SB431542(10 μmol/L)預(yù)處理細胞能明顯地抑制Sr 對鈣結(jié)節(jié)形成的促進作用;10 μmol/L SB431542 或DMSO 本身對鈣結(jié)節(jié)數(shù)量無明顯影響。
Figure 6. Preconditioning with SB431542(10 μmol/L)inhibited Sr-induced mineralization in BMSCs(alizarin red staining,×100).A:control;B:rBMSCs were treated with 1 mmol/L Sr for 21 d;C:rBMSCs were pretreated with SB431542 for 2 h,followed by the treatment with Sr(1 mmol/L);D:rBMSCs were treated with SB431542 for 2 h and then with DMSO for 21 d;D:rBMSCs were cultured by DMSO for 21 d.圖6 TGF-β1 抑制劑(SB431542)對鈣結(jié)節(jié)形成的影響
ALP 是細胞成骨分化的一個早期指標,是調(diào)節(jié)細胞礦化的重要酶之一。本研究采用ALP 及鈣結(jié)節(jié)形成作為判斷rBMSCs 向成骨細胞分化的指標。研究結(jié)果表明,新型的抗骨質(zhì)疏松劑Sr 能明顯的增加rBMSCs 的ALP 活性及鈣結(jié)節(jié)數(shù)量,提示Sr 具有促進rBMSCs 向成骨細胞分化的作用,這與文獻報道[1,4-5,9-11]的結(jié)果一致。TGF-β1屬于轉(zhuǎn)化生長因子β(TGF-β)超家族成員之一,它是一個分泌型多肽信號分子,生物活性極其廣泛,能調(diào)控多種間充質(zhì)來源的細胞增殖和定向分化、尤其是在細胞成骨分化、骨基質(zhì)合成和骨重建中起著重要的作用,是調(diào)控rBMSCs 的首選生長因子之一[10,12]。TGF-β1也是人類骨骼中含量最豐富的生長因子,通過影響rBMSCs 向成骨細胞方向的轉(zhuǎn)化而影響正常及病理下的骨骼形態(tài)[13]。已有研究表明,TGF-β1可能在鍶促進rBMSCs 向成骨細胞分化的過程中起著重要的作用[9]。但是,TGF-β1在Sr促進rBMSCs 向成骨細胞分化中的作用如何迄今未見報道。根據(jù)本研究得出的結(jié)果,我們推測TGF-β1可能參與Sr 促進rBMSCs 向成骨細胞分化的過程。本研究在應(yīng)用Sr 處理rBMSCs 前,用TGF-β1特異性抑制劑SB431542 預(yù)處理細胞,結(jié)果表明,TGF-β1抑制劑不僅能阻斷Sr 對rBMSCs TGF-β1表達的上調(diào)作用,而且能抑制Sr 對ALP 活性及鈣結(jié)節(jié)形成的促進作用,提示通過上調(diào)TGF-β1表達可能是Sr 促進rBMSCs 向成骨細胞分化的重要作用機制之一。
然而,對于TGF-β1在調(diào)節(jié)成骨中的作用有不同的意見。Shingo 等[14]認為,TGF-β1對于骨形成具有促進和抑制的雙重作用[11]。TGF-β1也能促進rBMSCs 的遷移,具有促進骨形成和骨吸收的雙重作用[15]。但是,Zhao 等[7]卻觀察到TGF-β1可促進鼠類BMSCs 的成骨分化,表現(xiàn)在它能增加Runx2、OPN 及Col I mRNA 表達及ALP 活性。因此,有關(guān)TGF-β1在促進rBMSCs 向成骨細胞分化中的作用仍需作進一步的探討。
綜上所述,本研究證實Sr 可促進rBMSCs 向成骨細胞分化,此作用可能與其上調(diào)TGF-β1表達有關(guān)。本文為深入闡明Sr 的促成骨機制提供了實驗依據(jù)。
[1] Bonnelye E,Chabadel A,Saltel F,et al. Dual effect of strontium ranelate:stimulation of osteoblast differentiation and inhibition of osteoclast formation and resorption in vitro[J].Bone,2008,42(1):129-138.
[2] Seeman E,Vellas B,Benhamou C,et al.Strontium ranelate reduces the risk of vertebral and nonvertebral fractures in women eighty years of age and older[J]. J Bone Miner Res,2006,21(7):1113-1120.
[3] Caverzasio J,Thouverey C. Activation of FGF receptors is a new mechanism by which strontium ranelate induces osteoblastic cell growth[J]. Cell Physiol Biochem,2011,27(3-4):243-250.
[4] 廖清船,肖洲生,秦艷芳,等.p44/42 和p38 MAPK 在骨髓間充質(zhì)干細胞向成骨細胞分化中發(fā)揮不同的功能[J].中國骨質(zhì)疏松雜志,2004,10(3):267-271.
[5] Peng S,Zhou G,Luk KD,et al.Strontium promotes osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells through the ras/MAPK signaling pathway[J]. Cell Physiol Biochem,2009,23(1-3):165-174.
[6] Tachi K,Takami M,Sato H,et al. Enhancement of bone morphogenetic protein-2-induced ectopic bone formation by transforming growth factor-β1[J]. Tissue Eng Part A,2011,17(5-6):597-606.
[7] Zhao L,Jiang S,Hantash BM,et al. Transforming growth factor β1induces osteogenic differentiation of murine bone marrow stromal Cells[J]. Tissue Eng Part A,2010,16(2):725-733.
[8] 張麗蓉,夏文杰,項 鵬,等.體外定向誘導(dǎo)人骨髓間充質(zhì)干細胞分化為成骨細胞的研究[J],中國病理生理雜志,2002,18(7):745-748.
[9] Lee KS,Kim HJ,Li QL,et al.Runx2 is a common target of transforming growth factor β1and bone morphogenetic protein 2,and cooperation between Runx2 and Smad5 induces osteoblast-specific gene expression in the pluripotent mesenchymal precursor cell line C2C12[J]. Mol Cell Biol,2000,20(23):8783-8792.
[10] Kim MK,Niyibizic. Znteraction of TGF-β1and rhBMP2 on human bone marrow stromal cells cultured in collagen gel matrix[J].Yonsei Med J,2001,42(3):338-344.
[11] Sila-Asna M,Bunyaratvej A,Maeda S,et al. Osteoblast differentiation and bone formation gene expression in strontium-inducing bone marrow mesenchymal stem cell[J].Kobe J Med Sci,2007,53(1-2):25-35.
[12] 潘海濤,鄭啟新,郭曉冬,等.兔骨髓基質(zhì)干細胞的分離培養(yǎng)和鑒定及轉(zhuǎn)化生長因子β1的基因瞬時轉(zhuǎn)染研究[J].醫(yī)學研究生通報,2006,19(6):508-511.
[13] Kanaan RA,Kanaan LA. Transforming growth factor beta1,bone connection[J]. Med Sci Monit,2006,12(8):RA164-RA169.
[14] Shingo Maeda,Makoto Hayashi,Setsuro Komiya,et al.Endogenous TGF-β1signaling supresses maturation of osteoblastic mesenchymal cells[J].EMBO J,2004,23(3):552-563.
[15] Tang Y,Wu X,Lei W. TGF-β1-induced migration of bone mesenchymal stem cells couples bone resorption and formation[J].Nat Med,2009,15(7):757-765.