侯小濤,趙超超,鄧家剛,*
(1.廣西醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,廣西南寧530021;2.廣西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,廣西南寧 530001;3.廣西中藥藥效研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西南寧 530001)
甘蔗葉多糖除蛋白工藝研究
侯小濤1,2,3,趙超超2,鄧家剛1,2,3,*
(1.廣西醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,廣西南寧530021;2.廣西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,廣西南寧 530001;3.廣西中藥藥效研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西南寧 530001)
目的:篩選甘蔗葉多糖除蛋白的最佳工藝。方法:以蛋白質(zhì)清除率、多糖保留率為指標(biāo),比較Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑法、Sevage法、三氯乙酸法(TCA法)、三氯乙酸-Sevage法清除甘蔗葉多糖中蛋白質(zhì)的效果,并通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化出最佳工藝。結(jié)果:Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑能有效純化甘蔗葉多糖,且除蛋白最佳工藝為澄清劑用量為6%/3%(B/A),溫度為30℃,多糖溶液濃度為3%,時(shí)間為1h/1h。結(jié)論:Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑能有效清除甘蔗葉多糖中的蛋白質(zhì),且澄清效果與溫度和澄清劑用量有關(guān)。
甘蔗葉,天然澄清劑,多糖,除蛋白
Abstract:Objective:To select deproteinization-technology of polysaccharides in sugarcane leaf.Methods:These different ways to removing protein from polysaccharides in sugarcane leaf contain natural clarifying agents,Sevage method,TCA and TCA-Sevage method,and that were compared with the clearance rate of protein and the polysaccharide retention as indexes,and the technology was optimized by orthogonal experiment.Results:TypeⅡZTC1+1 natural clarifying agents could effectively purify sugarcane leaf polysaccharides,and the optimum condition of deproteinization with typeⅡZTC1+1 natural clarifying agents were as follows:the adding amount of natural clarifying agents(i.e B and A) were 6%and 3%respectively,the clarifying temperature was 30℃,concentration of polysaccharides was 3%(m/v),the clarifying time(i.e B and A) were 1h and 1h respectively.Conclusion:TypeⅡZTC1+1 natural clarifying agents could effectively remove protein of sugarcane leaf polysaccharides,which was relatived to the amount of clarifying agents and temprature.
Key words:sugarcane leaf;natural clarifying agents;polysaccharides;deproteinization
甘蔗葉是禾本科植物甘蔗Saccharum sinensis Roxb.的葉。甘蔗廣泛種植于熱帶、亞熱帶地區(qū),全世界有100多個(gè)國(guó)家種植甘蔗,中國(guó)蔗區(qū)主要分布在廣西、廣東等地。甘蔗葉作為甘蔗豐收后的副產(chǎn)品,每年產(chǎn)量頗高,卻未得到充分利用,除少部分作為動(dòng)物飼料外,大部分被蔗農(nóng)就地焚燒,造成資源浪費(fèi)、污染環(huán)境。另外,中藥資源面臨著嚴(yán)峻的可持續(xù)發(fā)展問(wèn)題,對(duì)這樣既有藥用價(jià)值同時(shí)又是農(nóng)作物的資源進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)其新用途,對(duì)于資源保護(hù)和開發(fā)具有重要意義。據(jù)報(bào)道,甘蔗葉含有大量葉綠素、氨基酸、多糖和黃酮等物質(zhì),其嫩葉和蔗梢含過(guò)氧化物酶等物質(zhì),具有抗氧化、抗菌、降血糖、抗腫瘤[1-6]等藥理作用。甘蔗葉多糖為甘蔗葉的有效成分,但世界范圍內(nèi)對(duì)其研究極少,僅見(jiàn)一般提取工藝研究的報(bào)道[2]。目前多糖的提取多采用水提醇沉法,水提液經(jīng)醇沉處理時(shí),沉淀中除含有多糖類物質(zhì),同時(shí)還含蛋白質(zhì)等雜質(zhì),影響多糖的純度,因此有待進(jìn)一步純化,除去多糖中蛋白質(zhì)等雜質(zhì)。Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑是從食品中提取的天然高分子物質(zhì),是替代聚丙烯酰胺、聚合鋁等人工合成絮凝劑的理想品種。它主要用于除去鞣質(zhì)、蛋白質(zhì)、樹膠、蠟質(zhì)等膠體不穩(wěn)定成分,而中藥有效成分如黃酮、生物堿、皂苷類、苷類、萜類、多糖、氨基酸、多肽、礦物質(zhì)等小分子物質(zhì)不受影響[7]。本實(shí)驗(yàn)以多糖保留率和蛋白質(zhì)清除率為指標(biāo),比較研究天然澄清劑法、Sevage法、三氯乙酸法(TCA法)、三氯乙酸-Sevage法等4種不同除蛋白方法,并采用正交實(shí)驗(yàn)法優(yōu)選Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑除蛋白的工藝,期望制備出高純度的甘蔗葉多糖,為后續(xù)研究提供基礎(chǔ)。
甘蔗葉(新臺(tái)糖22號(hào)) 采集于廣西甘蔗研究所,經(jīng)該所許樹寧高級(jí)農(nóng)藝師鑒定為禾本科甘蔗屬植物甘蔗(Saccharum sinensis Roxb.)的葉;Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑 由A劑和B劑組成,從食品中提取的天然高分子物質(zhì),天津振天成科技有限公司;D-無(wú)水葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品 中國(guó)藥品生物制品檢定所,批號(hào):110833-200503;牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品 Sigma;考馬斯亮藍(lán)G-250 上海源葉生物科技有限公司;苯酚、濃硫酸、三氯乙酸(TCA)、氯仿、正丁醇 均為國(guó)產(chǎn)分析純。
UV-160A紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 日本島津公司;SartoriusBP211D電子天平 北京賽多利斯天平有限公司;HHS4數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市醫(yī)療儀器廠;LDZ4-1.2離心機(jī) 北京醫(yī)用離心機(jī)廠;B3500SMT超聲波清洗器 必能信超聲上海有限公司。
1.2.1 甘蔗葉多糖的制備 取甘蔗葉粗粉335kg,置于1t提取罐中,加30倍量純水于100℃浸提3次,每次2h,過(guò)濾,合并濾液,并濃縮至飽和狀態(tài),加無(wú)水乙醇至濃度達(dá)到80%,靜置12h,離心,沉淀依次用無(wú)水乙醇、丙酮、乙醚反復(fù)洗滌數(shù)次,抽濾,真空干燥后得甘蔗葉粗多糖粉末。
1.2.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 稱取干燥至恒重的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品25.30mg,置于25mL容量瓶中,加蒸餾水溶解、稀釋至刻度,配制成質(zhì)量濃度為1.012mg/mL的母液。精密吸取母液5.0mL置100mL容量瓶中,加蒸餾水稀釋至刻度作為貯備液,吸取貯備液2.0mL,苯酚-硫酸法[8]顯色,在400~800nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)掃描光譜,確定λmax。然后精密吸取貯備液1.0、1.2、1.4、1.6、1.8、2.0mL分別置于具塞試管中,加蒸餾水補(bǔ)至2.0mL,苯酚-硫酸法顯色,另以蒸餾水2.0mL同上操作作為空白對(duì)照,于λmax處測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。
1.2.3 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 稱取干燥至恒重的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品12.44mg,置100mL容量瓶中,加蒸餾水溶解,稀釋至刻度,配制成質(zhì)量濃度為124.4μg/mL的貯備液。吸取貯備液1.0mL,根據(jù)考馬斯亮藍(lán)G-250法[9](考馬斯亮藍(lán)試劑配制參照李如亮[10]的方法),在400~800nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)掃描光譜,確定λmax。然后吸取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL貯備液,加蒸餾水補(bǔ)至1.0mL,加入考馬斯亮藍(lán)G-250試劑5mL,搖勻,以蒸餾水為空白,10min后于λmax處測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。
1.2.4 色素表征吸收[11]取甘蔗葉多糖配成適宜濃度的溶液,在400~800nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行掃描,確定色素表征吸收。
1.2.5 除蛋白方法比較
1.2.5.1 多糖溶液的配制 稱取甘蔗葉粗多糖10g,加入200mL蒸餾水超聲溶解,離心,配制質(zhì)量濃度為5%的甘蔗葉多糖溶液,備用。
1.2.5.2 澄清劑的配制 根據(jù)Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑說(shuō)明書所示,配制方法如下:
A組分:稱取澄清劑A組分1g,用10mL蒸餾水溶解,并攪拌成糊狀,再加入剩余90mL蒸餾水,不斷攪拌,使其充分溶解,溶脹24h,配成1%黏膠液(用前搖勻)100mL,即得。
B組分:先配制1%醋酸(v/v),稱取澄清劑B組分1g,用10mL 1%醋酸溶解,并攪拌成糊狀,加入余下的90mL 1%醋酸,充分?jǐn)嚢枋蛊淙芙猓苊?4h,配成1%黏膠液(用前搖勻)100mL,即得。
1.2.5.3 Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑法 取5%甘蔗葉多糖溶液,按澄清劑用量(B/A)為8%/4%,在60℃下,保溫2h/1h(每隔半小時(shí)攪勻一次),過(guò)濾,定容,分別測(cè)定多糖、蛋白質(zhì)含量。
1.2.5.4 TCA法 取5%甘蔗葉多糖溶液,按體積比為1∶1的比例,加入10%三氯乙酸溶液,充分振搖,置于4℃冰箱,靜置2h,離心,上清液用5%NaOH中和,定容,分別測(cè)定多糖、蛋白質(zhì)含量。
1.2.5.5 Sevage法 取5%甘蔗葉多糖溶液,按照多糖溶液∶氯仿∶正丁醇=25∶5∶1(v∶v∶v)的比例,先后加入氯仿、正丁醇,劇烈振搖15min,待其靜置分層,得上層水層,同上操作,重復(fù)6次實(shí)驗(yàn),離心,取上清液定容,分別測(cè)定多糖、蛋白質(zhì)含量。
1.2.5.6 TCA Sevage法 取5%甘蔗葉多糖溶液,先按照體積比為1∶1的比例,加入10%三氯乙酸溶液,充分振搖,置于4℃冰箱,靜置2h,離心,上清液用5%NaOH中和,然后按多糖溶液∶氯仿∶正丁醇=25∶5∶1(v∶v∶v)的比例,先后加入氯仿、正丁醇,劇烈振搖15min,離心,取上清液定容,分別測(cè)定多糖、蛋白質(zhì)含量。
1.2.6 單因素實(shí)驗(yàn)
1.2.6.1 澄清劑用量對(duì)除蛋白效果的影響 固定多糖溶液濃度為5%,溫度為60℃,時(shí)間2/1(B/A,h/h),分別加入澄清劑,用量(B/A)為4%/2%、6%/3%、8%/4%、10%/5%,進(jìn)行澄清處理。
1.2.6.2 溫度對(duì)除蛋白效果的影響 固定多糖溶液濃度為5%,澄清劑用量(B/A)為6%/3%,時(shí)間2/1(B/A,h/h),分別在溫度為20、40、60、80℃條件下進(jìn)行澄清處理。
1.2.6.3 多糖濃度對(duì)除蛋白效果的影響 固定溫度為40℃,澄清劑用量(B/A)為6%/3%,時(shí)間2/1(B/A,h/h),分別取濃度為2%、4%、6%、8%、10%的甘蔗葉多糖溶液進(jìn)行澄清處理。
1.2.6.4 時(shí)間對(duì)除蛋白效果的影響 固定多糖濃度為2%,澄清劑用量(B/A)為6%/3%,溫度為40℃,在保溫時(shí)間分別為0.5/0.5、0.5/1、1/1、2/1、2/2(B/A,h/h)的條件下進(jìn)行澄清處理。
1.2.7 樣品溶液測(cè)定 精密吸取除蛋白前后的多糖溶液,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線下方法分別測(cè)定多糖、蛋白質(zhì)含量和色素A400。
1.2.8 指標(biāo)的確定 以多糖保留率、蛋白質(zhì)清除率和脫色率為考察指標(biāo),兼顧多糖保留率(權(quán)值為0.4)、蛋白質(zhì)清除率(權(quán)值為0.5)和脫色率(權(quán)值為0.1),采用加權(quán)法進(jìn)行綜合評(píng)分。多糖保留率(%)=M2/M1×100;蛋白質(zhì)清除率(%)=(N1-N2)/N1×100;脫色率(%)=(A1-A2)/A1×100;綜合評(píng)分=0.1×脫色率+0.4×多糖保留率+0.5×蛋白質(zhì)清除率(式中,M1、M2分別為處理前后的多糖含量;N1、N2分別為處理前后的蛋白質(zhì)的含量;A1、A2分別為處理前后色素A400)。
1.2.9 正交實(shí)驗(yàn)因素水平表 選擇澄清劑用量、溫度、多糖濃度、時(shí)間四個(gè)因素,按L9(34)安排正交實(shí)驗(yàn),因素水平表見(jiàn)表1。
表1 因素水平表Table 1 Factors and levels table
為考察工藝的穩(wěn)定性,配制質(zhì)量濃度為3%的多糖溶液三份,根據(jù)最佳工藝條件處理后,分別測(cè)定的多糖、蛋白質(zhì)含量和色素表征吸收,計(jì)算出多糖保留率、蛋白質(zhì)清除率、脫色率及RSD。
吸取葡萄糖貯備液,顯色后進(jìn)行光譜掃描,如圖1所示,確定λmax為487nm。以葡萄糖濃度C(μg/mL)為橫坐標(biāo),吸光度A487為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程:A487=0.0133C+0.0136,r=0.9956,表明葡萄糖濃度在25.30~50.60μg/mL范圍內(nèi),具有良好的線性關(guān)系(見(jiàn)圖2)。
圖1 葡萄糖掃描光譜圖Fig.1 Glucose by visible wavelength
圖2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 The standard curve of glucose
吸取牛血清白蛋白貯備液,顯色后進(jìn)行光譜掃描,如圖3所示,確定λmax為593nm。以牛血清白蛋白濃度C(μg/mL)為橫坐標(biāo),吸光度A593為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程:A=0.0055C+0.0396,r=0.9992,表明牛血清白蛋白濃度在24.88~124.4μg/mL范圍內(nèi),呈良好的線性關(guān)系(見(jiàn)圖4)。
圖3 蛋白質(zhì)掃描光譜圖Fig.3 Protein by visible wavelength
圖4 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.4 The standard curve of protein
將多糖溶液在400~800nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行掃描,如圖5所示,由此選擇400nm處吸光值(A400)表征色素含量。
圖5 多糖溶液掃描光譜圖Fig.5 Polysaccharides solution by visible wavelength
如表2所示,甘蔗葉多糖采用Sevage法除蛋白,反復(fù)處理6次后多糖損失相對(duì)較少,蛋白質(zhì)的清除率較高,該法條件溫和,在避免多糖降解方面有較好效果,但該法效率低,且需消耗大量有毒有機(jī)試劑,易殘留;三氯乙酸法除蛋白效果明顯,與Sevage法相比,多糖損失相差不大,但由于其酸性較強(qiáng),容易導(dǎo)致多糖的降解;天然澄清劑在除蛋白過(guò)程中優(yōu)勢(shì)明顯,多糖損失少,蛋白質(zhì)清除率相對(duì)較高,且經(jīng)過(guò)澄清處理后的多糖溶液具有顏色淺、易過(guò)濾、無(wú)殘留的特點(diǎn)。故本實(shí)驗(yàn)選用Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑用于去除甘蔗葉多糖中蛋白質(zhì),并通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化其除蛋白工藝。
表2 除蛋白效果比較(±s,n=3)Table 2 The comparison of deproteinization effec(t±s,n=3)
表2 除蛋白效果比較(±s,n=3)Table 2 The comparison of deproteinization effec(t±s,n=3)
指標(biāo) Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑法 TCA法 Sevage法 TCA-Sevage法除蛋白次數(shù) 1 1 6 1多糖保留率(%) 95.77±0.11 71.80±0.05 77.27±0.15 92.06±0.14蛋白質(zhì)清除率(%) 56.92±0.15 59.01±0.11 43.06±0.11 17.67±0.12
2.5.1 澄清劑用量對(duì)除蛋白效果的影響 如圖6所示,隨著澄清劑用量的增加,除蛋白效果呈現(xiàn)先升后降的趨勢(shì),說(shuō)明澄清劑用量并非越大越好,可能是澄清劑體系內(nèi)高分子與蛋白質(zhì)結(jié)合已經(jīng)達(dá)到飽和,剩余澄清劑產(chǎn)生的絮凝物吸附作用使多糖損失增加。
圖6 澄清劑用量對(duì)除蛋白效果的影響Fig.6 Effect of the amount of clarifying agents on deproteinization effect
2.5.2 溫度對(duì)除蛋白效果的影響 如圖7所示,隨著溫度的升高,澄清劑除蛋白效果趨勢(shì)先升后降,可能是因?yàn)闇囟鹊?,澄清劑體系內(nèi)粒子熱運(yùn)動(dòng)不劇烈,絮凝作用不充分,效果差;溫度過(guò)高,澄清劑體系內(nèi)高分子活性受限制,影響絮凝作用。
圖7 溫度對(duì)除蛋白效果的影響Fig.7 Effect of temperature on deproteinization effect
2.5.3 多糖濃度對(duì)除蛋白效果的影響 從圖8可以看出,隨著多糖濃度增加,澄清劑除蛋白效果呈現(xiàn)下降的趨勢(shì),可能是由于多糖濃度過(guò)大,使得澄清劑在藥液中分散不均勻,且濃的藥液在澄清時(shí)所產(chǎn)生的大量絮凝物可能會(huì)夾雜目標(biāo)成分,從而影響有效成分含量。
2.5.4 時(shí)間對(duì)除蛋白效果的影響 從圖9可以得知,隨著澄清時(shí)間延長(zhǎng),綜合評(píng)分并沒(méi)有顯著上升,且基本保持在75%以上,待2h后有所下降,可能是由于澄清劑產(chǎn)生的絮凝物長(zhǎng)時(shí)間吸附作用,影響澄清效果。根據(jù)澄清劑說(shuō)明書所示,加入澄清劑后保溫1~2h即可。
圖8 多糖濃度對(duì)除蛋白效果的影響Fig.8 Effect of polysaccharides concentration on deproteinization effect
圖9 時(shí)間對(duì)除蛋白效果的影響Fig.9 Effect of time on deproteinization effect
由表3可知,各因素對(duì)脫色率和多糖保留率的影響順序?yàn)椋築>A>C>D;對(duì)蛋白質(zhì)清除率的影響順序?yàn)椋築>C>A>D。
由表4可知,以多糖保留率為指標(biāo),溫度對(duì)多糖保留率有顯著影響,澄清劑用量有一定影響,其他因素幾乎沒(méi)有影響;以脫色率和蛋白質(zhì)清除率為指標(biāo),溫度對(duì)溶液澄清度和蛋白質(zhì)清除率都有顯著影響,其他因素幾乎沒(méi)有影響。溫度是具有顯著影響的因素,故選擇反應(yīng)溫度為30℃;澄清劑用量是有一定影響的因素,根據(jù)直觀分析結(jié)果,結(jié)合本實(shí)驗(yàn)研究目的,選擇澄清劑用量為6%/3%;多糖濃度和時(shí)間是幾乎沒(méi)有影響的因素,以綜合評(píng)分為指標(biāo),根據(jù)極差分析結(jié)果,選擇多糖濃度為3%;從節(jié)約能源、提高效率的角度出發(fā),選擇處理時(shí)間為1/1(h/h);故篩選出最佳工藝:配制質(zhì)量濃度為3%的多糖溶液,在溫度為30℃、澄清劑用量為6%/3%的條件下,加入B組分加熱1h,然后加入A組分加熱1h。
驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表5所示,在該工藝條件下,各指標(biāo)RSD均小于3%,說(shuō)明該工藝穩(wěn)定、可行。
比較幾種脫蛋白方法可知,Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑清除蛋白效果最佳,且多糖損失少、色澤淺,蛋白質(zhì)清除率較高,且經(jīng)過(guò)處理后的多糖溶液清澈透亮、色澤淺、易過(guò)濾、無(wú)異味。采用正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化除蛋白工藝為澄清劑用量為6%/3%(B/A),溫度為30℃,多糖溶液濃度為3%,時(shí)間為1/1(h/h)。在該工藝條件下,多糖保留率平均為88.38%,蛋白質(zhì)清除率平均為71.21%,脫色率平均為58.30%,綜合評(píng)分平均為76.79%,RSD均小于3%,說(shuō)明該工藝穩(wěn)定、可行。可見(jiàn),Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑能有效純化甘蔗葉多糖。
表3 L(934)正交試驗(yàn)結(jié)果(±s,n=3)Table 3Results of L(934)orthogonal test(±s,n=3)
表3 L(934)正交試驗(yàn)結(jié)果(±s,n=3)Table 3Results of L(934)orthogonal test(±s,n=3)
實(shí)驗(yàn)號(hào) A B C D 脫色率(%) 多糖保留率(%) 蛋白質(zhì)清除率(%) 綜合評(píng)分(%)1 1 1 1 1 51.33±0.02 90.77±0.18 61.52±0.09 72.20±0.09 2 1 2 2 2 53.01±0.04 84.88±0.15 66.91±0.19 72.71±0.04 3 1 3 3 3 49.34±0.02 89.29±0.12 59.82±0.03 70.56±0.06 4 3 57.34±0.02 89.11±0.13 68.81±0.04 75.78±0.04 5 2 2 3 1 54.98±0.02 84.53±0.14 65.86±0.06 72.24±0.09 2 1 2 6 2 59.34±0.08 88.12±0.15 69.45±0.08 75.91±0.09 7 3 1 3 2 53.30±0.02 83.63±0.13 62.56±0.17 70.06±0.05 8 3 2 1 3 65.54±0.07 82.65±0.12 66.98±0.10 73.10±0.05 2 3 1 9 3 3 2 1 61.75±0.02 81.41±0.16 70.92±0.15 74.20±0.09 K1 153.68 284.88 176.21 168.06 K2 171.66 173.53 172.10 165.65 K3 180.59 170.43 157.62 172.22 R 26.91 114.45 18.59 6.57 K′1 264.94 441.42 261.54 256.71 K′2 261.76 252.06 255.40 256.63 K′3 247.69 258.82 257.45 261.05 R′ 17.25 189.36 6.14 4.42 K″1 188.25 328.28 197.95 198.30 K″2 204.12 199.75 206.64 198.92 K″3 200.46 200.19 188.24 195.61 R″ 15.87 128.53 18.40 3.31 K?1 215.47 369.19 221.21 218.64 K?2 223.93 218.05 222.69 218.68 K?3 217.36 220.67 212.86 219.44 R? 8.46 151.14 9.83 0.80
表4 方差分析Table 4 Analysis of variance
在純化工藝中,溫度對(duì)澄清劑有顯著影響,可能是溫度對(duì)體系內(nèi)粒子熱運(yùn)動(dòng)、高分子生物活性有影響[12],從而影響其絮凝作用。澄清劑用量對(duì)除雜效果有一定影響,一定范圍內(nèi)澄清劑用量越大,溶液越澄清,蛋白質(zhì)含量越低,但是多糖也會(huì)相應(yīng)減少,故需要合理選擇澄清劑的用量。有關(guān)多指標(biāo)優(yōu)選Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑用于甘蔗葉多糖純化工藝研究還未見(jiàn)報(bào)道,因此本實(shí)驗(yàn)對(duì)絮凝技術(shù)應(yīng)用于甘蔗葉多糖的純化有一定指導(dǎo)意義,同時(shí)為制備高純度甘蔗葉多糖提供技術(shù)支持。
表5 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 5 Results of process verification
[1]國(guó)家中醫(yī)藥管理局《中華本草》編委會(huì).中華本草[M].上海:上海科學(xué)技術(shù)出版社,1999:411.
[2]劉昔輝,楊榮仲,區(qū)惠平,等.甘蔗葉多糖的提取與含量測(cè)定[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,35(34):11035.
[3]吳建中,歐仕益,汪勇.甘蔗葉中黃酮類物質(zhì)的提取及抗氧化性研究[J].現(xiàn)代食品科技,2009(2):165-167.
[4]侯小濤,鄧家剛,馬建鳳,等.甘蔗葉提取物的體外抑菌作用研究[J].華西藥學(xué)雜志,2010,25(2):161-163.
[5]侯小濤,鄧家剛,李愛(ài)媛,等.甘蔗葉不同提取物對(duì)3種糖尿病模型的降血糖作用[J].華西藥學(xué)雜志,2011,26(5):451-453.
[6]鄧家剛,郭宏偉,侯小濤,等.甘蔗葉提取物的體外抗腫瘤活性研究[J].遼寧中醫(yī)雜志,2010,37(1):1-3.
[7]李朝興.新一代純天然澄清劑(ZTC系列天然澄清劑)[J].離子交換與吸附,1994,10(6):565-568.
[8]侯小濤,郭振旺,馬麗娜,等.甘蔗葉不同生長(zhǎng)期多糖含量的動(dòng)態(tài)累積研究[J].藥物分析雜志,2011,31(5):888-891.
[9]曲春香,沈頌東,王雪峰,等.用考馬斯亮藍(lán)測(cè)定植物粗提液中可溶性蛋白質(zhì)含量方法的研究[J].蘇州大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2006,22(2):82-85.
[10]李如亮.生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)[M].武漢:武漢大學(xué)出版社,1998.
[11]龔桂珍,張學(xué)俊.杜仲葉多糖脫色的研究[J].貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(3):42-45.
[12]孟祥海,朱驟海,張琳,等.Ⅱ型ZTC1+1天然澄清劑在虎杖多糖純化中的作用[J].中華中醫(yī)藥雜志,2010,25(12):2140-2142.
Study on deproteinization-technology of polysaccharides in sugarcane leaf
HOU Xiao-tao1,2,3,ZHAO Chao-chao2,DENG Jia-gang1,2,3,*
(1.School of Pharmacy,Guangxi Medical University,Nanning 530021,China;2.School of Pharmacy,Guangxi University of Chinese Medicine,Nanning 530001,China;3.Guangxi Key Laboratory of Pharmacodynamic Studies of Traditional Chinese Medicine,Nanning 530001,China)
TS201.1
B
1002-0306(2012)20-0240-06
2012-04-24 *通訊聯(lián)系人
侯小濤(1969-),女,博士,教授,主要從事中藥活性成分及質(zhì)量控制方面的研究。
廣西壯族自治區(qū)中醫(yī)藥管理局中醫(yī)藥科技專項(xiàng)(GZKZ09-9);廣西科技廳技術(shù)研究與開發(fā)項(xiàng)目(桂科攻10124008-11)。