王 存 夏潮涌 傅 婷 李志杰
自1830年Sohlemm在角膜緣發(fā)現(xiàn)角膜神經(jīng)后,人們對角膜神經(jīng)展開了一系列的研究。由于角膜組織沒有血管,因此角膜的營養(yǎng)與代謝基本都由角膜神經(jīng)代勞。角膜上皮含有豐富的神經(jīng)末梢,因此對刺激非常敏感,且具有保護(hù)眼前節(jié)的作用。業(yè)已發(fā)現(xiàn),許多眼表疾病和手術(shù)都與角膜的神經(jīng)支配密切相關(guān),本文就角膜神經(jīng)目前的研究進(jìn)展作一綜述。
1.1 角膜神經(jīng)的起源 角膜神經(jīng)主要包括感覺神經(jīng)、交感神經(jīng)與副交感神經(jīng)。早期研究證實(shí),許多哺乳動物如小鼠、猴、貓、大鼠和兔的角膜感覺神經(jīng)大多數(shù)來自三叉神經(jīng)的眼神經(jīng)分支,少數(shù)來自三叉神經(jīng)的上頜支。其實(shí),Bǎke早在1935年就發(fā)現(xiàn)位于角膜基質(zhì)層的粗神經(jīng)束內(nèi)存在某種纖維,并推測其中較細(xì)的纖維是交感神經(jīng)纖維,但未加以證實(shí)。1993年,Marfurt和Ellis進(jìn)一步證實(shí)所有哺乳動物的角膜都含有來自頸上神經(jīng)節(jié)的交感神經(jīng)纖維,但其密度存在顯著的種系間差異。例如,在兔和貓的角膜中,交感神經(jīng)占角膜神經(jīng)的10%~15%,而在包括人的靈長類動物的角膜中,交感神經(jīng)是極其罕見的[1]。通過選擇性去神經(jīng)和退化神經(jīng)描記法研究小鼠和貓的角膜時(shí)發(fā)現(xiàn),副交感神經(jīng)來自睫狀神經(jīng)節(jié)。但是關(guān)于人類角膜上是否有副交感神經(jīng)纖維至今仍未明確[2]。
1.2 研究角膜神經(jīng)的方法 從最初使用傳統(tǒng)組織免疫方法和光學(xué)顯微鏡研究角膜神經(jīng),到后來使用熒光組織免疫法和活體共聚焦顯微鏡描繪角膜神經(jīng)的整體構(gòu)造,短短70 a,研究方法有了突破性的進(jìn)展,但這些方法都各有利弊。氯化金染色法、乙酰膽堿酯酶染色法和美藍(lán)活體組織染色法均使用離體樣本,和體內(nèi)環(huán)境存在不可避免的差異。業(yè)已證實(shí),人體死后角膜神經(jīng)會立即退化,因此結(jié)果會存在一定的誤差。自90年代中期起,共聚焦顯微鏡被普遍用于檢測人體正常和異常角膜神經(jīng)的形態(tài)學(xué)特征[3]。但是,美中不足的是它無法記錄直徑小于0.5 μm的神經(jīng)分支及末梢。針對這一不足,He等[4]采用改進(jìn)的免疫熒光染色成像法展示上皮與間質(zhì)神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的細(xì)節(jié),并提供了整個(gè)角膜神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的橫斷視圖。
辣根過氧化物酶(hores radish peroxidase,HRP)軸漿運(yùn)輸法是檢測角膜神經(jīng)功能學(xué)的主要方法之一。利用HRP逆軸漿運(yùn)輸?shù)奶匦裕瑢RP注射于角膜植片中央,HRP會被逆軸漿運(yùn)輸?shù)饺嫔窠?jīng)節(jié),再通過固定染色等步驟統(tǒng)計(jì)三叉神經(jīng)節(jié)的個(gè)數(shù),用以評價(jià)再生神經(jīng)的功能。此外,角膜知覺是反映角膜神經(jīng)功能的一項(xiàng)重要指標(biāo),角膜感覺功能的檢查包括接觸式和非接觸式兩種。Cochet 2-Bonnet角膜知覺儀操作簡便,且能對角膜知覺進(jìn)行精確定量,是目前最常用的方法之一[5]。
位于角膜周圍的神經(jīng)束呈放射狀,分布于角膜表面,并于角膜全厚約前1/3處進(jìn)入角膜。神經(jīng)束在距角膜緣約1 mm處脫去神經(jīng)束膜和髓脂鞘,僅存雪旺細(xì)胞,繼續(xù)向角膜中央方向遷移[1]。在此過程中,神經(jīng)纖維會分為雙叉、三叉或丁字形繼續(xù)前行,行至前彈力層時(shí),神經(jīng)纖維會在前彈力層下互相重疊形成致密的神經(jīng)叢,然后穿過前彈力層,止于上皮細(xì)胞之間。但是,不同物種角膜神經(jīng)發(fā)育的具體過程有所差異,如C57/BL6小鼠在角膜神經(jīng)發(fā)育初期,神經(jīng)纖維直接呈放射狀伸向角膜中央和上皮,并未事先在角膜外周形成一個(gè)神經(jīng)環(huán)[6]。
2.1 基質(zhì)神經(jīng) 基質(zhì)神經(jīng)位于角膜基質(zhì)的前中部,起源于鞏膜或睫狀體[7]。主要的基質(zhì)神經(jīng)束進(jìn)入角膜后,分支成更細(xì)的基質(zhì)神經(jīng)纖維,并遷移至角膜上皮形成上皮神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)[4]。人類正常角膜中基質(zhì)神經(jīng)的直徑為5.5~11.4 μm[3]。部分基質(zhì)神經(jīng)纖維在一些分支點(diǎn)相互連結(jié)形成密度適中的基質(zhì)中部神經(jīng)叢,而位于角膜不同部位的基質(zhì)中部神經(jīng)叢的組成與密度有所差異。位于角膜外周的基質(zhì)中部神經(jīng)叢主要由一些小直徑的直的或彎曲的神經(jīng)纖維以及多彎拐的神經(jīng)纖維組成[8];而角膜中央的基質(zhì)中部神經(jīng)叢則主要由細(xì)的和彎曲的神經(jīng)纖維組成,它的神經(jīng)纖維密度小于角膜外周,而且從解剖學(xué)角度而言更簡單[8]。
國內(nèi)外眼科學(xué)者對人角膜基質(zhì)神經(jīng)束定量分析進(jìn)行了大量的研究[4]。Al-Aqaba 等[9]報(bào)道人類角膜基質(zhì)存在44根神經(jīng)束,而Marfurt等[10]則發(fā)現(xiàn)人類角膜基質(zhì)有71根神經(jīng)束。Oliveira-Soto等[7]使用狹縫掃描共聚焦顯微鏡觀察角膜基質(zhì)發(fā)現(xiàn),基質(zhì)中間和前部的神經(jīng)密度分別是 3.7 mm·mm-2和4.2 mm·mm-2。但是另有文獻(xiàn)報(bào)道,基質(zhì)中間和前部的神經(jīng)密度分別是 0.31 mm·mm-2[11]和 0.45 mm·mm-2[12]。由此可見,角膜基質(zhì)神經(jīng)的數(shù)目和密度仍存在爭議。
2.2 上皮下叢 上皮下叢位于角膜前彈力層和基質(zhì)前部的交界處[3],主要由直的或彎曲的神經(jīng)纖維和多彎拐神經(jīng)纖維構(gòu)成[8]。第一類神經(jīng)纖維的直徑為(4.09 ±2.15)μm[8],其中大多數(shù)會穿過前彈力層到達(dá)角膜上皮,形成一部分基質(zhì)淺層;另一部分基質(zhì)淺層則起源于多彎拐的上皮下叢神經(jīng)纖維的遠(yuǎn)端末梢。通常位于角膜不同位置的多彎拐神經(jīng)纖維的密度和形態(tài)都具有很大的差異,因此不難理解角膜外周的上皮下叢神經(jīng)纖維的密度高于角膜中央。Stachs等[13]使用共聚焦顯微鏡得到了簡明的三維角膜前部的重構(gòu)圖,能夠清楚看見上皮下的神經(jīng)叢。
2.3 前彈力層 無論是基質(zhì)神經(jīng)纖維還是上皮下叢神經(jīng)纖維,它們進(jìn)入角膜上皮都必須經(jīng)過前彈力層。猴的角膜神經(jīng)纖維只能在角膜周圍區(qū)域穿過前界層進(jìn)入上皮。神經(jīng)纖維進(jìn)入上皮后,大的神經(jīng)束分支成若干更小的神經(jīng)束,而小的神經(jīng)纖維則急劇旋轉(zhuǎn)90°或更大的角度,平行于角膜表面分布[1]。但是,人的角膜神經(jīng)纖維可從角膜外周和中央穿過前界層到達(dá)上皮,不同位置的角膜神經(jīng)滲透位點(diǎn)的密度會有所差異。統(tǒng)計(jì)發(fā)現(xiàn),有(204±59)根上皮下叢的神經(jīng)纖維穿過前彈力層到達(dá)角膜中央直徑為10 mm的區(qū)域,即神經(jīng)滲透位點(diǎn)的密度是 2.60 mm-2[10]。角膜外周(距角膜頂部3~5 mm 的區(qū)域)神經(jīng)滲透位點(diǎn)的密度是3.18 mm-2,是角膜中央(距中央的0~3 mm的區(qū)域)的2倍[8]。
2.4 基質(zhì)淺叢 基質(zhì)淺叢位于前界層和基底上皮之間,包括直的和串珠狀的神經(jīng)纖維,而且串珠狀的神經(jīng)纖維通常位于神經(jīng)束的外周[3]。來自同一基質(zhì)神經(jīng)的一類基質(zhì)淺叢被稱為“上皮索(epithelial leash)”。角膜不同部位的上皮索的密度有所差異,角膜外周的上皮索的密度低于角膜中央。使用共聚焦顯微鏡觀察人角膜時(shí)發(fā)現(xiàn),人類角膜的基底上皮索的去向不同于其他的哺乳動物[1]。
觀察整個(gè)基底淺叢可見,一些長且彎曲的基底神經(jīng)纖維漸漸向角膜中央前行,最終構(gòu)成一個(gè)螺旋狀集合[8]。人角膜的基底神經(jīng)旋渦結(jié)構(gòu)的地理中心距角膜中央的距離為(2.51±0.23)mm,偏向鼻下方[8]。角膜基底神經(jīng)纖維的長度不一,最短的基底神經(jīng)纖維長度不超過1 mm,主要集中在旋渦中心附近;最長的基底神經(jīng)纖維集中于角膜的上部,長度為6.5~8.0 mm 或更長[8]。研究證實(shí),角膜上皮基底神經(jīng)密度與年齡沒有相關(guān)性[4]。
2.5 上皮的神經(jīng) 角膜上皮的神經(jīng)分別來自角膜緣表面和結(jié)膜下的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。上皮神經(jīng)包括基底下神經(jīng)纖維和神經(jīng)末梢。其中,上皮內(nèi)的神經(jīng)末梢與角膜敏感度具有密切的關(guān)系。上皮內(nèi)的神經(jīng)末梢均來自基底下的神經(jīng)分支,它們分布于上皮的各層,而且它們的長度、主要去向和形態(tài)學(xué)的復(fù)雜性各不相同。研究發(fā)現(xiàn),上皮神經(jīng)密度與性別無關(guān),但與年齡有關(guān)。人角膜上皮的神經(jīng)末梢會隨著年齡的增長而減少,但是基底下神經(jīng)纖維密度隨年齡的變化仍存在爭議[4]。
角膜神經(jīng)屬于外周神經(jīng),具有再生能力。然而,通常角膜的神經(jīng)再生是不完全的。角膜神經(jīng)的再生方式有兩種:一種是由傷口周圍未受損的神經(jīng)和傷口內(nèi)再生的實(shí)質(zhì)層神經(jīng)出芽再生,另一種是由傷口周圍粗的神經(jīng)干相繼發(fā)出細(xì)的和中等粗的神經(jīng)纖維,這是一種實(shí)質(zhì)層和上皮下神經(jīng)的真正再生[14]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn)角膜神經(jīng)再生分為兩個(gè)時(shí)期,首先創(chuàng)傷區(qū)內(nèi)的所有神經(jīng)在短期內(nèi)發(fā)生變性,同時(shí)可見來自傷口周圍完整上皮下叢的粗大而且密集的神經(jīng)軸索,垂直于傷口邊緣走行;其次是傷口極向軸索的變性與第二代軸索的出現(xiàn),這些軸索來自傷口邊緣或近傷口邊緣的再生的上皮下軸索[14]。
近幾年,術(shù)后角膜神經(jīng)的修復(fù)成為了熱點(diǎn)。神經(jīng)生長因子作為一種神經(jīng)營養(yǎng)因子及免疫調(diào)節(jié)因子,在感覺神經(jīng)元的存活、生長、分化以及促進(jìn)創(chuàng)傷修復(fù)中發(fā)揮著十分重要的作用,可促進(jìn)角膜神經(jīng)的再生[5]。研究證明,無論什么物種,穿透性角膜移植術(shù)后的神經(jīng)再生都非常緩慢,且角膜知覺很難完全恢復(fù)。準(zhǔn)分子激光原位角膜磨鑲術(shù)是目前最常用的近視激光矯正手術(shù)之一。業(yè)已證實(shí),術(shù)后5 a內(nèi)基質(zhì)神經(jīng)的再生是不完全的,而且角膜中央的敏感性與基質(zhì)神經(jīng)的形態(tài)學(xué)[15]和密度[16]存在著密切的關(guān)系。Darwish等[17]發(fā)現(xiàn)準(zhǔn)分子激光原位角膜磨鑲術(shù)和準(zhǔn)分子激光上皮下角膜磨鑲術(shù)后的任何時(shí)段,基質(zhì)神經(jīng)的參數(shù)都沒有顯著差異。但是,Lee等[16]報(bào)道準(zhǔn)分子激光上皮下角膜磨鑲術(shù)術(shù)后的基質(zhì)層神經(jīng)的再生比準(zhǔn)分子激光原位角膜磨鑲術(shù)快。因此,這兩種手術(shù)后基質(zhì)神經(jīng)的再生速度是否一樣還需要進(jìn)一步確認(rèn)??梢源_定的是,在準(zhǔn)分子激光角膜切削術(shù)后5 a,角膜中央基質(zhì)層神經(jīng)纖維的數(shù)目與正常的一樣,并且其分支模式大致與未接受手術(shù)的正常個(gè)體相同[18]。
4.1 角膜炎 角膜炎分為潰瘍性角膜炎和非潰瘍性角膜炎兩類。研究證實(shí),患有角膜炎的角膜中央基質(zhì)層神經(jīng)的密度明顯低于正常角膜[19]。角膜炎存在明顯的角膜基質(zhì)神經(jīng)構(gòu)造異常。其異常表現(xiàn)為:在角膜頂部可見一個(gè)由神經(jīng)纖維束構(gòu)成的多彎拐的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),而且這些神經(jīng)束會形成閉環(huán);在角膜地形學(xué)的基底,神經(jīng)纖維束沿著基底遷移,并且在此區(qū)域的許多神經(jīng)束都偏向同一個(gè)中心[19]。使用共聚焦顯微鏡觀察感染性角膜炎患者時(shí)發(fā)現(xiàn),角膜中央上皮樹突狀細(xì)胞的密度與數(shù)目均增加,而且其形態(tài)發(fā)生改變,但是角膜基底下神經(jīng)卻明顯減少了[20]。角膜炎中比較常見的是單純皰疹性角膜炎(herpes simplex keratitis,HSK)。文獻(xiàn)報(bào)道,兔角膜接種HSVⅠ3 d后,角膜上皮下感覺神經(jīng)叢出現(xiàn)散在分布的末梢神經(jīng)潰變,上皮基底索軸突腫脹和斷裂,隨著病程的進(jìn)展,神經(jīng)病變繼續(xù)加重,但在感染后28 d,光鏡下可以見到神經(jīng)纖維以芽生方式再生。Rosenberg等[10]利用共聚焦顯微鏡,對16眼尚未出現(xiàn)樹突狀角膜潰瘍的病程在1~12個(gè)月的HSK患者進(jìn)行角膜神經(jīng)的研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)2眼出現(xiàn)角膜上皮細(xì)胞變大,2眼上皮下神經(jīng)叢缺失,3眼長神經(jīng)叢數(shù)量明顯減少。最近研究顯示,使用活體內(nèi)共聚焦顯微鏡觀察HSK患者角膜時(shí)發(fā)現(xiàn),上皮和基質(zhì)的HSK間歇性發(fā)作會漸漸破壞角膜上皮下神經(jīng)旋渦結(jié)構(gòu)的形態(tài)。但是,內(nèi)皮的HSK卻不會對角膜上皮下神經(jīng)旋渦結(jié)構(gòu)的形態(tài)產(chǎn)生影響[21]。
4.2 干眼征 任何降低淚膜(質(zhì)或量)的因素都可造成干眼征發(fā)生。干眼征主要包括水液缺乏型干眼和非水液缺乏型干眼兩種類型。與正常人群對比,兩種類型干眼征都可伴隨角膜基質(zhì)神經(jīng)密度下降[11]或者不改變[22]。另外,干眼病患者的角膜神經(jīng)呈現(xiàn)不正常的形態(tài)改變,這在干燥綜合征患者中表現(xiàn)更明顯,最直觀的改變是角膜神經(jīng)數(shù)量、彎曲度、神經(jīng)分支的增加[23]。其原因可能與應(yīng)激狀態(tài)下由炎癥細(xì)胞分泌過多神經(jīng)生長因子的刺激有關(guān)[24]。但是,角膜神經(jīng)形態(tài)的改變可能不會造成角膜敏感度的降低[22]。
4.3 糖尿病 糖尿病是一種系統(tǒng)性代謝性疾病,可累及全身各個(gè)器官,也可引起角膜神經(jīng)的異常。糖尿病性神經(jīng)病變是最普遍的、花費(fèi)最多的糖尿病性并發(fā)癥。高達(dá)50%的糖尿病患者都有并發(fā)癥,其中糖尿病多發(fā)神經(jīng)病變是一種常見的并發(fā)癥。在糖尿病兔模型中,發(fā)現(xiàn)角膜腎上腺素能神經(jīng)在角膜緣形成的神經(jīng)網(wǎng)叢密度稀疏,行向角膜淺基質(zhì)層的神經(jīng)分支變細(xì)。發(fā)病6周時(shí),電鏡下發(fā)現(xiàn)角膜神經(jīng)軸突水腫,神經(jīng)纖維分布稀疏不均,有些線粒體呈空泡變性,有些則固縮呈顆粒狀。發(fā)病12周,神經(jīng)軸突則呈現(xiàn)高度水腫,甚至崩解,線粒體也因水腫嚴(yán)重而破裂[25]。Rosenberg 等[26]在共聚焦顯微鏡下發(fā)現(xiàn),糖尿病患者的基質(zhì)神經(jīng)纖維束數(shù)量顯著降低,且角膜敏感性也顯著下降。研究證實(shí),與正常角膜相比較,糖尿病患者的神經(jīng)纖維密度、長度和分支密度都明顯降低[27]。Chang 等[28]使用了一個(gè)新的方法來定量分析糖尿病患者基質(zhì)神經(jīng)纖維的彎曲度,發(fā)現(xiàn)周圍神經(jīng)病變越嚴(yán)重,患者角膜基質(zhì)神經(jīng)纖維的彎曲度就越大。就目前而言,共聚焦顯微鏡是監(jiān)控人類糖尿病患者角膜神經(jīng)病變的最佳檢測和評估工具[29]。
雖然對角膜神經(jīng)的深入研究解決了部分角膜神經(jīng)相關(guān)疾病的預(yù)防與治療工作,但是,仍有許多問題尚待解決,如哪些疾病與角膜神經(jīng)形態(tài)和數(shù)量具有相關(guān)性,如何改善術(shù)后角膜神經(jīng)的再生等。
1 Müller LJ,Marfurt CF,Kruse F,Tervo TMT.Corneal nerves:structure,contents and function[J].Exp Eye Res,2003,76(5):521-542.
2 Marfurt CF,Jones MA,Thrasher K.Parasympathetic innervation of the rat cornea[J].Exp Eye Res,1998,66(4):437-448.
3 Patel DV,McGhee CNJ.In vivo confocal microscopy of human corneal nerves in health,in ocular and systemic disease and following corneal surgery:a review[J].Br J Ophthalmol,2009,93(7):853-860.
4 He JC,Bazan NG,Bazan HEP.Mapping the entire human corneal nerve architecture[J].Exp Eye Res,2010,91(4):513-523.
5 周 佳,郭文毅.角膜神經(jīng)相關(guān)眼病的研究進(jìn)展[J].眼科研究,2008,26(6):473-476.
6 McKenna CC,Lwigale PY.Innervation of the mouse cornea during development[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2011,52(1):30-35.
7 Oliveira-Soto L,Efron N.Morphology of corneal nerves using confocal microscopy[J].Cornea,2001,20(4):374-384.
8 Rosenberg ME,Tervo TM,Müller LJ.In vivo confocal microscopy after herpes keratitis[J].Cornea,2002,21(3):265-269.
9 Al-Aqaba MA,F(xiàn)ares U,Suleman H,Lowe J,Dua HS.Architecture and distribution of human corneal nerves[J].Br J Ophthalmol,2010,94(6):784-789.
10 Marfurt CF,Cox J,Deek S,Dvorscak L.Anatomy of the human corneal innervation[J].Exp Eye Res,2010,90(4):478-492.
11 del Castillo JMB,Wasfy MAS,F(xiàn)ernandez C,Garcia-Sanchez J.An in vivo confocal masked study on corneal epithelium and subbasal nerves in patients with dry eye[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2004,45(9):3030-3035.
12 Simo-Mannion L,Tromans C,O’Donnell C.An evaluation of corneal nerve morphology and function in moderate keratoconus[J].Cont Lens Anterior Eye,2005,28(4):185-192.
13 Stachs O,Zhivov A,Kraak R,Stave J,Guthoff R.In vivo threedimensional confocal laser scanning microscopy of the epithelial nerve structure in the human cornea[J].Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol,2007,245(4):569-575.
14 管懷進(jìn).眼的神經(jīng)生物學(xué)研究進(jìn)展[J].中國實(shí)用眼科雜志,2002,20(9):651-655.
15 Calvillo MP,McLaren JW,Hodge DO,Bourne WM.Corneal reinnervation after LASIK:prospective 3-year longitudinal study[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2004,45(11):3991-3996.
16 Lee SJ,Kim JK,Seo KY,KimEK,Lee HK.Comparison of corneal nerve regeneration and sensitivity between LASIK and laser epithelial keratomileusis(LASEK)[J].Am J Ophthalmol,2006,141(6):1009-1015.
17 Darwish T,Brahma A,O’Donnell C,Efron N.Subbasal nerve fiber regeneration after LASIK and LASEK assessed by noncontact esthesiometry and in vivo confocal microscopy:prospective study[J].J Cataract Refract Surg,2007,33(9):1515-1521.18 Moilanen JA,Vesaluoma MH,Muller LJ,Tervo TMT.Long-term corneal morphology after PRK by in vivo confocal microscopy[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2003,44(3):1064-1069.
19 Patel DV,Ku JY,Johnson R,McGhee CNJ.Laser scanning in vivo confocal microscopy and quantitative aesthesiometry reveal decreased corneal innervation and sensation in keratoconus[J].Eye,2009,23(3):586-592.
20 Cruzat A,Witkin D,Baniasadi N,Zheng L,Ciolino JB,Jurkunas UV.et al.Inflammation and the nervous system:the connection in the cornea in patients with infectious keratitis[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2010,52(8):5136-5143.
21 Nagasato D,Araki-Sasaki K,Kojima T,Ideta R,Dogru M.Morphological changes of corneal subepithelial nerve plexus in different types of herpetic keratitis[J].Jpn J Ophthalmol,2011,55(5):444-450.
22 Hosal BM,Ornek N,Zilelioglu G,Elhan AH.Morphology of corneal nerves and corneal sensation in dry eye:a preliminary study[J].Eye,2005,19(12):1276-1279.
23 Zhang M,Chen JQ,Luo Lh,Xiao QG,Sun MX,Liu ZG.Altered corneal nerves in aqueous tear deficiency viewed by in vivo confocal microscopy[J].Cornea,2005,24(7):818-824.
24 Villani E,Galimberti D,Viola F,Mapelli C,Ratiglia R.The cornea in Sjogren’s syndrome:an in vivo confocal study[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2007,48(5):2017-2022.
25 李金瑛,麥才鏗,胡燕華.糖尿病兔角膜神經(jīng)組織化學(xué)及超微結(jié)構(gòu)研究[J].中華眼科雜志,1996,32(4):258-259.
26 Rosenberg ME,Tervo TM,Immonen IJ,Muller LJ,Gronhagen-Riska C,Vesaluoma MH.Corneal structure and sensitivity in type 1 diabetes mellitus[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2000,41(10):2915-2921.
27 Malik RA,Kallinikos P,Abbott CA,van Schie C,Efron N,Boulton AJM.Corneal confocal microscopy:a non-invasive surrogate of nerve fibre damage and repair in diabetic patients[J].Diabetologia,2003,46(5):683-688.
28 Chang PY,Carrel H,Huang JS,Wang IJ,Hou YC,Chen WL,et al.Decreased density of corneal basal epithelium and subbasal corneal nerve bundle changes in patients with diabetic retinopathy[J].Am J Ophthalmol,2006,142(3):488-490.
29 Quattrini C,Tavakoli M,Jeziorska M,Kallinikos P,Tesfaye S,F(xiàn)innigan J,et al.Surrogate markers of small fiber damage in human diabetic neuropathy[J].Diabetes,2007,56(8):2148-2154.