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反相高效液相色譜法測(cè)定秋葵干蔬中的β-胡蘿卜素

2013-02-22 11:41董愛軍張英春
食品工業(yè)科技 2013年24期
關(guān)鍵詞:秋葵正己烷胡蘿卜素

董愛軍,楊 鑫,張英春,張 華,井 晶

(哈爾濱工業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,黑龍江哈爾濱150090)

秋葵是一種高檔營(yíng)養(yǎng)保健蔬菜,它是名副其實(shí)的藥食兼?zhèn)涞母郀I(yíng)養(yǎng)強(qiáng)身健體植物[1],既可以作為蔬菜直接食用,也可以作為湯料的輔助成分,以及蛋白質(zhì)和脂肪的替代品[2-3]。但秋葵儲(chǔ)存期短,即使低溫儲(chǔ)存,也只有2~3d的保鮮期。為了延長(zhǎng)秋葵的儲(chǔ)存期,傳統(tǒng)的方法是將秋葵烘干或曬干制成秋葵干蔬[4],速凍也是常用的保鮮方法,速凍產(chǎn)品保鮮期可達(dá)9個(gè)月[5],干制產(chǎn)品最長(zhǎng)可保存一年。

為了評(píng)價(jià)秋葵的營(yíng)養(yǎng)保健價(jià)值,人們對(duì)于秋葵中功能成分及營(yíng)養(yǎng)成分進(jìn)行了深入的研究,如多酚化合物[6]、多糖[7]、微量元素[8]等藥用成分的分析研究,蛋白質(zhì)、糖、脂肪等營(yíng)養(yǎng)成分的測(cè)定[9-10],胡蘿卜素和類胡蘿卜素的組成分析等[11-12]。秋葵嫩莢富含維生素,尤其是維生素A與胡蘿卜素含量在目前發(fā)現(xiàn)的動(dòng)植物中位列第一。β-胡蘿卜素是維生素A的前體,同時(shí)β-胡蘿卜素具有很強(qiáng)的抗氧化功能[13]和抑制腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)的作用[14-15]。但β-胡蘿卜素不穩(wěn)定,極易被光、熱、氧、金屬離子等破壞,因此研究分析秋葵干蔬中β-胡蘿卜素的含量,對(duì)于選擇適當(dāng)?shù)母芍品椒ň哂兄笇?dǎo)意義,同時(shí)對(duì)于評(píng)價(jià)秋葵干蔬的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和保健價(jià)值也有重要的意義。液相色譜法以其靈敏度高,快速準(zhǔn)確,操作簡(jiǎn)單等特點(diǎn)在β-胡蘿卜素的測(cè)定中得到了廣泛的應(yīng)用[16-19],但大部分方法采用回流皂化法,樣品處理繁瑣,很難實(shí)現(xiàn)全程避光,β-胡蘿卜素的破壞較大。本實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)化樣品處理過程,建立了RP-HPLC測(cè)定秋葵干蔬中β-胡蘿卜素含量的方法。該方法樣品處理方法簡(jiǎn)單,β-胡蘿卜素的破壞較小,測(cè)定結(jié)果準(zhǔn)確。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

β-胡蘿卜素 Sigma公司;乙腈、甲醇、乙酸乙酯、正己烷 為色譜純;氫氧化鉀、無水硫酸鈉、抗壞血酸、無水乙醇 為分析純。

Agilent 1100型高效液相色譜儀 美國(guó)Agilent公司,配備四元梯度泵,100位自動(dòng)進(jìn)樣器,二極管陣列檢測(cè)器(DAD),化學(xué)工作站;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;millipore purification system超純水系統(tǒng) 美國(guó)Millipore公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 樣品處理 干燥秋葵樣品用粉碎機(jī)粉碎后,過20目篩,備用。準(zhǔn)確稱取10.00g粉碎的秋葵樣品于250m L具塞錐形瓶中,加1g抗壞血酸,再加入70m L無水乙醇,混勻,加入30m L 50%的KOH溶液,充入氮?dú)?m in,蓋好瓶塞,并用保鮮膜和皮筋將瓶塞扎實(shí),錫箔紙包好后,室溫下放置過夜皂化22~24h。用150m L正己烷分3次萃取皂化液,合并正己烷層,并用高純水將其洗至中性后,過無水硫酸鈉脫水。在45℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至近干,用正己烷定容至10m L,經(jīng)0.45μm微孔濾膜過濾后,取20μL進(jìn)行液相色譜分析。整個(gè)操作過程注意避光。

1.2.2 色譜條件 色譜柱為Agilent TC-C18柱(250mm×4.6mm,i.d.5μm);流動(dòng)相為乙腈-甲醇-乙酸乙酯(88∶10∶2,V∶V∶V),流速1m L/min;柱溫30℃;進(jìn)樣量20μL;檢測(cè)波長(zhǎng)為453nm。

1.2.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

1.2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液和標(biāo)準(zhǔn)使用液 準(zhǔn)確稱取β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品0.1000g,用正己烷溶解并準(zhǔn)確定容于100m L棕色瓶中,配制成濃度為1000mg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,于-20℃冰箱中避光保存。準(zhǔn)確吸取該標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液10m L,用正己烷定容至100m L,配制成濃度為100mg/L的標(biāo)準(zhǔn)使用液,于4℃冰箱中避光保存。此標(biāo)準(zhǔn)使用液需現(xiàn)用現(xiàn)配。

1.2.3.2 標(biāo)準(zhǔn)系列溶液 準(zhǔn)確吸取0.1、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0m L標(biāo)準(zhǔn)使用液于100m L棕色瓶中,用正己烷定容,配制成β-胡蘿卜素濃度分別為0.1、0.5、1、2、5、10mg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。標(biāo)準(zhǔn)工作溶液需現(xiàn)用現(xiàn)配。

1.2.4 定量方法 取各濃度標(biāo)準(zhǔn)工作溶液按上述色譜條件進(jìn)行分析,以峰面積對(duì)質(zhì)量濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并進(jìn)行線性回歸。將處理后的樣品溶液在相同條件下進(jìn)行分析,以保留時(shí)間定性,外標(biāo)法定量。

2 結(jié)果與分析

2.1 樣品前處理方法的選擇

β-胡蘿卜素是一種脂溶性的物質(zhì),存在于脂肪之內(nèi)。干秋葵種子中含有較多的脂肪,為了使樣品中的β-胡蘿卜素與脂肪分離,本實(shí)驗(yàn)采用傳統(tǒng)的皂化法處理樣品。β-胡蘿卜素不穩(wěn)定,光、氧、熱和金屬離子都能使其分解損失,尤其對(duì)光極不穩(wěn)定。為了保證測(cè)定結(jié)果的準(zhǔn)確度,減少β-胡蘿卜素的損失,采用室溫過夜皂化法。加入抗壞血酸作為抗氧化劑,同時(shí)充入氮?dú)庖苑乐功?胡蘿卜素氧化,在室溫下皂化以防止β-胡蘿卜素的受熱損失,為了防止光對(duì)β-胡蘿卜素的破壞,整個(gè)樣品處理過程都避光。本實(shí)驗(yàn)比較了正己烷、石油醚、乙醚的萃取效果,用正己烷萃取時(shí),β-胡蘿卜素回收率比其他兩種萃取劑高10%左右,因此本實(shí)驗(yàn)選擇正己烷為β-胡蘿卜素的萃取劑。

2.2 色譜條件選擇

2.2.1 流動(dòng)相的選擇 反相高效液相色譜法測(cè)定β-胡蘿卜素的流動(dòng)相有乙腈-二氯甲烷-甲醇[17,19]、甲醇-乙腈-三乙胺[18]、環(huán)己烷-正己烷-異丙醇[20]、乙腈-甲醇-乙酸乙酯[21]、甲醇-異丙醇[22]等,本實(shí)驗(yàn)選擇乙腈-甲醇-乙酸乙酯作流動(dòng)相,并對(duì)三者的配比進(jìn)行了實(shí)驗(yàn),分別為:88∶10∶2,90∶5∶5,95∶0∶5。由于β-胡蘿卜素含有共軛雙鍵,極性很弱,因此提高乙腈和乙酸乙酯的比例能使保留時(shí)間縮短,但實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),隨著乙腈和乙酸乙酯的增加,β-胡蘿卜素的保留時(shí)間雖然有所縮短,但峰面積卻小了很多,綜合考慮最終確定乙腈-甲醇-乙酸乙酯的比例為88∶10∶2,β-胡蘿卜素的保留時(shí)間為45m in。

2.2.2 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇 液相色譜法測(cè)定β-胡蘿卜素的檢測(cè)波長(zhǎng)有250nm[19]、450nm左右[16,19-20,22],實(shí)驗(yàn)前用二極管陣列檢測(cè)器在190~900nm范圍內(nèi),對(duì)β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行在線光譜掃描,光譜信號(hào)顯示:β-胡蘿卜素在453nm有最大吸收峰。本實(shí)驗(yàn)比較了β-胡蘿卜素在250、450、453nm的吸收值,結(jié)果表明β-胡蘿卜素在453nm的吸收值更高一些,這與在線光譜掃描的結(jié)果一致。因此本實(shí)驗(yàn)確定在453nm波長(zhǎng)下檢測(cè)秋葵中的β-胡蘿卜素,標(biāo)準(zhǔn)品和干燥秋葵加標(biāo)樣品色譜圖,見圖1。

圖1 β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品和秋葵干蔬加標(biāo)樣品色譜圖Fig.1 Chromatograms ofβ-carotene standard and dry okra sample spiked 100μg

2.3 方法學(xué)考察

2.3.1 線性范圍和檢出限 將混合標(biāo)準(zhǔn)系列溶液按

1.2.2 的色譜條件進(jìn)行分析,以峰面積為縱坐標(biāo)(y),標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度(mg/L)為橫坐標(biāo)(X),作工作曲線并進(jìn)行線性回歸,β-胡蘿卜素在0.1~10.0mg/L濃度范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為y=104.13x+39.62,相關(guān)系數(shù)R2=0.996。按3倍信噪比(S/N),確定本方法的檢出限(LOD)為0.08mg/kg,10倍信噪比(S/N),確定本方法的定量下限(LOQ)為0.26mg/kg。

2.3.2 回收率和精密度 準(zhǔn)確稱取干燥秋葵樣品10.00g,按高、中、低三個(gè)濃度水平加標(biāo),每個(gè)水平重復(fù)三次,進(jìn)行回收率和精密度實(shí)驗(yàn),由回歸方程計(jì)算回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),結(jié)果見表1。β-胡蘿卜素的回收率為82.4%~94.0%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.28%~5.43%,表明本方法的準(zhǔn)確度和精密度都較高,能夠滿足實(shí)際測(cè)定需要。

表1 回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=3)Table1 Recovery ofβ-carotene and relative standard deviation(n=3)

2.3.3 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn) 光和熱對(duì)β-胡蘿卜素的穩(wěn)定性有很大的影響,避光和4℃儲(chǔ)存效果最佳[22]。為了考察β-胡蘿卜素的穩(wěn)定性,將濃度為5mg/L的β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)溶液在4℃下避光放置,每隔2h測(cè)定其響應(yīng)值,并計(jì)算濃度。結(jié)果表明,β-胡蘿卜素濃度變化的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),日內(nèi)為3.58%,日間為6.73%。因此測(cè)定β-胡蘿卜素時(shí),為了減少損失,標(biāo)準(zhǔn)溶液應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,并且標(biāo)樣配制和樣品處理過程都應(yīng)避光,低溫放置。

2.4 秋葵干蔬中測(cè)定

采用上述方法測(cè)定了10個(gè)秋葵干蔬樣品中的β-胡蘿卜素的含量,每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3次,結(jié)果均未檢出β-胡蘿卜素。鮮秋葵中β-胡蘿卜素的含量平均為92.4mg/kg,本實(shí)驗(yàn)中的樣品是在陽光下自然曬干的,由于紫外線對(duì)β-胡蘿卜素的破壞力極強(qiáng),未檢出說明自然曬干的秋葵干蔬中的β-胡蘿卜素已經(jīng)被完全破壞了。

3 結(jié)論

本實(shí)驗(yàn)建立了測(cè)定秋葵干蔬中β-胡蘿卜素的反相高效液相色譜法,樣品經(jīng)室溫過夜皂化后,由C18柱分離,二極管陣列檢測(cè)器檢測(cè)。該方法靈敏度高,重現(xiàn)性好,不僅適合干制秋葵中β-胡蘿卜素的測(cè)定,也可應(yīng)用于新鮮秋葵和速凍秋葵中β-胡蘿卜素的測(cè)定。該方法的建立對(duì)于選擇適宜的秋葵保鮮方法,減少β-胡蘿卜素的損失具有指導(dǎo)意義。

[1]Watson R R,Preedy V R.Bioactive food as dietary interventions for diabetes[M].California:Acadenuc Press,2013:291-306.

[2]Costantino A J,Romanchick-Cerpoviez J E.Physical and sensory measures indicate mode rate fat replacement in frozen dairy dessert is feasible using okra gum as amilk-fat ingredient substitute[J].Journal of the American Dietetic Association,2004,104(Suppl.2):44.

[3]Romanchik-Cerpovicz J E,Costantino A C,Laura H G.Sensory evaluation ratings and melting characteristics show that okra gum is an acceptable milk-fat ingredient substitute in chocolate frozen dairy dessert[J].Journalof the American Dietetic Association,2006,106:594-597.

[4]Adorn K K,Dzogbefia V P,Ellis W O,et al.Solar drying of okra——effects of selected materials on storage stability[J].Food Research International,1996,29(7):589-593.

[5]黃紹力,鄧紅生,葉世豪.黃秋葵速凍保鮮研究[J].保鮮與加工,2002(2):13-15.

[6]Arapitsas P.Identification and quantification of polyphenolic compounds from okra seeds and skins[J].Food Chemistry,2008,110(4):1041-1045.

[7]Sheu S C,Lai M H.Composition analysis and immunomodulatory effect of okra(Abelmoschus esculentus L.)extract[J].Food Chemistry,2012,134(4):1906-1911.

[8]Adelakun O E,Ade-Omowaye B IO,Adeyemi IA,et al.Mineral composition and the functional attributes of Nigerian okra seed(Abelmoschus esculentus Moench) flour[J].Food Research International,2012,47(2):348-352.

[9]Adelakun O E,Oyelade O J,Ade-Omowaye B IO,et al.Chemical composition and the antioxidative properties of Nigerian Okra Seed(Abelmoschus esculentus Moench)Flour[J].Food and Chemical Toxicology,2009,47(6):1123-1126.

[10]黃阿根,陳學(xué)好,高云中,等.黃秋葵的成分測(cè)定與分析[J].食品科學(xué),2007,28(10):451-455.

[11]Fuh JK,Yu SC,May JT,etal.Effects of Chinese domestic cooking methods on the carotenoid composition of vegetables in Taiwan[J].LWT-Food Science and Technology,2012,46(2):485-492.

[12]Muhammad J,EL-Qudah.Identification and quantification ofmajor carotenoids in some vegetables[J].American Journal of Applied Sciences,2009,6(3):492-497.

[13]Zhang P,Omaye S T.Antioxidant and prooxidant roles for β-carotene,α-tocopherol and ascorbic acid in human lung cells [J].Toxicology in Vitro,2001,15(1):13-24.

[14]Dulin’ska J,Gil D,Zagajewski J,et al.Different effect of beta-carotene on proliferation of prostate cancer cells[J].Biochimica et Biophysica Acta-Molecular Basis of Disease,2005,1740(2):189-201.

[15]Steinel H H,Baker R S U.Effects ofβ-carotene on chemically-induced skin tumors in HRASkh hairless mice[J].Cancer Letters,1990,51(2):163-168.

[16]Prates J A M,Quaresma M A G,Bessa R J B,et al.Simultaneous HPLCquantification of total cholesterol,tocopherols andβ-carotene in Barrosa-PDO veal[J].Food Chemistry,2006,94(3):469-477.

[17]Kandlakunta B,Rajendran A,Thingnganing L.Carotene content of some common(cereals,pulses,vegetables,spices andcondiments)and unconventional sources of plant origin[J].Food Chemistry,2008,106:85-89.

[18]Barba A IO,Hurtado M C,Mata M C S,et al.Application of a UV-vis detection-HPLC method for a rapid determination of lycopene andβ-carotene in vegetables[J].Food Chemistry,2006,95:328-336.

[19]HosotaniK,KitagawaM.Improved simultaneousdetermination method ofβ-carotene and retinol with saponification in human serum and rat liver[J].Journal of Chromatography B,2003,791(1-2):305-313.

[20]王旻,錢永軍,鄂來明,等.營(yíng)養(yǎng)強(qiáng)化劑和嬰兒配方奶粉中β-胡蘿卜素的測(cè)定[J].中國(guó)乳品工業(yè),2005,33(6):56-57.

[21]Ismail A,Cheal SF.Determination of Vitamin C,β-carotene and riboflavin contents in five green vegetables organically and conventionally grown[J].Malaysian Journal of Nutrition,2003,9(1):31-39.

[22]羅燕春,韋吉,黎軍平,等.黃秋葵葉粉中葉黃素和β-胡蘿卜素的穩(wěn)定性[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2008,24(7):85-91.

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