黃育生袁賢琳鐘 瑜王汝俊
1.廣州中醫(yī)藥大學(xué)脾胃研究所,廣東 廣州 510405;2.廣東省廣州花海藥業(yè)股份有限公司,廣東 廣州 510370
HPLC法測(cè)定羌活中紫花前胡苷的含量
黃育生1袁賢琳2*鐘 瑜2王汝俊1
1.廣州中醫(yī)藥大學(xué)脾胃研究所,廣東 廣州 510405;2.廣東省廣州花海藥業(yè)股份有限公司,廣東 廣州 510370
目的:建立HPLC法測(cè)定羌活中紫花前胡苷含量的方法。方法:HPLC條件:色譜柱為Agilent HC-C18柱(5μm,4.6× 250mm),流動(dòng)相為甲醇-水(32∶68),流速為1.0ml·min-1,檢測(cè)波長(zhǎng)為335nm,柱溫為35℃。結(jié)果紫花前胡苷范圍為4.00μg·ml-1~100.00μg·ml-1,平均回收率為99.90%,RSD為1.50%。結(jié)論:該法操作簡(jiǎn)單,重現(xiàn)性好,結(jié)果準(zhǔn)確,可作為羌活中紫花前胡苷的含量測(cè)定方法提供參考依據(jù)。
羌活;紫花前胡苷;HPLC
羌活為傘形科植物羌活Notopterygium incisum Ting ex H.T.Chang或?qū)捜~羌活Notopterygium franchetii H.de Boiss.的干燥根莖和根。本品具有解表散寒,祛風(fēng)除濕,止痛的功效,常用于治療風(fēng)寒感冒,頭痛項(xiàng)強(qiáng),風(fēng)濕痹痛,肩背酸痛[1]。其主要成分有香豆素類成分 (如紫花前胡苷、羌活醇及異歐前胡素等)、揮發(fā)油、阿魏酸等[2]。有研究表明紫花前胡苷是羌活的有效成分,具有鎮(zhèn)痛、抗炎作用[3]。但是2010年版藥典第一部只收載了羌活醇和異歐前胡素總量的含量測(cè)定方法,且目前對(duì)于HPLC法測(cè)定羌活中的紫花前胡苷含量的報(bào)道很少。本文研究建立了HPLC法測(cè)定羌活中的紫花前胡苷含量,為羌活的質(zhì)量控制及復(fù)方制劑中羌活的有效成分轉(zhuǎn)移率提供新的參考依據(jù)。結(jié)果表明本方法操作簡(jiǎn)單,準(zhǔn)確,重現(xiàn)性好。
高效液相色譜儀:SPD-20A紫外檢測(cè)器,LC-20AT泵(日本島津公司);Sartorious BT 25S電子天平(北京賽多利斯科學(xué)儀器有限公司);HH-6數(shù)顯恒溫水浴鍋 (常州澳華儀器有限公司);KQ-100DE型超聲清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。
羌活中藥飲片(批號(hào)20100702,佛山市中藥飲片廠有限公司);紫花前胡苷對(duì)照品(批號(hào)111821-201102,中國(guó)食品藥品檢定研究所);甲醇為色譜純,其余試劑均為分析純。
Agilent HC-C18色譜柱(5μm,4.6×250mm);流動(dòng)相:甲醇-水(32∶68);流速:1ml·min-1;柱溫:35℃;檢測(cè)波長(zhǎng):335nm。紫花前胡苷峰與前后峰的分離度均在1.5以上,理論板數(shù)按紫花前胡苷峰計(jì)算應(yīng)不低于3000。
3.1 對(duì)照品溶液的制備 精密稱取紫花前胡苷對(duì)照品,加甲醇制成每1ml含40μg的溶液,即得。
3.2 供試品溶液的制備 取藥材粉末 (過三號(hào)篩)約0.5g,精密稱定,置于具塞錐形瓶中,精密加入50%甲醇50m l,稱定重量,超聲30min。放冷,再稱定重量,用50%甲醇補(bǔ)足減失的重量,搖勻,濾過,精密量取續(xù)濾液25ml,置于蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,殘?jiān)盟s20ml使溶解,并轉(zhuǎn)移至分液漏斗中,用水飽和正丁醇萃取4次,每次20ml,合并正丁醇液,水浴蒸干,殘?jiān)眉状既芙獠⑥D(zhuǎn)移至25ml量瓶中,稀釋定容至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。
3.3 測(cè)定法 分別精密吸取對(duì)照品溶液5μl和供試品溶液10μl,注入液相色譜儀,按上述色譜條件測(cè)定,見圖1。
3.4 線性關(guān)系考察 精密稱取紫花前胡苷對(duì)照品5.00mg置于25m l的量瓶,用甲醇稀釋至刻度,即得濃度為0.20mg ·m l-1的對(duì)照品溶液貯備液,分別精密量取上述貯備液0.2、0.5、1、2、3、4、5ml,置于10m l量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,即得濃度為4.00、10.00、20.00、40.00、60.00、80.00、100.00μg·m l-1的梯度對(duì)照品溶液,精密量取上述梯度對(duì)照品溶液各5μl,按上述色譜條件測(cè)定,以對(duì)照品峰面積Y為縱坐標(biāo),對(duì)照品溶液 (μg/ml)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果表明:紫花前胡苷濃度在4.00μg ·m l-1~100.00μg·ml-1范圍內(nèi)與峰面積具有良好的線性關(guān)系,回歸方程為:Y=270.85+1.3598×104X,r=0.9999。
3.5 精密度試驗(yàn) 精密吸取同一對(duì)照品溶液5μl連續(xù)進(jìn)樣
6次,記錄峰面積,計(jì)算紫花前胡素峰面積的RSD(n=6)為0.4%,表明儀器精密度良好。
3.6 重復(fù)性試驗(yàn) 取同一批藥材,按供試品溶液制備方法平行制備6組供試品溶液,按上述色譜條件測(cè)定,結(jié)果樣品中紫花前胡苷的平均含量(n=6)為0.266%,RSD為2.9%。
3.7 穩(wěn)定性考察 取同一個(gè)供試品溶液,分別于0、2、4、6、8、10、12h進(jìn)樣,按上述色譜條件測(cè)定,結(jié)果紫花前胡苷峰面積的RSD(n=7)為0.3%,表明供試品溶液在12小時(shí)內(nèi)穩(wěn)定。
3.8 加樣回收率試驗(yàn) 精密稱取“3.6”項(xiàng)下已知紫花前胡苷含量的羌活藥材粉末(過三號(hào)篩)約0.25g,分取6份,精密稱定,置于具塞錐形瓶中,分別精密加入濃度為0.0133mg·m l-1的對(duì)照液50m l(精密稱取紫花前胡苷對(duì)照品6.65mg,置于500ml量瓶,用50%甲醇稀釋至刻度,即得濃度為0.0133mg·ml-1的對(duì)照液),稱定重量,超聲30min。放冷,再稱定重量,用濃度為0.0133mg/m l的對(duì)照液補(bǔ)足減失的重量,搖勻,濾過,按 “3.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按上述色譜條件測(cè)定,計(jì)算回收率,結(jié)果平均回收率(n=6)為99.64%,RSD為1.22%。見表1。
表1 加樣回收率試驗(yàn)測(cè)定結(jié)果
3.9 樣品測(cè)定 取產(chǎn)地為四川的羌活藥材,共5批,按“3.2”項(xiàng)下的方法制備供試品溶液,按上述色譜條件測(cè)定,結(jié)果見表2。
表2 不同批次羌活的紫花前胡苷含量
4.1 樣品萃取純化 試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),只對(duì)羌活進(jìn)行超聲處理,供試品中雜質(zhì)較多,而用水飽和正丁醇萃取之后與前者比較,雜質(zhì)大大減少,并且紫花前胡苷的含量無明顯差異,故從保護(hù)色譜系統(tǒng),減少雜質(zhì)干擾方面考慮,選擇用水飽和正丁醇處理純化供試品溶液。試驗(yàn)比較結(jié)果亦表明萃取四次后,第五次的萃取液幾乎不含紫花前胡苷。
4.2 樣品提取方法的選擇 試驗(yàn)中對(duì)加熱回流提取1h和超聲處理30min的樣品中的紫花前胡苷提取效果進(jìn)行對(duì)比,結(jié)果表明兩種方法對(duì)紫花前胡苷的提取效果無明顯差異,但超聲處理方法簡(jiǎn)便快捷,故選擇超聲處理30min。
4.3 提取溶劑的選擇 試驗(yàn)中對(duì)比了甲醇和50%甲醇對(duì)紫花前胡苷提取效果的影響,結(jié)果表明,兩者對(duì)紫花前胡苷的提取效果無明顯差異,故從成本及環(huán)保等方面考慮,選擇50%甲醇為提取溶劑。
4.4 超聲時(shí)間的選擇 試驗(yàn)中對(duì)比了20、30、40min三個(gè)超聲時(shí)間對(duì)紫花前胡苷提取效果的影響,結(jié)果表明30min和40min的提取效果無明顯差異,而比20min的提取效果略高,故選擇超聲處理30min。
4.5 吸收波長(zhǎng)與流動(dòng)相比例選擇 取紫花前胡苷對(duì)照品的甲醇溶液,在紫外分光光度計(jì)190~400nm波長(zhǎng)掃描。結(jié)果在335nm波長(zhǎng)處有最大吸收,故選擇335nm為本品的測(cè)定波長(zhǎng),見圖2。
流動(dòng)相甲醇-水的比例調(diào)節(jié)為32:68時(shí),紫花前胡苷峰與前后峰的分離度均大于1.5。
4.6 孫玉茹等[4]的研究,流動(dòng)相為甲醇-水-乙腈(6∶71∶21)測(cè)定羌活中紫花前胡苷含量,紫花前胡苷的保留時(shí)間較小,試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),供試品雜質(zhì)較多,較小保留時(shí)間可能會(huì)有峰的重疊,分離度不符合要求。朱美曉等[5]的研究,以乙腈-水(15∶85)為流動(dòng)相,使用不同色譜柱Phenomenex Synergi4u Hydro-RPC18,Phenomenex Luna C18和Agilent Extend-C18測(cè)定羌活中紫花前胡苷含量,只有Phenomenex Synergi4u Hydro-RP C18能達(dá)到最佳分離效果,而其他色譜柱都不能有效分離。而本試驗(yàn)使用Agilent HCC18色譜柱(5μm,4.6×250mm),以甲醇-水(32∶68)亦能達(dá)到有效分離。
某些中藥亦含有紫花前胡苷,如紫花前胡、前胡等,并有HPLC法紫花前胡苷含量測(cè)定的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)[6]文獻(xiàn)報(bào)道[7]。
本試驗(yàn)參考上述相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)及文獻(xiàn)的方法,考察各個(gè)因素對(duì)紫花前胡苷提取效果及HPLC色譜分離效果的影響,最終優(yōu)化建立了HPLC法測(cè)定羌活中紫花前胡苷含量的方法,該法操作簡(jiǎn)單,重現(xiàn)性好,結(jié)果準(zhǔn)確,可作為羌活中紫花前胡苷的含量測(cè)定方法提供參考依據(jù)。尤其是中藥復(fù)方制劑成分復(fù)雜,使用水飽和正丁醇萃取可有效地純化紫花前胡苷,減少雜質(zhì),這對(duì)含羌活的復(fù)方制劑的質(zhì)量控制有重大的參考意義。
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Determination of the contents of nodakenin in Notopterygii Rhizoma et Radix by HPLC
HUANG Yu-sheng1,YUAN Xian-lin2*,ZHONG Yu,WANG Ru-jun1
objective:To establish a method for determination of the contents of nodakenin in Notopterygii Rhizoma et Radix by HPLC.Methods:The chromatographic condition:Agilent HC-C18 column(5μm,4.6×250mm),CH3OH-H2O(32-68)as mobile phase,the flow rate is1.0ml·min-1,the detection wavelength is335 nm,the column temperature is 35℃.Results:The calibration curves showed good linearlty in the range of 4.00μg·m l-1~100.00μg·ml-1,the average recoveries is 99.90%,RSD is 1.50%.Conclusion:This method is simple,with exact result and good repeatiton and can be used as the
for determination of the contents of nodakenin of Chinese medicine qianghuo.
Notopterygii Rhizoma et Radix;nodakenin;HPLC
R284.1
A
1007-8517(2013)10-0014-02
2013.03.26)