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腹腔內(nèi)注射腺苷對大鼠中縫背核c-fos表達(dá)的影響

2013-09-22 01:01付立波長春師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院吉林長春130032
中國老年學(xué)雜志 2013年10期
關(guān)鍵詞:茶堿腺苷切片

付立波 (長春師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,吉林 長春 130032)

在缺血、缺氧和血流灌注不足的情況下,大腦中的腺苷濃度迅速上升,內(nèi)源性腺苷對代謝增加和能量不足所引起的組織損傷具有保護(hù)作用,對睡眠具有促進(jìn)作用。抑制中縫背核(DRN)的5-羥色胺(5-HT)能神經(jīng)元,5-HT釋放減少,c-fos蛋白表達(dá)增加,也能促進(jìn)睡眠。許多睡眠因子,如IL-1,褪黑素等都能促進(jìn)睡眠,使CNS內(nèi)c-fos蛋白及c-fos mRNA表達(dá)水平提高〔1~3〕。c-fos誘導(dǎo)及顯示技術(shù)在神經(jīng)系統(tǒng)形態(tài)和功能相結(jié)合的研究中受到了廣泛的應(yīng)用。本實(shí)驗(yàn)擬明確腺苷對大鼠中縫背核c-fos表達(dá)的影響。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動物及分組 采用200~250 g雄性純種Wistar大鼠20只,由吉林大學(xué)動物實(shí)驗(yàn)中心提供,每天對大鼠進(jìn)行3次抓拿訓(xùn)練,進(jìn)行1 w的訓(xùn)練,以減少大鼠對抓拿反應(yīng)的影響。隨機(jī)分三組,每組6只(n=6),即生理鹽水組(對照組)、腺苷組和茶堿組。

1.2 實(shí)驗(yàn)藥品 腺苷、茶堿、生理鹽水、戊巴比妥鈉、4%多聚甲醛0.1 mol/L PBS 500 ml、石蠟、LKBⅢ型超薄切片機(jī)、氧化酶阻斷劑、非免疫動物血清、氧化酶阻斷溶液、兔抗人c-fos多克隆抗體、50 μl生物素、50 μl鏈霉菌抗生物素中性樹膠、蘇木素、梯度酒精、二甲苯、新配制的DAB溶液,所有藥品均由Sigma公司提供。

1.3 裝片制備 將分組后的大鼠分別注入藥劑,注入時間為1 h,時間一到,立即將大鼠用戊巴比妥鈉(40 mg/kg)麻醉,斷頭,隨即開胸,經(jīng)左心室灌注生理鹽水100 ml,繼以灌注含4%多聚甲醛的0.1 mol/L PBS 500 ml進(jìn)行固定,60 min后取出腦組織,置于含4%多聚甲醛的PBS(0.1 mol/L)中后固定2天,取相應(yīng)中縫背核的腦組織塊,用石蠟包埋,修塊,并用LKBⅢ型超薄切片機(jī)切成5~8 μm切片。

1.4 Fos免疫組織化學(xué)染色(ABC法) 將石蠟切片脫蠟和水化,之后用PBS(0.01 mol/L,pH7.4)沖洗3次,每次3 min。接著在每張切片上加一滴過氧化酶阻斷劑(試劑A液),即用抗原修復(fù)液對組織抗原進(jìn)行修復(fù),室溫下孵育15 min。取出切片,每張切片加50μl過氧化酶阻斷溶液(抗體),室溫下孵育10 min,以阻斷內(nèi)源性過氧化物酶的活性。PBS沖洗3次,每次3 min。甩去PBS液,每張切片加50 μl正常非免疫動物血清(試劑B液),室溫下孵育3 min。除去血清,每張切片加50 μl的兔抗人c-fos多克隆抗體,4℃過夜。PBS沖洗3次,每次3~5 min。除去PBS液,每張切片加50 μl生物素標(biāo)記的第二抗體(試劑C),室溫下孵育10 min。PBS沖洗3次,每次3 min。除去PBS液,每張切片加50 μl鏈霉菌抗生物素-過氧化酶溶液(試劑D),室溫下孵育10 min。PBS沖洗3次,每次3 min。除去PBS液,每張切片加100 μl新配制的 DAB溶液,觀察3~10 min。自來水沖洗,蘇木素復(fù)染,PBS沖洗返藍(lán)。切片經(jīng)過梯度酒精脫水干燥,二甲苯透明,中性樹膠封固。

1.5 結(jié)果判斷及統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 細(xì)胞質(zhì)中有紅色顆粒者為陽性細(xì)胞,每只大鼠隨機(jī)取5張切片,在400倍鏡下計(jì)數(shù)核團(tuán)內(nèi)一個視野的Fos免疫反應(yīng)陽性神經(jīng)元(fos-like)的數(shù)量,取其平均數(shù)。在觀察切片時,每張切片計(jì)數(shù)3個高倍鏡視野,計(jì)算平均百分?jǐn)?shù)及標(biāo)準(zhǔn)數(shù),結(jié)果以±s表示,兩組間均數(shù)用配對樣品t檢驗(yàn)。

2 結(jié)果

大鼠腹腔內(nèi)注入腺苷后,中縫背核內(nèi)c-fos蛋白表達(dá)為3.75% ±0.95%,而對照組c-fos蛋白表達(dá)為0.40% ±0.30%,二者相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);腹腔內(nèi)注入茶堿后中縫背核內(nèi)c-fos蛋白表達(dá)為1.56% ±0.45%,與對照組c-fos蛋白表達(dá)無顯著差異(P>0.05);腹腔內(nèi)注入腺苷組c-fos蛋白表達(dá)與腹腔內(nèi)注入茶堿組c-fos蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),表明大鼠腹腔內(nèi)注入腺苷后c-fos蛋白表達(dá)明顯增加,注入茶堿后c-fos蛋白表達(dá)增加不明顯,即腺苷促進(jìn)c-fos蛋白表達(dá)。見圖1。

圖1 大鼠腹腔分別注射腺苷、茶堿及生理鹽水中縫背核內(nèi)c-fos蛋白的表達(dá)(DAB,×400)

3 討論

腺苷是一種抑制性的神經(jīng)遞質(zhì),內(nèi)生腺苷在外周可抑制控制肌肉運(yùn)動的神經(jīng)元釋放乙酰膽堿,抑制交感神經(jīng)釋放去甲腎上腺素。其對中樞神經(jīng)系統(tǒng)的作用包括:調(diào)節(jié)神經(jīng)遞質(zhì)如谷氨酸、多巴胺、5-羥色氨、去甲腎上腺素、GABA等的釋放和降解,增強(qiáng)GABA的抑制功能,抑制大腦皮層中谷氨酸及多巴胺的興奮等。另外,多例動物實(shí)驗(yàn)〔4~6〕已證實(shí)腺苷及其類似物還可以產(chǎn)生鎮(zhèn)靜作用及誘發(fā)睡眠。腺苷促進(jìn)睡眠作用主要是由腺苷受體A1R、A2AR介導(dǎo)的〔7〕。腺苷A1R被腺苷激活后抑制Ca2+內(nèi)流,開放鉀通道,增加K+的電導(dǎo)從而減少了興奮性氨基酸的釋放,限制了膜的去極化,抑制了神經(jīng)元的興奮,導(dǎo)致抑制效應(yīng),有時A2AR也可能參與這個過程。根據(jù)Li等〔8〕的研究報(bào)道可以知道腺苷通過與腺苷A1受體結(jié)合,經(jīng)過鈣離子依賴的蛋白激酶C轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑抑制GABA神經(jīng)元,GABA的釋放減少,c-fos蛋白表達(dá)增加,促進(jìn)睡眠。腺苷與A2A受體結(jié)合,可興奮神經(jīng)元。腺苷是內(nèi)源性促睡眠物質(zhì)之一,具有睡眠調(diào)節(jié)作用,微透析研究發(fā)現(xiàn)前列腺素D2能升高睡眠促進(jìn)區(qū)細(xì)胞外腺苷的水平,腺苷與A2AR結(jié)合能促進(jìn)c-fos蛋白表達(dá),可介導(dǎo)前列腺素D2的睡眠誘導(dǎo)作用〔9〕。中縫背核是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中富含5-HT能神經(jīng)元的一個重要核團(tuán),是參與睡眠調(diào)節(jié)的重要結(jié)構(gòu)。中縫背核5-HT能神經(jīng)元的活動和釋放5-HT積極地參與睡眠和覺醒的調(diào)節(jié)。5-HT是中縫背核內(nèi)影響睡眠的因子,是一種重要的神經(jīng)遞質(zhì),參與睡眠調(diào)節(jié)〔10〕。電損毀中縫背核可導(dǎo)致動物失眠,適當(dāng)電刺激可使清醒動物立刻進(jìn)入睡眠狀態(tài)。抑制5-HT能神經(jīng)元的活動,5-HT釋放量減少,中縫背核內(nèi)c-fos蛋白表達(dá)增加,可以促進(jìn)睡眠。本實(shí)驗(yàn)大鼠腹腔內(nèi)注射腺苷后,中縫背核內(nèi)c-fos蛋白表達(dá)也增加,且腺苷非特異受體拮抗劑茶堿具有促進(jìn)覺醒的作用,為腺苷具有促進(jìn)睡眠的作用提供了依據(jù)。

腺苷在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的作用廣泛,目前研究發(fā)現(xiàn),它還與記憶和衰老、癲癇、痛覺調(diào)質(zhì)、帕金森癥、精神病樣的行為、腦內(nèi)獎賞系統(tǒng)、痛覺調(diào)節(jié)、抗焦慮等效應(yīng)有一定相關(guān)性〔11〕。

1 霍 艷,李經(jīng)菜,江 巖,等.褪黑素對小鼠視交叉上核c-fos基因表達(dá)的影響〔J〕.中國藥理通報(bào),2000;16(3):261-4.

2 付立波,盛艷敏,付艷平,等.腺苷對大鼠視交叉上核神經(jīng)元自發(fā)放電的影響〔J〕.山東醫(yī)藥,2009;49(41):29-30.

3 付立波,王學(xué)斌,劉鳳蓮.腺苷對大鼠韁核神經(jīng)元自發(fā)放電活動及cfos蛋白表達(dá)的影響〔J〕.中國免疫學(xué)雜志,2010;26(2):141-5.

4 Ticho SR,Radulovacki M.Role of adenosine in sleep and temperature regulation in the preoptic area of rats〔J〕.Pharmacol Biochem Behav,1991;40(1):33-40.

5 Basheer R,Halldner L,Alanko L,et al.Opposite changes in adenosine AL and A2A receptor mRNA in the rat following sleep deprivation〔J〕.Neu-roscience,2001;12(8):157-80.

6 Huston JP,Haas HL,Boix F,et al.Extracellular adenosine levels in neoseriatum and hippocampal during rest and activity periods of rats〔J〕.Neuroscience,1996;73(1):99-107.

7 Rebo N,Rpdrigues RJ,Lopes LV,et al.AdenosineA(1)and A(2A)receptors are coexpressed in pyramidal neurons and colocalized in glutamatergic nerve terminals of the rat hippocampus〔J〕.Neuroscience,2005;133(1):79-83.

8 Li Hui,Wu Le,Li YQ.Adeonsine suppresses GABAA receptor-mediated responses in rat sacral dorsal commissural neurons〔J〕.Autonomic Neurosci:Basic Clin,2004;111(2):1-79.

9 Hayaishi O.Prostaglandins and sleep〔J〕.Nippon Rinsho,1998;56(2):285-9.

10 Maitre M,Cielsielski R,Lehman NE,et al.Protective effects of adenosine and nicotinemide against audio genic seizure〔J〕.Biochenmacol,1974;23(20):2807-16.

11 Onoe H,Ueno R,F(xiàn)ujita L,et al.Prostaglandin D2,a cerebaral sleep inducing substance in monkeys〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,1998;5(11):4082-6.

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