封 菲 洪鳴鳴 高 越 杭州市第一人民醫(yī)院老年科 杭州310003
基質(zhì)金屬蛋白酶-9(Matrix metalloproteinase-9,MMP-9)屬于基質(zhì)金屬蛋白酶家族,能夠降解和重塑細(xì)胞外基質(zhì)。已有研究[1],證實(shí)腦缺血再灌注后MMP-9 表達(dá)增多,并通過(guò)降解基底膜和連接蛋白而破壞血腦屏障(blood-brain barrier,BBB),導(dǎo)致血管源性腦水腫。葛根素是從葛根中提取的一種異黃酮類化合物,有研究[2]證實(shí),葛根素具有擴(kuò)張腦血管,改善微循環(huán),抗血小板聚集,從而降低血液黏滯度以及抗氧自由基等多重途徑起到腦保護(hù)的作用。本研究擬通過(guò)觀察葛根素對(duì)大鼠腦缺血再灌注后是否能抑制MMP-9的表達(dá),減輕血腦屏障的破壞和腦水腫,探討葛根素腦保護(hù)作用的可能機(jī)制。
1.1 動(dòng)物模型制備及處理 成年健康雄性Sprague-Dawley大鼠54只,體質(zhì)量250~300g,清潔度Ⅱ級(jí),由浙江省醫(yī)學(xué)科學(xué)院動(dòng)物中心提供,隨機(jī)分為假手術(shù)組、對(duì)照組和藥物組,每組18只,各組再平均分為三個(gè)亞組,分別用于血腦屏障通透性測(cè)定、腦含水量測(cè)定及免疫組化。用10%水合氯醛腹腔注射麻醉后,按照Bederson 等[3]的方法制作大鼠腦缺血再灌注模型,手術(shù)前后大鼠肛溫維持在(37±0.5)℃。缺血90min 后抽提栓線至頸外動(dòng)脈殘端內(nèi)進(jìn)行再灌注。藥物組于缺血前1h 給予葛根素注射液(劑量70mg/kg)腹腔內(nèi)注射,隨后每間隔8h 再次注射,對(duì)照組及假手術(shù)組給予等量生理鹽水。
1.2 試劑和儀器 葛根素注射液(浙江康恩貝制藥公司)、伊文思藍(lán)(Evan's blue,EB)溶液(sigma 公司)、兔抗大鼠MMP-9 多克隆抗體、SABC 試劑盒及DAB 顯色劑(武漢博士德生物公司)、Olympus-CH2顯微鏡(日本歐林巴斯光學(xué)工業(yè)株式會(huì)社)
1.3 BBB 通透性測(cè)定 大鼠處死前2h,尾靜脈注入2%EB 2mL/kg。再灌注48h時(shí),用1%肝素生理鹽水經(jīng)心室灌流,然后迅速取損傷側(cè)腦組織,稱取濕重后置入加有5mL 甲酰胺的試管中,54℃恒溫培養(yǎng)箱孵育24h,讓組織中的EB 充分溶解在甲酰胺溶液中。將溶有EB的甲酰胺溶液過(guò)濾,用分光光度計(jì)(波長(zhǎng)632nm)測(cè)各管吸光度(A)值,并制作EB標(biāo)準(zhǔn)曲線得出線性回歸方程,根據(jù)此線性回歸方程計(jì)算溶液中EB濃度,以每克腦組織濕重所含EB的微克數(shù)(μg/g)表示BBB通透性。
1.4 腦組織含水率測(cè)定 采用干濕稱重法。大鼠快速斷頭取腦,取右側(cè)大腦半球用電子天平獲取濕重,置入100攝氏度恒溫干燥箱內(nèi)48h再獲取干重,腦組織含水率計(jì)算公式:(濕重-干重)/濕重×100%
1.5 腦組織MMP-9 表達(dá) 采用免疫組織化學(xué)技術(shù)檢測(cè)。大鼠腦缺血再灌注48h時(shí)以4%多聚甲醛液約200mL經(jīng)心臟灌注固定,快速斷頭冰盤(pán)上取腦,視交叉和其后4mm 處兩點(diǎn)冠狀切片,片厚4mm,常規(guī)脫水、透明、浸蠟、包埋、用切片機(jī)連續(xù)5mm 厚冠狀切片。石蠟切片經(jīng)常規(guī)脫蠟、水化、煮沸法修復(fù),過(guò)氧化氫阻斷,滴加兔抗大鼠MMP-9 多克隆抗體(工作濃度1:100),根據(jù)SABC試劑盒說(shuō)明書(shū)對(duì)切片標(biāo)本進(jìn)行操作,予DAB 顯色,自來(lái)水沖洗后蘇木素復(fù)染,脫水、封片,表達(dá)MMP-9 處在光鏡下為棕黃色物質(zhì)。每張切片先在低倍鏡下觀察,在腦梗死皮質(zhì)缺血區(qū)的位置隨機(jī)采集5個(gè)不重疊的高倍視野(×400),計(jì)數(shù)每張切片的總陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)。
2.1 各組大鼠腦組織EB 含量和含水率比較 對(duì)照組及藥物組大鼠腦組織EB 含量及含水率較假手術(shù)組顯著增加(P<0.05);與對(duì)照組比較,藥物組腦組織EB含量及含水率明顯減少(P<0.05),見(jiàn)表1。
表1 各組大鼠腦組織EB含量及腦組織含水率比較()
表1 各組大鼠腦組織EB含量及腦組織含水率比較()
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與假手術(shù)組比較,△P<0.05
2.2 各組大鼠腦組織MMP-9 表達(dá) 三組大鼠的左側(cè)(未缺血側(cè))大腦半球基本未見(jiàn)陽(yáng)性細(xì)胞(每張切片的5個(gè)高部視野下MMP-9 總陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)為1.33±1.20),而對(duì)照組和藥物組大鼠的右側(cè)大腦半球皮質(zhì)缺血區(qū)均可見(jiàn)胞漿呈棕黃色的MMP-9 陽(yáng)性細(xì)胞表達(dá)。藥物組MMP-9 陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)(33.50±2.17),較對(duì)照組(38.17±3.13)明顯減少(P<0.05)。
腦缺血再灌注損傷是臨床上腦外傷、腦腫瘤、腦血管病等許多疾病伴發(fā)的常見(jiàn)病理?yè)p害過(guò)程,腦缺血再灌注損傷后的直接結(jié)果是形成腦水腫,而血管源性水腫是腦水腫的始動(dòng)因素,在腦組織含水量和顱內(nèi)壓變化中起著關(guān)鍵作用,也是針對(duì)腦水腫采取干預(yù)措施的主要對(duì)象。
MMPs是參與組織重塑的鋅依賴的內(nèi)肽酶,正常時(shí)以酶原形式存在,在細(xì)胞外激活,MMPs 可降解多種細(xì)胞外基質(zhì)蛋白包括血腦屏障的神經(jīng)血管基底膜和緊密連接蛋白因而成為研究熱點(diǎn)[4]。它的調(diào)節(jié)是復(fù)雜和嚴(yán)格的過(guò)程,其調(diào)節(jié)失控與創(chuàng)傷性腦損傷、腦卒中及神經(jīng)變性時(shí)血腦屏障破壞和突觸丟失相關(guān)[5-8]。MMP-9 基因缺失小鼠在腦外傷及卒中[9-10]的對(duì)照試驗(yàn)中均出現(xiàn)水腫和炎癥反應(yīng)的減輕及腦白質(zhì)完整性和神經(jīng)功能的改善。一系列應(yīng)用MMP 抑制劑的實(shí)驗(yàn)也證實(shí)可減輕腦水腫和腦梗死。但也有研究證實(shí)MMP具有雙相作用[11]。它在腦外傷和卒中后康復(fù)階段的神經(jīng)再生、神經(jīng)血管重塑中起重要作用[11-12]。
Rosenberg 等[13]發(fā)現(xiàn)在腦缺血再灌注損傷后24h MMP-9開(kāi)始有表達(dá),48h后可在血管內(nèi)皮細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、神經(jīng)元中觀察到MMP-9陽(yáng)性細(xì)胞表達(dá)。多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)腦缺血再灌注后MMP-9 表達(dá)高峰和BBB破壞及腦水腫高峰均在腦缺血再灌注后48h。
本實(shí)驗(yàn)選取腦缺血再灌注后48h為時(shí)間點(diǎn),發(fā)現(xiàn)缺血再灌注后大鼠缺血區(qū)周邊皮質(zhì)內(nèi)皮細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞中MMP-9表達(dá)顯著增多,血腦屏障通透性和腦組織含水率也顯著增加,表明MMP-9參與了腦缺血再灌注損傷;本實(shí)驗(yàn)中藥物組大鼠缺血側(cè)腦組織內(nèi)的EB 含量和腦組織含水率也較對(duì)照組下降(P<0.05),提示葛根素干預(yù)后腦缺血再灌注大鼠BBB破壞程度和腦水腫得到減輕;研究還發(fā)現(xiàn)葛根素干預(yù)可減少大鼠腦缺血再灌注48h 后MMP-9的表達(dá),我們推測(cè)葛根素可能通過(guò)下調(diào)MMP-9表達(dá),減輕BBB的破壞和腦水腫,從而在腦缺血再灌注損傷中發(fā)揮其保護(hù)作用。
葛根素在臨床上廣泛地應(yīng)用于缺血性腦血管病的治療。葛根素具有擴(kuò)張腦血管,改善微循環(huán),降低血漿內(nèi)皮素,抗血小板聚集,抗氧自由基,緩解腦血管痙攣,阻斷局部缺血缺氧及細(xì)胞內(nèi)鈣超載的惡性連鎖反應(yīng),抑制誘生型NO 合酶系統(tǒng)的激活,干預(yù)細(xì)胞凋亡等作用[2]。本研究表明,葛根素可能通過(guò)抑制MMP-9的活化和減輕血腦屏障通透性起到腦缺血再灌注損傷的腦保護(hù)作用。
[1]Rosenberg GA,Yang Y.Vasogenic edema due to tight junction disruption by matrix metalloproteinases in cerebral ischemia[J].Neurosurg Focus,2007,22(5):E4.
[2]潘洪平,楊嘉珍,莫祥蘭,等.葛根素注射液對(duì)急性腦缺血模型大鼠腦細(xì)胞損傷的保護(hù)作用[J].中國(guó)中藥雜志,2005,30(6):457-459.
[3]Berderson JB,Pitts LH,Tsuji M,et al.Rat middle cerebral artery occlusion:evaluation of the model and development of a neurologic examination[J].Stroke,1986,17(3):472-476.
[4]Grossetete M,Phelps J,Arko L,et al.Elevation of matrix metalloproteinases 3 and 9 in cerebrospinal fluid and blood in patients with severe traumatic brain injury[J].Neurosurg,2009,65(4):702-708.
[5]Candelario-Jalil E,Yang Y,Rosenberg GA.Diverse roles of matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in neuroinflammation and cerebral ischemia[J].Neuroscience,2009,158(3):983-994.
[6]Ding JY,Kreipke CW,Schafer P,et al.Synapse loss regulated by matrix metalloproteinases in traumatic brain injury is associated with hypoxia inducible factor-1alpha expression[J].Brain Res,2009,1268(5):125-134.
[7]Rosenberg GA.Matrix metalloproteinases and their multiple roles in neurodegenerative diseases[J].Lancet Neurol,2009,8(2):205-216.
[8]Rosenberg GA,Yang Y.Vasogenic edema due to tight junction disruption by matrix metalloproteinases in cerebral ischemia[J].Neurosurg Focus,2007,22(2):E4.
[9]Asahi M,Wang X,Mori T,et al.Effects of matrix metalloproteinase-9 gene knock-out on the proteolysis of bloodbrain barrier and white matter components after cerebral ischemia[J].J Neurosci,2001,21(19):7724-7732.
[10]Gidday JM,Gasche YG,Copin JC,et al.Leukocyte-derived matrix metalloproteinase-9 mediates blood-brain barrier breakdown and is proinflammatory after transient focal cerebral ischemia[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2005,289(2):H558-H568.
[11]Zhao B-Q,Wang S,Kim H-Y,et al.Role of matrix metalloproteinases in delayed cortical responses after stroke[J].Nat Med,2006,12(4):441-445.
[12]Falo MC,F(xiàn)illmore HL,Reeves TM,et al.Matrix metalloproteinase-3 expression profile differentiates adaptive and maladaptive synaptic plasticity induced by traumatic brain injury[J].J Neurosci Res,2006,84(4):768-781.
[13]Rosenberg GA,Cunningham LA,Wallace J,et al.Immunohistochemistry of matrix metalloproteinases in reperfusion injury to rat brain activation of MMP-9 llinked to stromelysin-1 and microglia in cell cultures[J].Brain Res,2001,893(1~2):104-112.