劉曉芹,郝 瑤,郭滿棟
(山西師范大學(xué) 化學(xué)與材料學(xué)學(xué)院,山西 臨汾 041004)
氨基酸作為人體第一營養(yǎng)素——蛋白質(zhì)的基本組成單位在許多神經(jīng)化學(xué)機(jī)制(如記憶、食欲、疼痛的控制和傳輸?shù)?中起到關(guān)鍵作用[1-2]. 這些化合物由于缺失天然生色團(tuán)和熒光團(tuán)而不能運(yùn)用光譜法和熒光法對(duì)其測(cè)定,因此運(yùn)用直接電化學(xué)法對(duì)氨基酸的測(cè)定引起人們的廣泛關(guān)注. 許多關(guān)于氨基酸電吸附、電氧化的研究主要是以貴重金屬(如鉑、金、銀)為基底[3-10],這些研究的弊端是中間產(chǎn)物的聚積和吸附而引起的電極污染嚴(yán)重. 為了改善這一弱點(diǎn),包括鎳及其氫氧化物在內(nèi)的修飾材料被引入.
鎳氫氧化物膜的形成理論上有多種方法:鎳金屬的電氧化,Ni(NO3)2在電解質(zhì)中的陰極沉積,微量含Ni2+溶液的揮發(fā)[11-12]等. 鎳的氫氧化物是一種多功能材料,它在電變色、氨基酸、糖類、醇類、雙氧水以及甲烷等的測(cè)定方面的廣泛應(yīng)用已有報(bào)道[13-17]. 如此廣泛的應(yīng)用與它的化學(xué)穩(wěn)定性、與電極的兼容性是分不開的. 鎳氫氧化物膜能強(qiáng)烈吸附有機(jī)物質(zhì)并對(duì)有機(jī)分子的氧化起到催化作用.
作者利用恒電位沉積法成功將鎳的氫氧化物沉積到玻碳電極表面,制備了穩(wěn)定性高、催化活性好的鎳氫氧化物膜修飾玻碳電極. 并對(duì)膜形成過程中的關(guān)鍵因素進(jìn)行了研究,確定了制備具有最佳催化活性鎳氫氧化物膜的方案. 將膜電極用于生物樣品L-賴氨酸的測(cè)定,發(fā)現(xiàn)此膜電極對(duì)L-賴氨酸在電極表面的電化學(xué)反應(yīng)具有明顯的催化作用. 據(jù)此制備了一種制備過程簡(jiǎn)單、穩(wěn)定性好的電流型傳感器.
LK2005A型電化學(xué)工作站(天津市蘭力科化學(xué)電子高技術(shù)有限公司);雷磁PXSJ-216型離子計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司);KQ-250B超聲波清洗器(昆山市超聲波儀器制造廠).
電化學(xué)實(shí)驗(yàn)采用三電極體系:Ag/AgCl(飽和KCl)電極為參比電極;鉑絲電極為輔助電極;空白玻碳電極和鎳氫氧化物膜修飾玻碳電極為工作電極.
NaOH,KCl,NiCl2(天津科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心);制備了0.5×10-3~4.0×10-3mol/L不同濃度的NiCl2溶液.L-賴氨酸(鄭翔化學(xué)試劑研究所),儲(chǔ)備液濃度為1.0×10-3mol/L,儲(chǔ)存于4 ℃待用. 所用玻璃儀器依次用HNO3、乙醇、二次蒸餾水清洗,晾干后使用;其余實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水;所有電化學(xué)試驗(yàn)均在室溫下進(jìn)行.
1.2.1 玻碳電極預(yù)處理
取玻碳電極,先后用0.3 μm Al2O3和0.05 μmAl2O3拋光成鏡面,依次用二次蒸餾水,HNO3溶液(體積比1∶1),丙酮,二次蒸餾水超聲洗滌,各5 min,N2吹干備用.
1.2.2 鎳氫氧化物膜修飾過程
將預(yù)處理的玻碳電極浸入由1.0 mol/LKCl配制的0.3 mol/L的NiCl2溶液中,恒電位下富集310 s,隨后在-0.8 ~1.2 V范圍內(nèi)以100 mV/s的速率循環(huán)伏安掃描6圈,將電極移至0.1 mol/L的NaOH溶液中,在0.1 ~0.7 V電位范圍內(nèi),掃速340 mV/s,循環(huán)伏安掃描直至曲線穩(wěn)定,即得到鎳氫氧化物膜修飾的玻碳電極. 用二次蒸餾水洗凈晾干備用.
1.2.3 樣品測(cè)定
采用三電極體系(鎳氫氧化物膜修飾電極為工作電極,Ag/AgCl(飽和KCl)為參比電極,鉑絲電極為輔助電極),在KCl-NaOH緩沖溶液中對(duì)L-賴氨酸進(jìn)行測(cè)定.
2.1.1 鎳氫氧化物膜的制備
圖1是在鎳氫氧化物膜形成過程中,鎳離子在1.0 mol/LKCl溶液中在玻碳電極上發(fā)生反應(yīng)的循環(huán)伏安圖. 圖中出現(xiàn)了一個(gè)陰極峰和兩個(gè)陽極峰,對(duì)應(yīng)的電位分別是0.420、0.726、1.064 V. 推測(cè)這是由于在負(fù)向掃描的過程中,已經(jīng)富集的Ni2+被還原成鎳膜沉積到玻碳電極上,在正向掃描時(shí)鎳又被氧化且與溶液中的Cl-形成不同配位數(shù)的鎳氯配合物,與兩個(gè)陽極峰相對(duì)應(yīng).
將電極移至0.1 mol/L的NaOH溶液中,其沉積的循環(huán)伏安圖見圖2.由圖可見隨著掃描圈數(shù)的增加,氧化峰與還原峰間的電位差(ΔE=Epa-Epc)逐漸增大,表明反應(yīng)的可逆性逐漸變差. 峰電流也隨之增大并趨于穩(wěn)定,推測(cè)是由于鎳氫氧化物膜逐漸沉積,使OH-的濃度逐漸降低,擴(kuò)散到電極表面參加反應(yīng)的OH-越來越少. 具體反應(yīng)過程表示為:
制備好的鎳氫氧化物膜修飾電極用二次蒸餾水洗凈、晾干.
圖1 1.0 mol/L KCl溶液中的鎳離子在玻碳電極上的循環(huán)伏安圖 掃描速度:0.1 V/sFig.1 CV of 1.0×10-3 mol/L nickel ion on the bare CPE in 1.0 mol/L KCl at a scan rate of 0.1 V/s
圖2 鎳氫氧化物膜在0.1 mol/L的NaOH溶液中沉積過程的循環(huán)伏安圖掃描速度:0.34 V/sFig.2 CV of electrodeposition of nickel hydroxide film on the bare GCE in 0.1 mol/L NaOH at a scan rate of 0.34 V/s
2.1.2 鎳氫氧化物膜制備條件優(yōu)化
為了得到均勻的、電流響應(yīng)高的鎳氫氧化物膜電極,對(duì)恒電位沉積過程中的富集時(shí)間t(s)以及鎳離子濃度進(jìn)行了研究. 研究了沉積時(shí)間在200 ~360 s范圍內(nèi),所形成的鎳氫氧化物膜電極對(duì)L-賴氨酸催化活性的影響. 通過測(cè)量還原峰電流的大小來表征催化活性的高低. 富集時(shí)間很短時(shí),形成的鎳氫氧化物膜較薄,參與反應(yīng)的活性位點(diǎn)少,電流響應(yīng)低;隨著富集時(shí)間的增加氫氧化物膜越來越厚,參加反應(yīng)的活性位點(diǎn)隨之增多,電流響應(yīng)高;當(dāng)沉積時(shí)間過長時(shí),沉積的鎳氫氧化物膜過厚,電子傳遞阻力增大,使電流響應(yīng)降低. 優(yōu)化結(jié)果如圖3所示,可知優(yōu)化富集時(shí)間為310 s.
圖3 富集時(shí)間對(duì)鎳氫氧化物膜催化活性的影響Fig.3 The plot of reductive peak currents vs. accumulation time
圖4 鎳離子濃度對(duì)鎳氫氧化物膜修飾電極催化活性的影響Fig.4 The plot of reductive peak currents vs. concentration of nickel ion
圖4所示是鎳氫氧化物膜修飾電極催化活性隨鎳離子濃度變化關(guān)系圖. 由圖4可見在一定范圍內(nèi),鎳離子濃度越大,所成膜的活性越高,并在1.0×10-3mol/L達(dá)到最高. 當(dāng)鎳離子濃度再繼續(xù)增大時(shí),所成膜的傳質(zhì)阻力也隨之增大,而使膜的催化活性降低.
圖5為在0.1 mol/L的NaOH溶液中,鎳氫氧化物膜修飾電極在不同掃描速度下的循環(huán)伏安圖. a~i,a′~i′表示掃描速率分別為160、180、220、240、260、280、300、320、340 mV/s.
由圖5可見在160~340 mV/s范圍內(nèi),隨著掃速的增加,所成膜的電化學(xué)響應(yīng)增高,并在340 mV/s時(shí)達(dá)到最大. 如圖6所示,在掃速160~340 mV/s范圍內(nèi),氧化峰電流與掃速的平方根成正比,線性方程為Ipa(μA)=-96.379v1/2(V/s)+7.290 5. 表明鎳氫氧化物膜在玻碳電極表面的電化學(xué)反應(yīng)是受擴(kuò)散控制的.
圖5 鎳氫氧化物膜修飾電極在0.1 mol/L NaOH中,在不同掃描速率下的循環(huán)伏安圖Fig.5 CV of nickel hydroxide with different scan rate on GCE in 0.1 mol/L NaOH
圖6 氧化峰電流與掃描速度平方根關(guān)系Fig.6 The plot of anodic peak currents vs. square root of scan rates
用循環(huán)伏安法對(duì)修飾過程中電極表面的變化進(jìn)行表征,圖7為裸電極和鎳氫氧化物膜修飾電極在含有0.4 mol/LKNO3,4.0×10-4mol/L K3Fe(CN)6液溶中的循環(huán)伏安圖. 曲線a中可見一對(duì)較弱的氧化還原峰,且可逆性較差,而在曲線b中氧化峰電流和還原峰電流均明顯增大,峰間距縮小,可逆性變好,表明鎳氫氧化物膜促進(jìn)了電子在電極表面的傳遞速度. 這可能與電極表面電化學(xué)反應(yīng)Ni(OH)2/NiOOH促進(jìn)了電子轉(zhuǎn)移有關(guān).
圖8為裸玻碳電極和鎳氫氧化物膜修飾玻碳電極在含1 mmol/L的L-賴氨酸的0.1 mol/L的NaOH溶液中的循環(huán)伏安圖. 由曲線a可以看出,L-賴氨酸在裸玻碳電極上沒有響應(yīng),表明L-賴氨酸在此電化學(xué)窗口(0.1~0.7 VvsAg/AgCl)下是穩(wěn)定的. 但是在鎳氫氧化物膜修飾電極上,可以看到一對(duì)明顯的氧化還原峰,表明鎳氫氧化物膜電極對(duì)L-賴氨酸具有電催化作用. 且Epa和Epc分別為0.427 V和0.334 V, ΔE=0.083 V,氧化峰和還原峰電流之比Ipa/Ipc= 2.36 ≠1,表明L-賴氨酸在鎳氫氧化物膜修飾電極上發(fā)生了不可逆的電化學(xué)反應(yīng),鎳氫氧化物膜對(duì)L-賴氨酸在玻碳電極上的電化學(xué)反應(yīng)具有催化作用.
圖7 兩種電極在探針分子K3[Fe(CN)6]溶液中的CV圖(a)裸玻碳電極(b)鎳氫氧化物膜修飾電極Fig.7 CV of blank glass carbon electrode(a) and modified glass carbon electrode (b) by nickel hydroxide film in K3 [Fe(CN)6] solution
(a)裸電極(b)鎳氫氧化物膜修飾電極圖8 兩種電極在含1mmol/L L-賴氨酸的0.1 mol/L的KCl-NaOH溶液中的CV曲線Fig.8 CV of two electrode in 0.1 mol/L KCl-NaOH solution containing 1 mmol/L L-lysine
(a)不含L-賴氨酸的KCl- NaOH溶液(b)含1mmol/L L-賴氨酸的KCl-NaOH溶液圖9 鎳氫氧化物膜修飾電極在兩種溶液中的循環(huán)伏安圖Fig.9 CV of modified glass carbon electrode by nickel hydroxide film in KCl-NaOH solution(a)and KCl-NaOH solution containing 1 mmol/L L-lysine(b)
圖9為鎳氫氧化物膜修飾電極在緩沖溶液(pH= 12.6的KCl-NaOH溶液)和含1 mmol/LL-賴氨酸的底液中的循環(huán)伏安圖. 由曲線a可以看出鎳氫氧化物膜修飾電極在緩沖溶液中有一對(duì)明顯的氧化還原峰,當(dāng)緩沖溶液中加入1 mmol/L的L-賴氨酸以后,電流響應(yīng)明顯降低,原因推測(cè)為L-賴氨酸中的-COOH在堿性條件下去質(zhì)子化,與帶負(fù)電的鎳氫氧化物膜表面存在排斥作用,使電流響應(yīng)降低.
2.4.1 pH的影響
鎳氫氧化物膜修飾電極在不同pH(12.0~13.0)的KCl-NaOH緩沖溶液中對(duì)L-賴氨酸的催化作用不同,具體情況如圖10所示.
當(dāng)12.0< pH <12.6時(shí),氧化峰電流隨著pH增大而增大,當(dāng)12.6< pH <13.0時(shí),氧化峰電流隨pH增大而減小. 當(dāng)pH=12.6時(shí),L-賴氨酸在KCl-NaOH緩沖溶液中的氧化還原峰峰形好,峰電流響應(yīng)最高,所以pH=12.6被選做本實(shí)驗(yàn)的最佳pH. 取氧化峰與還原峰電位的平均值做式量電位E0′,圖11研究了式量電位與pH的關(guān)系,當(dāng)12.0 圖10 氧化峰電流與pH關(guān)系圖Fig.10 The plot of anodic peak currents vs.pH 圖11 式量電位與pH的關(guān)系圖Fig.11 The plot of E0′ vs. pH 2.4.2 掃描速率的影響 如圖12所示,掃描速率在0.16 ~0.34 V/s范圍內(nèi),氧化峰電位隨掃描速率的增大而向正電位方向移動(dòng),E-logv(V/s)的線性方程為:E=0.059 7 logv(V/s)+0.466 7斜率2.303RT/ɑnF=0.059 7,代入求的ɑn=0.99,ɑ=0.5,n≈2, 表明L-賴氨酸在鎳氫氧化物膜修飾電極上發(fā)生的反應(yīng)有兩個(gè)電子參加. 圖13是氧化峰電流與掃描速率線性關(guān)系圖,線性方程是Ipa(μA)=-146.88v(V/s)+6.8427,R2=0.995 5. 表明L-賴氨酸在鎳氫氧化物膜修飾電極上發(fā)生的電化學(xué)反應(yīng)主要受表面吸附控制. 2.4.3 線性范圍與檢出限 用差示脈沖伏安法研究了鎳氫氧化物膜修飾電極對(duì)生物樣品L-賴氨酸的電化學(xué)響應(yīng),結(jié)果如圖14所示. 圖15是氧化峰電流與L-賴氨酸濃度在1.0 ×10-5~1.0×10-4mol/L范圍內(nèi)的線性關(guān)系圖,L-賴氨酸濃度在1.0 ×10-6~1.0×10-5mol/L,4.0 ×10-7~1.0×10-6mol/L范圍內(nèi)與峰電流均呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,線性回歸方程和相關(guān)系數(shù)如下: ip=0.949 9c-41.293(ip:μA,c:1.0 ×10-5mol/L)r=0.993; ip=0.937 5c-50.228(ip:μA,c:1.0 ×10-6mol/L)r=0.995; ip=0.706 8c-80.592(ip:μA,c:1.0 ×10-7mol/L)r=0.976; 檢出限為4.0×10-7mol/L. 圖12 不同掃描速率下3.0×10-4mol/L 的L-賴氨酸在鎳氫氧化物膜修飾電極上的CV圖Fig.12 CV of 3.0×10-4mol/L L-lysine solution on glass carbon electrode modified by nickel hydroxide film with different scan rate 圖13 氧化峰電流與掃描速率關(guān)系圖Fig.13 The plot of anodic peak currents vs. scan rates (a) 9.0×10-5 (b)8.0×10-5 (c) 7.0×10-5 (d)6.0×10-5(e)5.0×10-5(f) 4.0×10-5 (g) 3.0×10-5(h) 2.0×10-5 mol/L圖14 修飾電極在不同濃度的L-賴氨酸下的差示脈沖伏安圖Fig.14 DPV of different concentrations of L-lysine at The Ni(OH)2/GCE 圖15 還原峰電流與L-賴氨酸濃度的線性關(guān)系圖Fig.15 The plot of reductive peak currents vs. concentration of L-lysine 2.4.4 穩(wěn)定性和重現(xiàn)性 在相同條件下,制備同一批鎳氫氧化物膜修飾電極5根,分別對(duì)1 mmol/L的L-賴氨酸測(cè)定5次,不同電極之間,計(jì)算相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為4.9%,同一電極不同次測(cè)定的標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為4.7%. 表明鎳氫氧化物膜修飾電極的重現(xiàn)性較好. 制備修飾電極3根,放于室溫下7 d,電極響應(yīng)性能為初始值的94%, 20d后,電極響應(yīng)性能為初始值的82.9%,表明鎳氫氧化物膜修飾電極具有一定的穩(wěn)定性. 電極不用時(shí),于冰箱中-4 ℃保存?zhèn)溆? 實(shí)驗(yàn)利用恒電位沉積法制備了鎳氫氧化物膜修飾電極,并對(duì)膜形成過程中的影響因素進(jìn)行了研究,確定了當(dāng)鎳離子的濃度為1.0×10-3mol/L,富集時(shí)間為310 s時(shí),所形成的鎳氫氧化物膜具有最佳催化活性;且此膜形成過程受擴(kuò)散控制. 將膜電極用于生物樣品L-賴氨酸的測(cè)定,確定了膜電極在最佳實(shí)驗(yàn)條件下對(duì)L-賴氨酸具有明顯的催化活性,檢測(cè)限達(dá)4.0×10-7mol/L. 參考文獻(xiàn): [1] MEIJER A J, DUBBELHUIS P F. 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