李新舟,張懷宇,許友玲
(福建師范大學(xué)閩南科技學(xué)院生命科學(xué)與化學(xué)系,福建 泉州362332)
銀杏體內(nèi)含有許多生物活性物質(zhì),可以抵御昆蟲、細(xì)菌和真菌的侵入,銀杏葉在中國(guó)作為傳統(tǒng)的中草藥已經(jīng)有幾千年的歷史,受到國(guó)內(nèi)外醫(yī)學(xué)界的高度重視[1]。
早在20世紀(jì)60年代初,干銀杏葉的丙酮-水(60∶40)提取物被用于治療腦部供血不足,取得了非常顯著的療效且沒(méi)有明顯的副作用[2]。此后,其它國(guó)家相繼致力于銀杏制品的開(kāi)發(fā)。現(xiàn)代科學(xué)研究證明,銀杏葉含有200多種藥用成分,其中黃酮和萜內(nèi)酯是銀杏葉中兩類重要的生理活性物質(zhì),具有捕獲自由基,抑制血小板活化因子,預(yù)防和治療心、腦血管疾病、老年癡呆,擴(kuò)張血管、降低血脂、抗衰老等藥理作用[3-4]。進(jìn)一步研究表明,銀杏葉提取物還具有較強(qiáng)的抗腫瘤、抗寄生生物、抗病毒活性[5]。
近年來(lái),銀杏葉制劑與銀杏葉粗提取物越來(lái)越多地用于保健食品及飲品。作者用乙醇回流法提取銀杏葉總黃酮,考察料液比(g∶mL,下同)、乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取時(shí)間、提取溫度等因素對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響,通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化了銀杏葉總黃酮提取工藝,并進(jìn)一步研究了微波輔助對(duì)銀杏葉總黃酮提取的影響。
銀杏葉,山東臨沂郯城。
槲皮素對(duì)照品;無(wú)水乙醇(AR),石油醚,5%亞硝酸鈉,4%氫氧化鈉,10%硝酸鋁,4%鹽酸,蒸餾水。
1.2.1 銀杏葉粉末的制備
將銀杏葉清洗干凈后于70℃烘干5~6h,然后用高速多功能粉碎機(jī)粉碎,過(guò)40目篩。取適量的銀杏葉粉末用石油醚于50℃回流提取,去脂除雜,過(guò)濾,將濾渣風(fēng)干,備用。
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
準(zhǔn)確稱取10mg槲皮素對(duì)照品,配制成0.1mg·mL-1的槲皮素標(biāo)準(zhǔn)溶液作為對(duì)照溶液。精密量取對(duì)照溶液0.5mL、1.0mL、1.5mL、2.0mL、2.5mL、3.0mL分別置于50mL容量瓶中,加30%乙醇至10 mL,加0.5mL 5%亞硝酸鈉溶液,搖勻,靜置5min后加0.5mL 10%硝酸鋁溶液,搖勻,靜置6min后加10 mL 4%氫氧化鈉溶液,用30%乙醇定容至刻度,搖勻,靜置5~10min后測(cè)定吸光度,平行測(cè)定3次,以吸光度(A)為橫坐標(biāo)、槲皮素質(zhì)量濃度(c)為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[6]。
1.2.3 總黃酮含量的測(cè)定
銀杏葉中總黃酮類活性成分的測(cè)定采用NaNO2-A1(NO3)3-NaOH絡(luò)合-分光光度法。取0.5mL樣品于25mL容量瓶中,分別加入0.5mL 5%亞硝酸鈉溶液,搖勻,放置5min后加0.5mL 10%硝酸鋁溶液,搖勻,放置6min后加10mL 4%氫氧化鈉溶液,用30%乙醇定容至刻度,搖勻,放置5~10min后于510 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,平行測(cè)定3次,按下式計(jì)算銀杏葉總黃酮提取率[[7-8]:
式中:c為總黃酮濃度,g·mL-1;V為提取液體積,mL;n為稀釋倍數(shù);m為樣品質(zhì)量,g。
1.2.4 單因素實(shí)驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取1.0g樣品粉末,置于磨口錐形瓶中,按不同的料液比加入不同體積分?jǐn)?shù)乙醇、在一定溫度下回流提取一定時(shí)間。抽濾,濾液離心,取上清液0.5mL,按照1.2.3方法測(cè)定吸光度,計(jì)算銀杏葉總黃酮提取率。
1.2.5 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
以單因素實(shí)驗(yàn)為基礎(chǔ)設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn)[9]。以料液比(A)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(B)、提取時(shí)間(C)、提取溫度(D)為考察因素,采用4因素3水平進(jìn)行L16(34)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化銀杏葉總黃酮的提取工藝[10-12],正交實(shí)驗(yàn)的因素與水平見(jiàn)表1。
表1 正交實(shí)驗(yàn)的因素與水平Tab.1 Factors and levels of orthogonal experiment
1.2.6 微波輔助提取方法
準(zhǔn)確稱取1.0g樣品粉末,置于磨口錐形瓶中,按照正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化的料液比加入相應(yīng)體積分?jǐn)?shù)的乙醇。選擇5種不同微波功率進(jìn)行間歇式提取15次,每次10s。測(cè)定銀杏葉總黃酮的含量,考察間歇式微波輔助提取對(duì)提取率的影響。
2.1.1 料液比對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,按1∶25、1∶35、1∶40、1∶50和1∶55的料液比加入50%乙醇,在60℃下回流提取3.0h,經(jīng)純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖1。
由圖1可知,總黃酮提取率隨著料液比的減?。刺崛┯昧康脑黾樱┒龃螅弦罕葹?∶50時(shí),總黃酮提取率最大,進(jìn)一步增加提取劑用量,總黃酮提取率反而減小。增加提取劑的用量,物料體系與提取劑體系間的濃度差加大,有利于黃酮類物質(zhì)的溶出;但過(guò)多的提取劑降低了銀杏葉總黃酮的濃度,使總黃酮的不穩(wěn)定性增大從而容易損失,反而導(dǎo)致總黃酮提取率減小。
圖1 料液比對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.1 The effect of solid-liquid ratio on the flavonoids extraction rate
2.1.2 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,按1∶50的料液比分別加入體積分?jǐn)?shù)為40%、50%、60%、70%和80%的乙醇,在60℃下回流提取3.0h,經(jīng)純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.2 The effect of volume fraction of ethanol on the flavonoids extraction rate
由圖2可知,總黃酮提取率隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增大而增大,乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%時(shí),總黃酮提取率最大;當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)超過(guò)50%后,總黃酮提取率反而減小,至70%以后保持不變。可能的原因是高體積分?jǐn)?shù)的乙醇更有利于黃酮類物質(zhì)的溶解,同時(shí)高體積分?jǐn)?shù)的乙醇對(duì)細(xì)胞的破壞性更強(qiáng),有利于溶液滲透至物料中。然而,過(guò)高的乙醇體積分?jǐn)?shù)可能增加脂溶性物質(zhì)的溶出,導(dǎo)致總黃酮提取率減小。
2.1.3 提取時(shí)間對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,在水浴溫度為60℃、乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%、料液比為1∶50的條件下,分別回流提取1.5h、2.0h、2.5h、3.0h、3.5h,純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖3。
由圖3可知,總黃酮提取率隨提取時(shí)間的延長(zhǎng)而增大,提取時(shí)間為3.0h時(shí),提取率最大,之后提取率反而減小。
2.1.4 提取溫度對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%、料液比為1∶50,分別在40℃、50℃、60℃、70℃、80℃下回流提取3.0h,純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖4。
圖4 提取溫度對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.4 The effect of extraction temperature on the flavonoids extraction rate
由圖4可知,隨著提取溫度的升高,總黃酮提取率逐漸增大;提取溫度為70℃時(shí),提取率最大;提取溫度超過(guò)70℃后,總黃酮提取率反而減小。這是因?yàn)椋S著提取溫度的升高,溶劑分子的運(yùn)動(dòng)加快,黃酮類物質(zhì)溶出增加,但黃酮類物質(zhì)作為一類具有抗氧化活性的物質(zhì),在高溫條件下,其結(jié)構(gòu)被氧化破壞的速度也會(huì)加快;同時(shí)溶出的部分蛋白質(zhì)在高溫下易變性與黃酮類物質(zhì)發(fā)生共沉淀,導(dǎo)致總黃酮提取率減小。
由表2可以看出,提取溫度對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響最大,其次是乙醇體積分?jǐn)?shù),料液比和提取時(shí)間的影響最?。蛔罴呀M合為A1B2C2D2,即料液比1∶45、乙醇體積分?jǐn)?shù)50%、提取時(shí)間2.0h、提取溫度70℃,在此條件下,銀杏葉總黃酮提取率達(dá)到0.918%。
2.3.1 微波功率對(duì)總黃酮提取率的影響
表2 L16(34)正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析Tab.2 The results and analysis of L16(34)orthogonal experiment
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,在乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%、料液比為1∶45的條件下,分別用30W、240W、400W、640W和800W5種不同的微波功率進(jìn)行微波輔助提取,純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖5。
圖5 微波功率對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.5 The effect of microwave power on the flavonoids extraction rate
由圖5可知,隨著微波功率逐步增大,總黃酮提取率相應(yīng)增大,在微波功率為640W時(shí),總黃酮提取率最大;之后,總黃酮提取率減小??赡苁且?yàn)?,微波的加熱作用使提取液溫度升高,或是微波本身?duì)黃酮類物質(zhì)的破壞。因此,選擇最適微波功率為640W。
2.3.2 微波間歇提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響
準(zhǔn)確稱取銀杏葉粉末1g,在微波功率為640W、乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%、料液比為1∶45、采用間歇式提取、每次10s的條件下,分別提取10次、15次、20次、25次、30次,純化后測(cè)定吸光度,計(jì)算總黃酮提取率,結(jié)果見(jiàn)圖6。
由圖6可知,隨著微波間歇提取時(shí)間的延長(zhǎng),提取率逐漸增大;微波間歇提取時(shí)間為15×10s時(shí),提取率最大,為0.91%;進(jìn)一步延長(zhǎng)提取時(shí)間,提取率快速減小,可能是由于微波產(chǎn)生的高溫或微波直接對(duì)黃酮的破壞。與傳統(tǒng)方法相比,在相同提取條件下,采用微波提取在幾分鐘內(nèi)的總黃酮提取率接近傳統(tǒng)方法3h的提取率。表明微波輔助提取能大大縮短銀杏葉總黃酮的提取時(shí)間,縮短提取周期。
圖6 微波間歇提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.6 The effect of microwave intermittent extraction time on the flavonoids extraction rate
研究了乙醇回流法提取銀杏葉總黃酮的工藝條件。通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)考察了料液比、乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取時(shí)間、提取溫度對(duì)銀杏葉總黃酮提取率的影響,通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)確定優(yōu)化的提取工藝條件為:料液比1∶45(g∶mL)、乙醇體積分?jǐn)?shù)50%、提取時(shí)間2.0h、提取溫度70℃,在此條件下,銀杏葉總黃酮提取率為0.918%。同時(shí),本實(shí)驗(yàn)研究了微波輔助提取對(duì)銀杏葉總黃酮提取的影響,在微波功率為640W、用50%乙醇按1∶45的料液比間歇提取15次、每次10s的條件下,銀杏葉總黃酮提取率為0.91%,與傳統(tǒng)的加熱方法提取相比,大大地縮短了提取時(shí)間和提取周期。
[1]YOSHIKAWA T,NAITO Y,KONDO M.Ginkgo biloba leaf extract:Review of biological actions and clinical applications[J].Antioxidants & Redox Signaling,1999,1(4):469-479.
[2]SATI S C,JOSHI S.Antibacterial activities of Ginkgo biloba L.leaf extracts[J].The Scientific World Journal,2011,11:2237-2242.
[3]YAO X,SHANG E X,ZHOU G H,et al.Comparative characterization of total flavonol glycosides and terpene lactones at different ages,from different cultivation sources and genders of Ginkgo bilobaleaves[J].International Journal of Molecular Sciences,2012,13(8):10305-10315.
[4]姚渭溪.銀杏葉中活性成分的提取工藝、測(cè)定及其進(jìn)展[J].中草藥,1995,26(3):157-159.
[5]ATZORI C,BRUNO A,CHICHINO G,et al.Activity of bilobalide,a sesquiterpene fromGinkgo biloba,on Pneumocystis carinii[J].Antimicrobial Agents and Chemotherapy,1993,37(7):1492-1496.
[6]高旗,張競(jìng)怡.微波提取陜南名茶中總黃酮的工藝研究[J].河北農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,15(1):154-157.
[7]郭育東,馬崇堅(jiān).苦瓜總黃酮提取工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(12):6501-6502.
[8]杜新,林年豐,張晶,等.黃花草木樨總皂苷提取工藝優(yōu)化研究[J].特產(chǎn)研究,2013,21(2):35-39.
[9]袁琦,蒲曉輝,崔麗麗,等.回流法提取欒樹(shù)果皮中總黃酮的正交實(shí)驗(yàn)研究[J].河南大學(xué)學(xué)報(bào),2013,32(2):101-104.
[10]謝藍(lán)華,杜冰,楊公明,等.正交試驗(yàn)優(yōu)化酶法提取黃芪總黃酮工藝[J].包裝與食品機(jī)械,2013,31(3):7-12.
[11]黃展,王晶.正交設(shè)計(jì)優(yōu)化苦瓜多糖的超聲提取工藝研究[J].黑龍江醫(yī)藥科學(xué),2013,36(3):22-23.
[12]郝鳳霞,楊敏麗.金銀花中綠原酸和黃酮的同時(shí)提取分離工藝研究[J].食品科學(xué),2009,30(20):211-214.