李 佳(綜述),彭 創(chuàng)(審校)
(1.南華大學(xué),湖南 衡陽(yáng) 421000; 2.湖南省人民醫(yī)院肝膽外科,長(zhǎng)沙 410005)
適宜水平的膽汁酸可作為信號(hào)分子激活肝內(nèi)外相關(guān)受體,在肝再生中發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用;反之,膽汁酸瘀滯可導(dǎo)致嚴(yán)重的肝損害,抑制肝再生[1-2]。因此,肝切除術(shù)前對(duì)梗阻性黃疸進(jìn)行綜合治療,改善機(jī)體的膽汁酸代謝,促進(jìn)術(shù)后肝臟再生已成為研究熱點(diǎn)。成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子15(fibroblast growth factor 15,F(xiàn)GF15)是代謝的關(guān)鍵調(diào)控因子之一,其直接或間接的促進(jìn)了肝臟的再生。
成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(fibroblast growth factors,F(xiàn)GFs)家族至少由23個(gè)成員組成,按種系和序列分為7個(gè)亞科[3],F(xiàn)GFs成員通過(guò)與細(xì)胞膜表面的成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子受體(fibroblast growth factor receptors,FGFRs)結(jié)合,產(chǎn)生生物學(xué)作用。FGFRs家族包括FGFR1、FGFR2、FGFR3、FGFR4,其是由4個(gè)基因編碼的單通道跨膜酪氨酸激酶受體,F(xiàn)GFR1、FGFR2、FGFR3通過(guò)交替剪切,產(chǎn)生兩種異構(gòu)體,其具有不同的胞外結(jié)構(gòu)域和配體結(jié)合類型,F(xiàn)GFR4則能在肝臟與FGF15特異性結(jié)合[4]。
FGFs通常與硫酸乙酰肝素多糖結(jié)合,在細(xì)胞外基質(zhì)激活受體,繼而受體二聚化和自身磷酸化,激活下游底物。內(nèi)分泌性的FGF15、FGF19(FGF15與FGF19由同源基因編碼,分別在鼠類和人體表達(dá))、FGF21、FGF23與硫酸乙酰肝素多糖親和性低,能遠(yuǎn)離分泌細(xì)胞進(jìn)入循環(huán),以內(nèi)分泌激素的形式廣泛作用于各種代謝過(guò)程。內(nèi)分泌FGFs進(jìn)入循環(huán)后,與高親和力的Klotho蛋白結(jié)合,激活受體[5],因此內(nèi)分泌性FGFs的作用部位與Klotho蛋白分布直接相關(guān)。
Klotho蛋白包括α-Klotho、β-Klotho及l(fā)actase-like[6]。Klotho蛋白的表達(dá)有組織特異性,β-Klotho主要表達(dá)于肝臟、膽囊、結(jié)腸、胰腺,而FGFR4主要表達(dá)于肝臟、腎臟、腎上腺及肺等[7]。β-Klotho與FGFR4都在肝臟高表達(dá),而FGF15/19 能特異性激活FGFR4與β-Klotho的復(fù)合物[8]。因此,F(xiàn)GF15/19的主要作用部位是肝臟。盡管FGF15 mRNA廣泛表達(dá)于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育過(guò)程中,但在發(fā)育成熟的中樞神經(jīng)系統(tǒng)卻不能檢測(cè)到,而是高度選擇性在回腸表達(dá),然后吸收入血,調(diào)節(jié)膽汁酸代謝平衡[9]。
FGF15主要是由進(jìn)入腸道(回腸)的膽汁酸激活腸黏膜上的法尼酯X受體(fxrnesoid X receptor,F(xiàn)XR)產(chǎn)生。Diet1基因也參與FGF15的調(diào)控,小鼠Diet1基因位于第2號(hào)染色體的近端,由39個(gè)外顯子組成,約730 kb,主要在成熟的小腸上皮細(xì)胞表達(dá),編碼大小為236×103的蛋白質(zhì)。在表達(dá)Diet1基因的小鼠中,血清FGF15水平升高,膽固醇7α-羥化酶(cholesterol 7α-hydroxylase,CYP7A1)下降,血清膽汁酸水平較缺失Diet1基因的小鼠低。學(xué)者在基因水平證明:①Diet1基因缺失可導(dǎo)致回腸FGF15 mRNA和FGF15水平下降,轉(zhuǎn)基因后可糾正;②給予Diet1剔除小鼠外源性FGF15、CYP7A1水平下降明顯,說(shuō)明Diet1剔除導(dǎo)致FGF15缺乏;③改變?nèi)四c道Diet1的表達(dá),F(xiàn)GF19隨之改變,當(dāng)Diet1升高時(shí)FGF19升高,下降時(shí)FGF19下降;④Diet1與FGF15/19蛋白存在聯(lián)系,Diet1具有與FGF15結(jié)合的囊泡狀結(jié)構(gòu),且Diet1與FGF15蛋白形成共沉淀復(fù)合物[10-11]。
Diet1與FXR的調(diào)控機(jī)制是獨(dú)立的,在Diet1剔除小鼠的肝臟和回腸中,F(xiàn)XR靶基因表達(dá)正常。Diet1可能參與FGF15補(bǔ)償調(diào)節(jié)。Diet1通過(guò)轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后機(jī)制對(duì)FGF15/19水平起調(diào)節(jié)作用[10]。但是,調(diào)控Diet1表達(dá)的機(jī)制尚不清楚,且Diet1蛋白與FGF15蛋白轉(zhuǎn)錄后相互作用機(jī)制也不清楚,有待進(jìn)一步研究。
膽汁酸是維持膽固醇動(dòng)態(tài)平衡和促進(jìn)脂肪在胃腸道消化的重要物質(zhì)。同時(shí),膽汁酸也可作為信號(hào)分子,通過(guò)G蛋白偶聯(lián)膽汁酸受體1和FXR產(chǎn)生多樣化的生物學(xué)功能。這些膽汁酸敏感受體在腸上皮細(xì)胞表達(dá),G蛋白偶聯(lián)受體5主要在腸內(nèi)分泌細(xì)胞表達(dá),而FXR在腸上皮細(xì)胞表達(dá)。膽汁酸激活腸道FXR的主要作用是刺激腸道分泌FGF15[12-13]。
FGF15吸收入血經(jīng)門靜脈入肝,在小異二聚體的協(xié)同作用下,與肝內(nèi)FGFR4特異性結(jié)合,激活c-Jun氨基端激酶(c-Jun N-teminal kinase,JNK)通路,使c-Jun磷酸化,活化的c-Jun與肝受體同系物或肝細(xì)胞核因子4α結(jié)合形成轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合體,抑制CYP7A1轉(zhuǎn)錄[14]。在完全腸外營(yíng)養(yǎng)時(shí)對(duì)豬肝臟的病理學(xué)檢查發(fā)現(xiàn),肝臟膽汁郁滯,脂肪變性,血液中FGF19顯著下降,與膽汁酸-腸道FXR-FGF19軸阻斷有關(guān)[15]。同時(shí),膽汁酸激活肝內(nèi)FXR,激活的FXR可誘導(dǎo)短異源二聚體(short heterodimer partner,SHP)表達(dá),SHP與肝受體同系物1(liver receptor homologue 1,LRH-1)之間可通過(guò)相互作用抑制LHR-1對(duì)CYP7A1的激活作用[16],肝內(nèi)FXR亦能增加膽鹽輸出泵的表達(dá)并減少?;悄懰徕c共轉(zhuǎn)運(yùn)體的表達(dá)[17]。此外,膽汁酸還可激活蛋白激酶C,并誘導(dǎo)庫(kù)普弗細(xì)胞合成并釋放炎性細(xì)胞因子(腫瘤壞死因子α、白細(xì)胞介素1β),而蛋白激酶C及炎性因子均可抑制CYP7A1在肝細(xì)胞的表達(dá)[18]。
調(diào)控膽汁酸代謝的肝內(nèi)FXR受體和腸道FGF15誰(shuí)起主導(dǎo)作用呢?2007年Kim等[13]在肝臟和腸道組織特異性剔除FXR的實(shí)驗(yàn)中證實(shí),膽汁酸合成增加是由于缺乏FGF15/19導(dǎo)致的。給予FXR選擇性激動(dòng)劑能顯著抑制肝臟組織特異性剔除FXR(FxrL)小鼠CYP7A1的表達(dá),而腸道組織特異性剔除FXR(FxrIE)小鼠則不能,說(shuō)明抑制CYP7A1表達(dá)主要是腸道FXR而不是肝臟FXR。FxrIE小鼠72 h肝臟CYP7A1 mRNA>0.5,而FxrL肝臟的CYP7A1 mRNA<0.3[19]。在FGF15-/-、FGFR4-/-、Klotho-/-小鼠均能發(fā)現(xiàn)CYP7A1表達(dá)上升,膽汁酸水平升高[20-21]。在FGF15-/-小鼠,CYP7A1 mRNA的水平是野生型小鼠的3.5倍[9]。腸道FXR持續(xù)激活的轉(zhuǎn)基因小鼠(IVP16FXR)較對(duì)照組轉(zhuǎn)基因小鼠(IVP16)膽汁酸池總量減少30%,且親水性的膽汁酸比例升高,從而降低了膽汁酸的細(xì)胞毒性[22]。肝外膽管梗阻、化學(xué)損傷導(dǎo)致的肝內(nèi)膽汁瘀滯、基因誘導(dǎo)的肝內(nèi)膽汁瘀滯時(shí),IVP16FXR較IVP16能更好的保護(hù)肝細(xì)胞,使轉(zhuǎn)氨酶、膽汁酸、膽紅素水平下降[22]。給予外源性FGF15/19或腸道特異性FXR激動(dòng)劑GW4064、INT747時(shí),與IVP16FXR一樣,能保護(hù)肝外梗阻性黃疸時(shí)的肝細(xì)胞[23]。因此,腸道FGF15在膽汁酸代謝中起主導(dǎo)作用。
4.1FGF15調(diào)節(jié)膽汁酸水平促進(jìn)肝再生 過(guò)多的膽汁酸積累可導(dǎo)致肝實(shí)質(zhì)細(xì)胞受損,抑制正常肝再生,適宜水平的膽汁酸可通過(guò)FXR、G蛋白偶聯(lián)受體5、絲裂原活化蛋白激酶3條途徑促進(jìn)肝再生[24-25]。膽汁酸激活肝內(nèi)和腸道FXR起作用,而腸道FXR誘導(dǎo)的FGF15是膽汁酸重要的調(diào)控因子,F(xiàn)GF15可通過(guò)調(diào)控膽汁酸水平促進(jìn)肝再生。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)證明,F(xiàn)GF15-/-小鼠肝切除術(shù)后因持續(xù)性肝內(nèi)膽汁酸水平升高,導(dǎo)致嚴(yán)重的肝損害及高死亡率,而FGF+/+小鼠則表現(xiàn)為低死亡率。70%肝切除術(shù)后3 d,F(xiàn)GF15-/-小鼠存活率僅為31.9%,而FGF+/+則為93.8%。同時(shí)FGF-/-增生的肝細(xì)胞及膽管細(xì)胞較FGF+/+小鼠顯著下降。在FGF-/-小鼠,細(xì)胞周期蛋白D1表達(dá)受損,肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(hepatocyte growth factor,HGF) mRNA在肝再生早期表達(dá)下降,F(xiàn)XR mRNA的表達(dá)顯著下調(diào),S期細(xì)胞顯著下降;FGF+/+小鼠則相反[26]。
FGF15是肝切除術(shù)后肝再生過(guò)程中維持膽汁酸穩(wěn)態(tài)、保護(hù)肝細(xì)胞、促進(jìn)肝再生的重要因子。
4.2FXR與FGF15協(xié)同促進(jìn)肝再生 FXR是膽汁酸的主要受體,其參與調(diào)控膽汁酸代謝平衡和排毒,同時(shí)也在膽汁酸介導(dǎo)的肝再生和損傷修復(fù)中起調(diào)節(jié)作用[25-27]。膽汁酸激活肝內(nèi)FXR,F(xiàn)XR與forkhead box m1b(Foxm1b)基因內(nèi)含子3上的FXR反應(yīng)元件結(jié)合,啟動(dòng)Foxm1b基因轉(zhuǎn)錄,促進(jìn)肝再生[27]。膽汁酸激活腸道FXR,誘導(dǎo)回腸產(chǎn)生FGF15,經(jīng)血入肝后促進(jìn)肝再生,且腺病毒異位表達(dá)的FGF15能促進(jìn)FxrIE小鼠的肝再生[19]。
肝-FXR與腸-FXR均在70%肝切除術(shù)、四氯化碳肝損傷后的肝再生/肝損傷修復(fù)過(guò)程中起作用,70%肝切除術(shù)后FxrL小鼠較對(duì)照組小鼠肝再生高峰值下降,血清膽汁酸水平升高,肝臟CYP7A1 mRNA表達(dá)升高,F(xiàn)oxm1b表達(dá)顯著下降;而FxrIE較對(duì)照組小鼠肝再生高峰值下降,血清膽汁酸水平升高,肝臟CYP7A1 mRNA表達(dá)升高[19]。但FxrL與FxrIE比較發(fā)現(xiàn),F(xiàn)xrL肝再生高峰值<40,而FxrIE肝再生高峰值>50,均遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于對(duì)照組的100,而FXR剔除組則<20。因此,F(xiàn)XR對(duì)肝再生有重要的調(diào)節(jié)功能,且腸道FXR誘導(dǎo)的FGF15對(duì)肝再生影響更為顯著。這可能是與FGF15能直接促進(jìn)細(xì)胞有絲分裂或FGF15是主要的膽汁酸調(diào)節(jié)器有關(guān)。此外,F(xiàn)XR-KO小鼠隨年齡增長(zhǎng)易導(dǎo)致自發(fā)性肝癌[28]。
4.3FGF15在肝再生的急性期抑制CYP7A1表達(dá)促進(jìn)肝再生 在肝再生過(guò)程中,肝內(nèi)膽汁酸水平需要快速降低以防止膽汁酸的毒性作用,其主要是通過(guò)快速降低CYP7A1 mRNA的水平而降低膽汁酸。CYP7A1是膽汁酸合成經(jīng)典途徑的限速酶。已被證明參與調(diào)控CYP7A1表達(dá)的因素有細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子及核受體,包括腫瘤壞死因子α、FXR-SHP、HGF、JNK/c-Jun等[29]。
一方面70%肝切除術(shù)后CYP7A1的表達(dá)受到抑制[25],另一方面肝切除術(shù)后膽汁酸排泄增加,這兩條平行機(jī)制聯(lián)合保護(hù)肝臟免受膽汁酸的細(xì)胞毒性作用。肝臟特異性過(guò)表達(dá)外源性的CYP7A1可損害肝切除術(shù)后肝再生,并伴隨有肝臟細(xì)胞損傷和肝細(xì)胞凋亡[14]。因此,抑制CYP7A1的表達(dá)在肝切除術(shù)后肝再生過(guò)程中尤為重要。
Zhang等[14]研究發(fā)現(xiàn),在肝再生過(guò)程中,同時(shí)存在兩個(gè)不同階段的CYP7A1基因調(diào)控機(jī)制,F(xiàn)GF15-JNK/c-Jun和HGF通路在肝再生的急性期抑制CYP7A1的表達(dá),促進(jìn)肝再生;FXR和SHP對(duì)CYP7A1的調(diào)控作用則在肝切除術(shù)肝再生晚期階段起作用。肝切除術(shù)膽汁酸排泄增加產(chǎn)生的代謝效應(yīng)可能亦是通過(guò)激活FXR誘導(dǎo)FGF15 產(chǎn)生,這有待進(jìn)一步研究證實(shí)。同時(shí)肝內(nèi)膽汁酸合成減少,排泄增加,因此肝內(nèi)FXR受體激活減少,促進(jìn)肝再生作用減弱。
4.4FGF15/19促進(jìn)肝細(xì)胞的有絲分裂 細(xì)胞培養(yǎng)顯示,F(xiàn)GF15是肝細(xì)胞和膽管上皮細(xì)胞的促有絲分裂原,可能增強(qiáng)膽汁酸的促肝再生效應(yīng)[26]。FGF15/19能促進(jìn)急性肝損傷時(shí)肝內(nèi)HGF的表達(dá),減少炎性趨化因子巨噬細(xì)胞炎性蛋白2的表達(dá)[31-32],保護(hù)急性肝損傷后的肝臟并促進(jìn)肝臟再生。在肝再生晚期階段,miR-34a的表達(dá)顯著升高[33]。體外試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),miR-34a結(jié)合β-Klotho mRNA上的3′-UTR,下調(diào)β-Klotho的表達(dá)[34]。在肥胖小鼠體內(nèi),過(guò)表達(dá)的miR-34a使肝臟β-Klotho下降,從而影響FGF19與FGFR4的結(jié)合;反之,拮抗miR-34a能恢復(fù)肥胖小鼠FGF19與FGFR4/β-Klotho復(fù)合物的結(jié)合,從而激活細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶[34]。因此,miR-34a/β-Klotho/FGF19軸可能對(duì)肝再生終止起重要作用。
4.5FGF15促進(jìn)蛋白質(zhì)合成 FGF15/FGF19通過(guò)有絲分裂原活化蛋白介導(dǎo)的激酶信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,激活蛋白質(zhì)翻譯組件促進(jìn)蛋白合成。FGF15/19與FGFR4-β-klotho復(fù)合物結(jié)合,激活鳥(niǎo)苷酸三磷酸酶ras,使ERK上的蘇氨酸202和蘇氨酸197磷酸化,激活絲裂原活化蛋白相互作用激酶1蛋白激酶,導(dǎo)致肝臟細(xì)胞上的真核翻譯起始因子eIF4B上的絲氨酸422和eIF4E上的絲氨酸209磷酸化,并形成eIF4F復(fù)合物,介導(dǎo)mRNA與核糖體結(jié)合,促進(jìn)翻譯起始[36-38]。FGF15/19也可使核糖體蛋白S6上的絲氨酸235、絲氨酸236磷酸化,誘導(dǎo)帽依賴性翻譯,提高自身蛋白質(zhì)合成的效率[39]。靜脈給予外源性FGF19發(fā)現(xiàn),小鼠總體蛋白質(zhì)合成增加18%,肝臟從頭合成白蛋白的速率增加40%,連續(xù)給予外源性FGF19,血漿白蛋白水平增加10%[39]。因此,F(xiàn)GF15/19是一種正性促進(jìn)蛋白質(zhì)合成的因子。
深入研究FGF15/19對(duì)梗阻性黃疸的肝臟保護(hù)及促進(jìn)肝再生的機(jī)制,對(duì)梗阻性黃疸的術(shù)前綜合治療、減黃方式的選擇、殘肝再生有重要的臨床意義。GW4064和INT747等FXR特異性激動(dòng)劑有望成為梗阻性黃疸治療的新手段。Diet1基因調(diào)控FGF15表達(dá)的機(jī)制及FGF15/19促進(jìn)肝再生的確切信號(hào)通路及調(diào)控將成為下一步研究的熱點(diǎn)。此外,學(xué)者們意外發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因慢性高表達(dá)FGF19,4個(gè)月后可導(dǎo)致癌前病變,10~12個(gè)月后可導(dǎo)致肝癌發(fā)生[40];其誘導(dǎo)腫瘤發(fā)生的可能有待進(jìn)一步研究。
[1] Otao R,Beppu T,Isiko T,etal.External biliary drainage and liver regeneration after major hepatectomy[J].Br J Surg,2012,99(11):1569-1574.
[2] Csanaky IL,Aleksunes LM,Tanaka Y,etal.Role of hepatic transporters in prevention of bile acid toxicity after partial hepatectomy in mice[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2009,297(3):419-433.
[3] Itoh N,Ornitz DM.Evolution of the Fgf and Fgfr gene families[J].Trends Genet,2004,20(11):563-569.
[4] Beenken A,Mohammadi M.The FGF family:biology,pathophysiology and therapy[J].Nat Rev Drug Discov,2009,8(3):235-253.
[5] Tomiyama K,Maeda R,Urakawa I,etal.Relevant use of Klotho in FGF19 subfamily signaling system in vivo[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107(4):1666-1671.
[6] Kharitonenkov A,Dunbar JD,Bina HA,etal.FGF-21/FGF-21 receptor interaction and activation is determined by betaKlotho[J].J Cell Physiol,2008,215(1):1-7.
[7] Fon Tacer K,Bookout AL,Ding X,etal.Research resource:Comprehensive expression atlas of the fibroblast growth factor system in adult mouse[J].Mol Endocrinol,2010,24(10):2050-2064.
[8] Wu AL,Coulter S,Liddle C,etal.FGF19 regulates cell proliferation,glucose and bile acid metabolism via FGFR4-dependent and independent pathways[J].PLoS One,2011,6(3):e17868.
[9] Inagaki T,Choi M,Moschetta A,etal.Fibroblast growth factor 15 functions as an enterohepatic signal to regulate bile acid homeostasis[J].Cell Metab,2005,2(4):217-225.
[10] Vergnes L,Lee JM,Chin RG,etal.Diet1 Functions in the FGF15/19 enterohepatic signaling axis to modulate bile acid and lipid levels[J].Cell Metab,2013,17(6):916-928.
[11] Phan J,Pesaran T,Davis RC,etal.The Diet1 locus confers protection against hypercholesterolemia through enhanced bile acid metabolism[J].J Bio Chem,2002,277(1):469-477.
[12] Potthoff MJ,Potts A,He T,etal.Colesevelam suppresses hepatic glycogenolysis by TGR5-mediated induction of GLP-1 action in DIO mice[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2013,304(4):G371-G380.
[13] Kim I,Ahn SH,Inagaki T,etal.Differential regulation of bile acid homeostasis by the farnesoid X receptor in liver and intestine[J].J Lipid Res,2007,48(12):2664-2672.
[14] Zhang L,Huang X,Meng Z,etal.Significance and mechanism of CYP7a1 gene regulation during the acute phase of liver regeneration[J].Mol Endocrinol,2009,23(2):137-145.
[15] Jain AK,Stoll B,Burrin DG,etal.Enteral bile acid treatment improves parenteral nutrition-related liver disease and intestinal mucosal atrophy in neonatal pigs[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2012,302(2):218-224.
[16] Seok S,Kanamaluru D,Xiao Z,etal.Bile Acid Signal-induced phosphorylation of small heterodimer partner by protein kinase Cζ Is critical for epigenomic regulation of liver metabolic genes[J].J Biol Chem,2013,288(32):23252-23263.
[17] Sinal CJ,Tohkin M,Miyata M,etal.Targeted disruption of the nuclear receptor FXR/BAR impairs bile acid and lipid homeostasis[J].Cell,2000,102(6):731-744.
[18] Holt JA,Luo G,Bilin AN,etal.Definition of a novel growth factor-dependent signal cascade for the suppression of bile acid biosynthesis[J].Genes Dev,2003,17(13):1581-1591.
[19] Zhang L,Wang YD,Chen WD,etal.Promotion of liver regeneration/repair by farnesoid X receptor in both liver and intestine in mice[J].Hepatology,2012,56(6):2336-2343.
[20] Yu C,Wang F,Kan M,etal.Elevated cholesterol metabolism and bile acid synthesis in mice lacking membrane tyrosine kinase receptor FGFR4[J].J Bio Chem,2000,275(20):15482-15489.
[21] Ito S,Fujimori T,Furuya A,etal.Impaired negative feedback suppression of bile acid synthesis in mice lacking betaKlotho[J].J Clin Invest,2005,115(8):2202-2208.
[22] Modica S,Petruzzeli M,Bellafante E,etal.Selective activation of nuclear bile acid receptor FXR in the intestine protects mice against cholestasis[J].Gastroenterology,2012,142(2):355-365.
[23] Fiorucci S,Clerici C,Antonelli E,etal.Protective effects of 6-ethyl chenodeoxycholic acid,a farnesoid X receptor ligand,in estrogen-induced cholestasis[J].J Phamacol Exp Ther,2005,313(2):604-612.
[24] Wang YD,Yang F,Chen WD,etal.Farnesoid X receptor protects liver cells from apoptosis induced by serum deprivation in vitro and fasting in vivo[J].Mol Endocrinol,2008,22(7):1622-1632.
[25] Huang W,Ma K,Zhang J,etal.Nuclear receptor-dependent bile acid signaling is required for normal liver regeneration[J].Science,2006,312(5771):233-236.
[26] Uriate I,Fernandez-Barrena MG,Monte MJ,etal.Identification of fibroblast growth factor 15 as a novel mediator of liver regeneration and its application in the prevention of post-resection liver failure in mice[J].Gut,2013,62(6):899-910.
[27] Chen WD,Wang YD,Zhang L,etal.Farnesoid X receptor alleviates age-related proliferation defects in regenerating mouse livers by activating forkhead box m1b transcription[J].Hepatology,2010,51(3):953-962.
[28] Kim I,Morimura K,Shah Y,etal.Spontaneous hepatocarcinogenesis in farnesoid X receptor-null mice[J].Carcinogenesis,2007,28(5):940-946.
[29] Schaap FG,van der Gaag NA,Gouma DJ,etal.High expression of the bile salt-homeostatic hormone fibroblast growth factor 19 in the liver of patients with extrahepatic cholestasis[J].Hepatology,2009,49(4):1228-1235.
[30] Li T,Jahan A,Chiang JY.Bile acids and cytokines inhibit the human cholesterol 7 alpha-hydroxylase gene via the JNK/c-jun pathway in human liver cells[J].Hepatology,2006,43(6):120-1210.
[31] Zhang Y,Hong JY,Rockwell CE,etal.Effect of bile duct ligation on bile acid composition in mouse erum and liver[J].Liver Int,2012,32(1):58-69.
[32] Sakai N,Van Sweringen HL,Belizaire RM,etal.Interleukin-37 reduces liver inflammatory injury via effects on hepatocytes and non-parenchymal cells[J].J Gastroenterol Hepatol,2012,27(10):1609-1616.
[33] Chen H,Sun Y,Dong R,etal.Mir-34a Is Upregulated during Liver Regeneration in Rats and Is Associated with the Suppression of Hepatocyte Proliferation[J].PLoS One,2011,6(5):1-11.
[34] Fu T,Choi SE,Kim DH,etal.Aberrantly elevated microRNA-34a in obesity attenuates hepatic responses to FGF19 by targeting a membrane coreceptor β-Klotho[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2012,109(40):16137-16142.
[35] Fumagalli S,Thomas G.Translational control of gene expression[M].New York:Cold spring harbor laboratory press,2000:695-717.
[36] Shin DJ,Osborne TF.Peroxisome proliferator-activated receptor-γ coactivator-1αactivation of CYP7A1 during food restriction and diabetes is still inhibited by small heterodimer partner[J].J Biol Chem,2008,283(22):15089-15096.
[37] Kurosu H,Choi M,Ogawa Y,etal.Tissue-specific expression of betaKlotho and fibroblast growth factor(FGF) receptor isoforms determines metabolic activity of FGF19 and FGF21[J].J Biol Chem,2007,282(37):26687-26695.
[38] Lin BC,Wang M,Blackmore C,etal.Liver-specific activities of FGF19 require Klotho beta[J].J Biol Chem,2007,282(37):27277-27284.
[39] Kir S,Beddow SA,Samuel VT,etal.FGF19 as a Postprandial,insulin-independent activator of hepatic protein and glycogen synthesis[J].Science,2011,331(6024):1621-1624.
[40] Nicholes K,Guillet S,Tomlinson E,etal.A mouse model of hepatocellular carcinoma:ectopic expression of fibroblast growth factor 19 in skeletal muscle of transgenic mice[J].Am J Pothol,2002,160(6):2295-2307.