段向東,賈嘯靜,陳麗華,仲偉潭,段寶玲
(華北制藥集團(tuán)新藥研究開發(fā)有限責(zé)任公司 微生物藥物國家工程研究中心河北省微生物代謝工程技術(shù)研究中心,河北石家莊050015)
達(dá)托霉素(daptomycin)是玫瑰孢鏈霉菌(Streptomyces roseosporus)發(fā)酵產(chǎn)物脂肽類化合物A21978C的N-癸?;苌铮黔h(huán)酯肽類新抗生素家族的第1個(gè)產(chǎn)品。1987年Lilly公司首先發(fā)現(xiàn)達(dá)托霉素具有良好的抗菌活性,1997年Cubist公司獲得該藥的開發(fā)權(quán),2003年美國食品與藥物管理局(FDA)批準(zhǔn)注射用達(dá)托霉素上市。
達(dá)托霉素具有獨(dú)特的化學(xué)結(jié)構(gòu),含有13個(gè)氨基酸,其中10個(gè)氨基酸形成環(huán)十脂肽,另外3個(gè)氨基酸肽鏈N-末端的色氨酸與1個(gè)癸酸側(cè)鏈相連[1]。達(dá)托霉素的作用機(jī)制不同于其它抗生素,既可以擾亂細(xì)胞膜轉(zhuǎn)運(yùn)氨基酸,使細(xì)菌無法合成細(xì)胞壁的主要成分肽聚糖[2],也可以破壞細(xì)胞膜從而殺死細(xì)菌[3]。達(dá)托霉素能殺死絕大多數(shù)的革蘭氏陽性菌,特別是對耐藥菌如耐甲氧西林金黃色葡萄球菌、耐萬古霉素腸球菌等有很強(qiáng)的活性[4],被認(rèn)為是“病原菌最后一道防線——萬古霉素”的最佳替代品。
原生質(zhì)體由于去除了外壁障礙,因而對各種誘變劑敏感性較強(qiáng),往往正突變率高[5],近年來原生質(zhì)體誘變育種技術(shù)被廣泛應(yīng)用。王曉蕾等[6]通過紫外誘變筑波鏈霉菌原生質(zhì)體,篩選得到1株高產(chǎn)菌株,與出發(fā)菌株相比,該菌株的他克莫司平均發(fā)酵單位提高51.4%。朱林東等[7]通過紫外誘變始旋鏈霉菌11-2原生質(zhì)體,獲得高產(chǎn)突變株ZP-07,普那霉素產(chǎn)量比出發(fā)菌株提高101.3%。而目前原生質(zhì)體誘變選育達(dá)托霉素高產(chǎn)菌株尚未見報(bào)道。作者研究了達(dá)托霉素產(chǎn)生菌玫瑰孢鏈霉菌D-30原生質(zhì)體制備及再生的最適條件,并采用紫外誘變方法處理制備的原生質(zhì)體,以期篩選得到達(dá)托霉素的高產(chǎn)菌株。
玫瑰孢鏈霉菌(Streptomyces roseosporus)D-30,華北制藥集團(tuán)研發(fā)中心保存。
分離培養(yǎng)基(g·L-1):葡萄糖20,酵母粉20,MgSO4·7H2O 1.5,K2HPO41,NaCl 0.5,瓊脂15,pH值7.5。
種子培養(yǎng)基(g·L-1):葡萄糖5,糊精15,蛋白胨10,酵母粉10,MgSO4·7H2O 0.3,K2HPO40.2,甘氨酸適量,pH值7.5。
發(fā)酵培養(yǎng)基(g·L-1):葡萄糖7,可溶性淀粉15,酵母粉5,蛋白胨15,K2SO48,L-天冬氨酸0.5,pH值7.0。
微量元素、TES緩沖溶液、P液、再生培養(yǎng)基的配制參照《工業(yè)微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)手冊》[8]。
在含有甘氨酸的種子培養(yǎng)基中接種新鮮玫瑰孢鏈霉菌D-30的斜面孢子,搖瓶培養(yǎng)溫度28℃、搖床轉(zhuǎn)速220r·min-1,培養(yǎng)一段時(shí)間后以3 000r·min-1離心收集菌絲體,用含有玻璃珠的三角瓶打碎、用P液以3 000r·min-1離心洗滌3次,加入一定濃度的溶菌酶溶液,渦旋混勻,在水浴溫度32℃下進(jìn)行酶解,每隔5min搖晃1次,當(dāng)原生質(zhì)體形成數(shù)量較多時(shí)停止,先以600r·min-1低速離心10min,取上清,去除混合液中的細(xì)胞壁和菌絲片斷,再用P液以3 000r· min-1離心洗滌3次,將得到的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)移到P液中備用。
將分離培養(yǎng)基和再生培養(yǎng)基滅菌后倒入無菌平皿中,待培養(yǎng)基凝固后打開平皿蓋,在超凈臺上風(fēng)干表面的水分。用酶解前的菌絲體涂布含有分離培養(yǎng)基的平板;用P液將原生質(zhì)體稀釋到一定濃度后涂布含有再生培養(yǎng)基的平板、用無菌水將原生質(zhì)體稀釋到一定濃度后涂布含有再生培養(yǎng)基的平板,將3種平板28℃恒溫培養(yǎng)9d。
原生質(zhì)體的制備率、再生率按下列公式計(jì)算:
式中:A為用酶解前的菌絲體涂布分離培養(yǎng)基平板長出的菌落數(shù);B為用P液將原生質(zhì)體稀釋到一定濃度后涂布再生培養(yǎng)基平板存活的菌落數(shù);C為用無菌水將原生質(zhì)體稀釋到一定濃度后涂布再生培養(yǎng)基平板存活的菌落數(shù)。
用P液將原生質(zhì)體稀釋到適當(dāng)濃度后用吸管將其轉(zhuǎn)到無菌平皿中,每皿100μL,輕輕晃動待其混勻后放置在30W紫外燈下32cm處,進(jìn)行不同照射時(shí)間誘變處理:0s、10s、20s、30s、40s、50s、60s、70s;照射后于暗處靜置30min,收集誘變后的原生質(zhì)體,將其稀釋到一定濃度后涂布在含有再生培養(yǎng)基的平板上。
挑選再生培養(yǎng)基平板上培養(yǎng)成熟的單菌落接種至空白斜面,于28℃恒溫培養(yǎng)9d,待培養(yǎng)好后接種于種子培養(yǎng)基,搖瓶溫度28℃、搖床轉(zhuǎn)速220r·min-1,培養(yǎng)30h。吸取0.5mL培養(yǎng)好的種子液接種于發(fā)酵培養(yǎng)基,搖瓶溫度28℃、搖床轉(zhuǎn)速220r·min-1,培養(yǎng)120~144h后取發(fā)酵液測效價(jià)。
采用HPLC法測定發(fā)酵液中達(dá)托霉素的產(chǎn)量。液相色譜條件:反向C18色譜柱;流動相為含0.1%三氟乙酸的乙腈-水(46∶54,體積比);流速1mL· min-1;檢測波長220nm;柱溫32℃;進(jìn)樣量15μL。
不同種齡的菌絲經(jīng)過處理后都可以制成原生質(zhì)體,但原生質(zhì)體制備率差異較大。一般對數(shù)生長期的菌絲利于原生質(zhì)體的制備,原生質(zhì)體的再生效果也比較好。分別采用種齡為24h、30h、36h、42h的菌絲制備原生質(zhì)體,考察種齡對原生質(zhì)體形成的影響,結(jié)果見表1。
表1 種齡對原生質(zhì)體形成的影響Tab.1 Effect of seed age on protoplast formation
由表1可知,種齡為30h的菌絲原生質(zhì)體釋放量最大,此時(shí)菌絲處于對數(shù)生長期,菌體活力旺盛,利于原生質(zhì)體的形成,制備的原生質(zhì)體活性更強(qiáng)。因此,種齡為30h的菌絲宜于達(dá)托霉素產(chǎn)生菌原生質(zhì)體的制備。
考察甘氨酸添加量對菌絲濃度及原生質(zhì)體制備率的影響,結(jié)果如圖1所示。
圖1 甘氨酸添加量對菌絲濃度及原生質(zhì)體制備率的影響Fig.1 Effects of glycine addition amount on cell concentration and protoplast preparation rate
鏈霉菌細(xì)胞壁的主要成分肽聚糖主要通過丙氨酸交聯(lián)形成網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。如果在培養(yǎng)鏈霉菌種子時(shí)加入甘氨酸,它的分子結(jié)構(gòu)與丙氨酸類似,可以干擾細(xì)胞壁網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的合成,利于瓦解細(xì)胞壁釋放原生質(zhì)體,但是加入過量的甘氨酸會影響菌體正常生長,不利于原生質(zhì)體制備。由圖1可知,隨著甘氨酸添加量的增加,菌絲濃度不斷降低;當(dāng)甘氨酸添加量低于0.6%時(shí),原生質(zhì)體制備率逐漸上升,高于0.6%時(shí)原生質(zhì)體制備率反而下降。綜合考慮,制備原生質(zhì)體時(shí)在種子培養(yǎng)基中加入0.6%的甘氨酸為宜。
溶菌酶能將鏈霉菌細(xì)胞壁的主要成分肽聚糖水解形成原生質(zhì)體,是鏈霉菌原生質(zhì)體制備的一個(gè)重要影響因素。將菌絲體培養(yǎng)30h后,分別以不同濃度(1 mg·mL-1、2mg·mL-1、3mg·mL-1、4mg· mL-1)的溶菌酶于32℃酶解60min,測定原生質(zhì)體的濃度和再生率,結(jié)果如圖2所示。
圖2 溶菌酶濃度對原生質(zhì)體濃度和再生率的影響Fig.2 Effects of lysozyme concentration on density and regeneration rate of protoplast
由圖2可知,隨著溶菌酶濃度的上升,原生質(zhì)體的濃度也相應(yīng)升高,再生率卻逐漸降低。這可能是因?yàn)椋好笣舛冗^低時(shí)細(xì)胞壁不能充分酶解,原生質(zhì)體濃度較低;而酶濃度過高則降低了原生質(zhì)體的活性,從而降低了原生質(zhì)體的再生率。綜合考慮,溶菌酶的濃度以2mg·mL-1為宜。
將菌絲體培養(yǎng)30h后,在32℃下以2mg·mL-1的溶菌酶酶解不同時(shí)間,測定原生質(zhì)體的濃度和再生率,結(jié)果如圖3所示。
由圖3可知,隨著酶解時(shí)間的延長,原生質(zhì)體的濃度相應(yīng)升高,但再生率卻逐漸降低。這可能是因?yàn)椋好附鈺r(shí)間過長時(shí)細(xì)胞壁去除程度過深,導(dǎo)致合成細(xì)胞壁的引物丟失,進(jìn)而影響了原生質(zhì)體的再生。綜合考慮,酶解時(shí)間以75min為宜。
圖3 酶解時(shí)間對原生質(zhì)體濃度和再生率的影響Fig.3 Effects of enzymolysis time on density and regeneration rate of protoplast
將菌絲體培養(yǎng)30h后,分別以2mg·mL-1的溶菌酶在不同酶解溫度(28℃、30℃、32℃、34℃、36℃)下酶解75min,測定原生質(zhì)體的濃度和再生率,結(jié)果如圖4所示。
圖4 酶解溫度對原生質(zhì)體濃度和再生率的影響Fig.4 Effects of enzymolysis temperature on density and regeneration rate of protoplast
由圖4可知,隨著酶解溫度的上升,原生質(zhì)體的濃度和再生率先升高后降低,均在酶解溫度為32℃時(shí)達(dá)到最高值。這可能是因?yàn)椋好附鉁囟鹊陀?2℃時(shí),溶菌酶活性隨著溫度的升高而不斷增強(qiáng),原生質(zhì)體的濃度和再生率不斷上升;當(dāng)酶解溫度高于32℃時(shí),溶菌酶活性受到抑制,原生質(zhì)體的活性也開始降低,導(dǎo)致原生質(zhì)體的濃度和再生率下降。因此,酶解溫度以32℃為宜。
去除了細(xì)胞壁的原生質(zhì)體對外界的刺激非常敏感,考察玫瑰孢鏈霉菌D-30的原生質(zhì)體在紫外照射不同時(shí)間時(shí)的致死情況,結(jié)果如圖5所示。
通常紫外誘變的致死率多控制在70%~80%。由圖5可知,采用40s的紫外照射時(shí)間誘變玫瑰孢鏈霉菌D-30的原生質(zhì)體比較適宜。因此,確定在紫外燈功率為30W、照射距離為32cm、照射時(shí)間為40s的條件下進(jìn)行玫瑰孢鏈霉菌D-30原生質(zhì)體的紫外誘變。
圖5 紫外照射不同時(shí)間時(shí)達(dá)托霉素產(chǎn)生菌D-30原生質(zhì)體的致死率Fig.5 The death rate of protoplast of strain D-30 at different UV irradiation times
將菌種D-30按確定的最適條件進(jìn)行原生質(zhì)體的制備、誘變及再生,將再生得到的單菌落按1.7方法發(fā)酵培養(yǎng),最終篩選得到達(dá)托霉素高產(chǎn)菌株D-35。將該菌株連續(xù)傳代5次,用HPLC檢測每代搖瓶發(fā)酵單位,達(dá)托霉素的產(chǎn)量波動均在3%以內(nèi),表明其遺傳特性較穩(wěn)定。在10L發(fā)酵罐中進(jìn)行放大驗(yàn)證,菌株D-35的平均發(fā)酵單位與出發(fā)菌株相比提高了87.9%。
(1)確定達(dá)托霉素產(chǎn)生菌玫瑰孢鏈霉菌D-30原生質(zhì)體制備及再生的最適條件為:在種子培養(yǎng)基中添加0.6%的甘氨酸,當(dāng)種子培養(yǎng)30h后,用濃度為2mg ·mL-1的溶菌酶破壁,酶解溫度為32℃,酶解時(shí)間為75min。
(2)紫外誘變處理最適條件下制得的D-30原生質(zhì)體,篩選得到高產(chǎn)菌株D-35,該菌株與出發(fā)菌株相比平均發(fā)酵單位提高了87.9%。表明通過紫外誘變達(dá)托霉素產(chǎn)生菌原生質(zhì)體來篩選達(dá)托霉素高產(chǎn)菌株是一種簡便高效的方法。
[1] PENN J,LI X,WHITING A,et al.Heterologous production of daptomycin in Streptomyces lividans[J].Microbiol Biotechnol,2006,33(2):121-128.
[2] CANEPARI P,BOARETTI M,LLEM M,et al.Lipoteichoic acid as a new target for activity of antibiotics:Mode of action of daptomycin(LY146032)[J].Antimicrobial Agents and Chemotherapy,1990,34(6):1220-1226.
[3] 周劍,劉穎,方東升,等.氮離子注入玫瑰孢鏈霉菌選育達(dá)托霉素高產(chǎn)菌株的研究[J].輻射研究與輻射工藝學(xué)報(bào),2008,26(5):317-320.
[4] HOJATI Z,MILNE C,HARVEY B,et al.Structure,biosynthetic origin,and engineered biosynthesis of calcium-dependent antibiotics fromStreptomyces coelicolor[J].Chemistry and Biology,2002,9(11):1175-1187.
[5] 賀筱蓉,李永泉,趙小立,等.原生質(zhì)體誘變選育去甲基金霉素高產(chǎn)菌[J].杭州大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),1997,24(2):170-177.
[6] 王曉蕾,高慧英,蔣沁,等.他克莫司產(chǎn)生菌原生質(zhì)體制備、再生與誘變[J].河北大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2006,26(1):25-29.
[7] 朱林東,金志華.普那霉素產(chǎn)生菌的原生質(zhì)體誘變育種[J].中國抗生素雜志,2006,31(10):591-619.
[8] 諸葛健,唐是雯.工業(yè)微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)手冊[J].北京:中國輕工業(yè)出版社,1994.