陳宜方 陳建國(guó) 王虹 鄭志貴 崔曉萌 何東元
●論 著
黃芪甲苷抑制糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡的作用和機(jī)制研究
陳宜方 陳建國(guó) 王虹 鄭志貴 崔曉萌 何東元
目的 探討黃芪甲苷(AS-IV)抑制糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡的作用及其機(jī)制,為糖尿病腎病的治療開(kāi)辟新途徑。方法將體重180~220g健康雄性SD大鼠按配伍法分為正常對(duì)照組、糖尿病組和糖尿病AS-IV治療組,每組10只,鏈脲霉素(STZ)腹腔注射法建立糖尿病大鼠模型,糖尿病AS-IV治療組予AS-IV 10mg/(kg·d)治療,共8周;糖尿病組予等量1%CMC混懸液;正常對(duì)照組不予處理。第8周末測(cè)量大鼠體重、24h尿白蛋白、血糖、糖化血紅蛋白(HbA1c)、ALT、血尿素氮、肌酐水平;PAS、Masson染色,光鏡觀察腎臟病理變化;腎母細(xì)胞瘤基因1(WT-1)免疫組織化學(xué)染色觀察腎小球足細(xì)胞密度變化,TUNEL染色觀察足細(xì)胞凋亡,real-time PCR及Western blot測(cè)大鼠腎皮質(zhì)凋亡相關(guān)蛋白Bcl-2、Bax及其mRNA表達(dá)的變化。結(jié)果 與正常對(duì)照組相比,糖尿病組大鼠血糖、HbA1c和24h尿白蛋白增高,腎小球足細(xì)胞數(shù)量減少,系膜增生,足細(xì)胞凋亡增加,Bcl-2及其mRNA表達(dá)下調(diào),Bax及其mRNA表達(dá)上調(diào),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。AS-IV可顯著改善糖尿病大鼠蛋白尿,抑制腎小球足細(xì)胞數(shù)目減少、系膜區(qū)增生、足細(xì)胞凋亡,上調(diào)Bcl-2表達(dá),抑制Bax表達(dá)。結(jié)論 AS-IV對(duì)早期糖尿病大鼠足細(xì)胞具有保護(hù)作用,可能與其調(diào)節(jié)凋亡蛋白Bcl-2和Bax,抑制足細(xì)胞凋亡相關(guān)。
黃芪甲苷 糖尿病腎病 足細(xì)胞 凋亡
糖尿病腎病是糖尿病微血管并發(fā)癥,是糖尿病患者死亡的重要原因之一。在歐美等發(fā)達(dá)國(guó)家和我國(guó)沿海發(fā)達(dá)城市,糖尿病腎病已經(jīng)成為慢性腎臟疾病的首要病因[1]。足細(xì)胞和腎小球基底膜、毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞共同組成腎臟濾過(guò)屏障,足細(xì)胞功能障礙和(或)數(shù)量減少直接導(dǎo)致蛋白尿的產(chǎn)生[2]。既往研究顯示,足細(xì)胞凋亡在糖尿病腎病的發(fā)生、發(fā)展過(guò)程中起重要作用,但目前尚無(wú)針對(duì)足細(xì)胞凋亡的特異性藥物[3]。黃芪是祖國(guó)中醫(yī)治療腎臟疾病的傳統(tǒng)中藥之一,黃芪甲苷(AS-IV)是黃芪主要活性成分之一。前期研究顯示,AS-IV可抑制高糖誘導(dǎo)的足細(xì)胞凋亡[4],現(xiàn)進(jìn)一步探索AS-IV能否抑制糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡并探索相關(guān)機(jī)制,旨在為糖尿病腎病的治療提供新的思路,現(xiàn)報(bào)道如下。
1.1 材料 鏈脲霉素(STZ)、AS-IV單體(TLC純度達(dá)98%)、羧甲基纖維素(美國(guó)Sigma公司),Trizol試劑、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒SuperScript RT kit Total(美國(guó)Invitrogen公司),兔源性抗腎母細(xì)胞瘤基因1(WT-1)(一抗)、抗Bcl-2、抗Bax、抗β-actin抗體、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔(二抗)、ECL化學(xué)發(fā)光劑(美國(guó)Santa Cruz公司),TUNEL染色試劑盒(美國(guó)Roche公司),Triton X-100裂解緩沖液、BCA蛋白檢測(cè)試劑盒(中國(guó)上海聯(lián)碩生物科技有限公司);便攜式血糖儀(美國(guó)Roche公司),自動(dòng)生化分析儀(美國(guó)Technicon公司),免疫發(fā)光分析儀(美國(guó)雅培公司),Bio-Rad2000凝膠成像系統(tǒng)(美國(guó)Bio-Rad公司),Rotor-Gene3000 PCR儀(澳大利亞Corbett Research公司)。
1.2 糖尿病模型的建立及處理 體重180~220g健康雄性SD大鼠30只(浙江大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心)按照配伍法分為正常對(duì)照組、糖尿病組和糖尿病AS-IV治療組,每組10只。STZ溶于0.1mol/L檸檬酸沖液(pH 4.2)中,65mg/kg一次性腹腔注射法建立糖尿病模型。STZ注射后72h斷尾采血,空腹血糖>16.7mmol/L認(rèn)為糖尿病造模成功。AS-IV溶于1%羧甲基纖維素(CMC)中。糖尿病AS-IV治療組大鼠在造模成功后予AS-IV 10mg/(kg· d)灌胃,共8周。糖尿病組給予等量1%CMC混懸液。正常對(duì)照組不予處理。第8周末收集各組大鼠24h尿液,免疫比濁法測(cè)尿白蛋白。測(cè)量大鼠體重,戊巴比妥納麻醉后心臟取血,用于生化指標(biāo)檢測(cè)。留取雙側(cè)腎臟,用于光鏡病理、免疫組化、Western blot及real-time PCR檢測(cè),多余組織液氮速凍后-80℃保存。
1.3 生化項(xiàng)目檢查 便攜式血糖儀檢測(cè)血糖,化學(xué)發(fā)光法測(cè)血糖化血紅蛋白(HbA1c),自動(dòng)生化分析儀檢測(cè)ALT、肌酐、尿素氮。
1.4 病理檢查 腎組織以4%中性甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋、切片,分別行PAS和Masson染色,光鏡下觀察腎組織形態(tài)學(xué)變化。每張腎臟切片隨機(jī)觀察20個(gè)視野。PAS染色觀察腎小球系膜增生,用圖像分析軟件Image-Pro Plus 6.0[5]對(duì)腎小球系膜區(qū)進(jìn)行吸光度掃描,計(jì)算每個(gè)腎小球系膜區(qū)與腎小球總面積,以系膜區(qū)總面積/腎小球總面積半定量表示系膜增生情況。Masson染色觀察間質(zhì)纖維化,半定量評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)如下:0,無(wú)纖維化;1,纖維化面積<10%;2,纖維化面積10%~25%;3,纖維化面積25%~50%;4,纖維化面積>50%[6]。
1.5 腎小球足細(xì)胞密度檢測(cè) 免疫組化檢測(cè)足細(xì)胞特異抗原WT-1。加入一抗,二氨基聯(lián)苯胺顯色,WT-1陽(yáng)性的足細(xì)胞染成棕色。平均每只大鼠觀察20個(gè)腎小球,圖像分析軟件為Image pro plus 6.0,WT-1陽(yáng)性面積/腎小球面積代表足細(xì)胞密度,計(jì)算均值和標(biāo)準(zhǔn)差。
1.6 足細(xì)胞凋亡檢測(cè) 根據(jù)說(shuō)明書(shū)采用TUNEL染色試劑盒染色大鼠腎組織石蠟切片,凋亡細(xì)胞染成棕色。位于腎小球基底膜外側(cè)的陽(yáng)性細(xì)胞為凋亡足細(xì)胞。平均每只大鼠觀察5個(gè)400倍視野,統(tǒng)計(jì)凋亡足細(xì)胞,計(jì)算均值和標(biāo)準(zhǔn)差。
1.7 Western blotTriton X-100裂解緩沖液溶解腎組織并在冰浴中充分勻漿。BCA蛋白檢測(cè)試劑盒檢測(cè)腎組織蛋白濃度。SDS-PAGE凝膠電泳分離樣品,100V電轉(zhuǎn)膜至PVDF膜。含 2%牛血清白蛋白的TBST(20mmol/L Tris-HCl,150mmol/L NaCl,0.1%Tween 20)室溫孵育60min封閉非特異性位點(diǎn),抗Bax、Bcl-2、βactin抗體4℃孵育24h,加入二抗室溫孵育60min,ECL液顯色檢測(cè)蛋白信號(hào),Bio-Rad2000凝膠成像系統(tǒng)掃描蛋白條帶的光密度。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,計(jì)算均值和標(biāo)準(zhǔn)差。
1.8 real-time PCR檢測(cè) Trizol法提取腎組織總RNA。根據(jù)說(shuō)明書(shū)采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒SuperScript RT kit Total合成cDNA。Bcl-2引物上游序列為5'GGGATGCCTTTGTGGAACTATATG3',下游序列為5'CAGCCAGGAGAAATCAAACAGA3'。Bax引物上游序列為5'AGACACCTGAGCTGACCTTGGA3',下游序列為5'CGCTCAGCTTCTTGGTGGAT3';GAPDH為內(nèi)參,上游序列為5'TCCCTCAACATTGTCAGCAA3',下游序列為 5'AGCTCCACAACGGATACATT3'。采用Rotor-Gene3000 PCR儀進(jìn)行real-time PCR檢測(cè)。反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5min,95℃變性10s,59℃退火15s,72℃延伸20s,擴(kuò)增40個(gè)循環(huán)最后72℃延伸5min。熒光定量分析軟件讀取并計(jì)算目標(biāo)mRNA/GAPDH mRNA的比值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,計(jì)算均值和標(biāo)準(zhǔn)差。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以表示,組間比較采用單因素方差分析。
2.1 各組大鼠8周末24h尿白蛋白水平的比較 正常對(duì)照組8周末24h尿白蛋白水平為(308.60±41.23)mg,糖尿病組為(3 203.78±492.14)mg,糖尿病AS-IV治療組為(2 080.52±412.31)mg。與正常對(duì)照組相比,糖尿病組、糖尿病AS-IV治療組大鼠尿白蛋白水平均顯著增加,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;糖尿病AS-IV治療組大鼠尿白蛋白水平低于糖尿病組,可見(jiàn)AS-IV能顯著降低糖尿病大鼠尿白蛋白水平。
2.2 各組大鼠腎組織光鏡及半定量分析結(jié)果的比較光鏡病理示糖尿病大鼠腎小球系膜增生,部分腎小管間質(zhì)纖維化,AS-IV治療后可顯著緩解糖尿病大鼠腎臟系膜增生和間質(zhì)纖維化;與正常對(duì)照組比較,糖尿病組、糖尿病AS-IV治療組的系膜增生比例、間質(zhì)纖維化指數(shù)均明顯增高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;AS-IV治療后系膜增生比例、間質(zhì)纖維化指數(shù)明顯低于糖尿病組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,詳見(jiàn)圖1(見(jiàn)插頁(yè))、表1。
表1 各組大鼠腎組織系膜增生比例和間質(zhì)纖維化指數(shù)比較
2.3 各組大鼠腎組織WT-1免疫組化染色及足細(xì)胞密度半定量分結(jié)果析的比較 WT-1免疫組織化學(xué)染色結(jié)果顯示,AS-IV可抑制糖尿病大鼠腎臟足細(xì)胞減少;半定量分析結(jié)果顯示,正常對(duì)照組足細(xì)胞密度為4.13×10-4±7.62×10-5,糖尿病組為8.67×10-5±1.64×10-5,糖尿病AS-IV治療組為2.48×10-4±7.29×10-5,糖尿病大鼠腎臟足細(xì)胞密度較正常對(duì)照組顯著降低,而糖尿病AS-IV治療組足細(xì)胞密度高于糖尿病組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,詳見(jiàn)圖2(見(jiàn)插頁(yè))。
2.4 各組大鼠腎臟TUNEL染色和凋亡足細(xì)胞半定量分析 TUNEL染色結(jié)果顯示,AS-IV可抑制糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡;半定量分析結(jié)果顯示,正常對(duì)照組凋亡足細(xì)胞(0.867±0.571)個(gè),糖尿病組為(7.933±1.388)個(gè),糖尿病AS-IV治療組為(6.033±1.326)個(gè)。糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡較正常對(duì)照組顯著增加,而AS-IV治療后凋亡足細(xì)胞數(shù)明顯減少,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,詳見(jiàn)圖3(見(jiàn)插頁(yè))。
圖1 各組大鼠腎組織光鏡結(jié)果(腎組織PAS和Masson染色,×200)
圖2 各組大鼠腎組織WT-1免疫組化染色結(jié)果(棕色為WT-1陽(yáng)性足細(xì)胞;×200)
圖3 各組大鼠腎臟TUNEL染色結(jié)果(位于腎小球基底膜外側(cè)的棕色細(xì)胞為凋亡的足細(xì)胞;×400)
2.5 各組大鼠腎組織Bax、Bcl-2及其mRNA表達(dá)的比較 和正常對(duì)照組相比,糖尿病大鼠Bcl-2 mRNA表達(dá)降低,Bax mRNA表達(dá)增加;AS-IV可部分恢復(fù)Bcl-2 mRNA的表達(dá),抑制Bax mRNA表達(dá)增加,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。Western blot檢測(cè)顯示,各組大鼠腎臟Bcl-2、Bax變化趨勢(shì)和mRNA表達(dá)一致。和正常對(duì)照組相比,糖尿病大鼠Bcl-2表達(dá)降低,而B(niǎo)ax表達(dá)增加,AS-IV治療可抑制Bax的升高和Bcl-2的降低,詳見(jiàn)圖4、表2。
表2 各組大鼠腎組織Bax、Bcl-2 mRNA表達(dá)
2.6 各組大鼠8周末體重和生化指標(biāo)的比較 與正常對(duì)照組大鼠相比,糖尿病組大鼠體重明顯降低,血糖、HbA1c明顯升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,ALT、尿素氮、肌酐雖有升高,但差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。AS-IV治療對(duì)血糖、HbA1c、尿素氮、肌酐無(wú)顯著影響,詳見(jiàn)表3。
表3 各組大鼠8周末體重和生化指標(biāo)的比較
目前糖尿病腎病已經(jīng)成為終末期腎衰竭的首要病因,其早期表現(xiàn)為微量白蛋白尿,晚期有腎小球?yàn)V過(guò)率(GFR)的下降以及心血管并發(fā)癥[7]。糖尿病腎病的主要病理改變有:腎小球基底膜增厚、系膜區(qū)擴(kuò)張、系膜細(xì)胞增生、基質(zhì)增多等。本研究通過(guò)STZ腹腔注射法建立糖尿病大鼠模型。糖尿病大鼠血糖、HbA1c和24h尿白蛋白水平顯著高于正常對(duì)照組,8周末血尿素氮、肌酐也顯著升高,光鏡病理顯示腎臟系膜增生和間質(zhì)纖維化,說(shuō)明AS-IV治療可改善糖尿病大鼠蛋白尿以及腎組織病理學(xué)。
足細(xì)胞是腎小球?yàn)V過(guò)屏障的最外層,是高度分化的特異細(xì)胞,幾乎沒(méi)有增殖能力。足細(xì)胞數(shù)目減少直接導(dǎo)致蛋白尿的發(fā)生[8-9]。Siu等[10]研究發(fā)現(xiàn)糖尿病大鼠足細(xì)胞數(shù)量和密度從2周起就出現(xiàn)減少,且隨著病程的延長(zhǎng)而加劇。Steffes等[11]研究發(fā)現(xiàn)1型糖尿病患者足細(xì)胞數(shù)量減少與年齡、病程長(zhǎng)短無(wú)明顯相關(guān)。因此,抑制足細(xì)胞減少應(yīng)成為糖尿病腎病的治療靶點(diǎn)。
圖4 各組大鼠腎組織Bax、Bcl-2及其mRNA表達(dá)和半定量分析(A:Bax、Bcl-2光密度圖;B:Bax表達(dá)半定量分析;C:Bcl-2表達(dá)半定量分析;與正常對(duì)照組比較,*P<0.05;與糖尿病組比較,#P<0.05)
WT-1為足細(xì)胞特異性蛋白,與腎臟發(fā)育密切相關(guān),出生后僅在于成熟足細(xì)胞表達(dá),對(duì)足細(xì)胞功能的維持起重要作用[12]。本研究中采用WT-1免疫組化染色標(biāo)記足細(xì)胞,并通過(guò)圖像分析軟件對(duì)足細(xì)胞密度進(jìn)行半定量分析,結(jié)果表明糖尿病大鼠足細(xì)胞密度較正常對(duì)照組顯著降低,而AS-IV治療可緩解足細(xì)胞密度下降。
凋亡是糖尿病腎病足細(xì)胞減少的重要原因[13],這一過(guò)程伴隨著抗凋亡蛋白Bcl-2和促凋亡蛋白Bax的表達(dá)變化[14]。高糖的滲透作用不是糖尿病足細(xì)胞凋亡的原因,相同滲透濃度的D-甘露醇并不能誘導(dǎo)足細(xì)胞凋亡[4]。為探索AS-IV的緩解足細(xì)胞丟失的相關(guān)機(jī)制,筆者觀察了足細(xì)胞凋亡和Bax、Bcl-2 mRNA的表達(dá)變化。Bax介導(dǎo)TGF-β1誘導(dǎo)的足細(xì)胞凋亡[7]。在人類IgA腎病中,足細(xì)胞Bcl-2表達(dá)下降與腎小球進(jìn)行性損傷及預(yù)后不良相關(guān)[15]。本研究結(jié)果顯示糖尿病大鼠足細(xì)胞凋亡增加,腎皮質(zhì)Bax及其mRNA表達(dá)增加,Bcl-2及其mRNA表達(dá)降低。AS-IV可抑制糖尿病大鼠腎臟足細(xì)胞凋亡,抑制Bax、Bcl-2及其mRNA的表達(dá)變化,提示可能ASIV通過(guò)調(diào)節(jié)Bax和Bcl-2,抑制足細(xì)胞凋亡,抑制足細(xì)胞數(shù)量的減少。
最后,筆者研究了各組大鼠體重和生化指標(biāo)的變化。糖尿病AS-IV治療組和糖尿病組大鼠的血糖、HbA1c、ALT、血肌酐和尿素氮差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示AS-IV抗足細(xì)胞凋亡和降低蛋白尿的作用和血糖調(diào)控?zé)o關(guān),且無(wú)明顯肝腎毒副反應(yīng),表明AS-IV可能成為一種安全有效的藥物用于治療糖尿病腎病。
綜上所述,AS-IV可通過(guò)調(diào)節(jié)Bax、Bcl-2的表達(dá),抑制足細(xì)胞凋亡,減少蛋白尿,緩解糖尿病腎病,該研究結(jié)果對(duì)開(kāi)發(fā)直接針對(duì)腎小球足細(xì)胞的腎臟保護(hù)藥物提供了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
[1]Zhang L,Wang F,Wang L,et al.Prevalence of chronic kidney disease in China:a cross-sectional survey[J].The Lancet,2012, 379(9818):815-822.
[2]Mundel P,Shankland S J.Podocyte biology and response to injury[J].Journal of the American Society of Nephrology,2002,13 (12):3005-3015.
[3]Marshall S M.The podocyte:a potential therapeutic target in diabetic nephropathy[J]?Current pharmaceutical design,2007, 13(26):2713-2720.
[4]Gui D,Guo Y,Wang F,et al.Astragaloside IV,a novel antioxidant,prevents glucose-induced podocyte apoptosis in vitro and in vivo[J].PloS one,2012,7(6):e39824.
[5]So B I,Song Y S,Fang C H,et al.G-CSF prevents progression of diabetic nephropathy in rat[J].PloS one,2013,8(10):e77048.[6]Fujihara C K,Noronha I D L,Malheiros D M A C,et al.Combined mycophenolate mofetil and losartan therapy arrests established injury in the remnant kidney[J].Journal of the American Society of Nephrology,2000,11(2):283-290.
[7]Parving H H.Diabetic nephropathy:prevention and treatment[J].Kidney international,2001,60(5):2041-2055.
[8]Kim Y H,Goyal M,Kurnit D,et al.Podocyte depletion and glomerulosclerosis have a direct relationship in the PAN-treated rat[J].Kidney international,2001,60(3):957-968.
[9]Shankland S J.The podocyte's response to injury:role in proteinuria and glomerulosclerosis[J].Kidney International,2006,69 (12):2131-2147.
[10]Siu B,Saha J,Smoyer W E,et al.Reduction in podocyte density as a pathologic feature in early diabetic nephropathy in rodents:prevention by lipoic acid treatment[J].BMC Nephrology, 2006,7(1):6.
[11]Steffes M W,Schmidt D,Mccrery R,et al.Glomerular cellnumber in normal subjects and in type 1 diabetic patients[J].Kidney international,2001,59(6):2104-2113.
[12]Michaud J,Kennedy C.The podocyte in health and disease: insightsfromthemouse[J].Clinicalscience,2007,112:325-335.
[13]Xu J,Li Z,Xu P,et al.Protective effects of leukemia inhibitory factor against oxidative stress during high glucose-induced apoptosis in podocytes[J].Cell Stress and Chaperones,2012, 17(4):485-493.
[14]Schiffer M,Bitzer M,Roberts I S D,et al.Apoptosis in podocytes induced by TGF-β and Smad7[J].The Journal of clinical Investigation,2001,108(108(6)):807-816.
[15]Qiu L Q,Sinniah R,Stephen I,et al.Downregulation of Bcl-2 by podocytes is associated with progressive glomerular injury and clinical indices of poor renal prognosis in human IgA nephropathy[J].Journal of the American Society of Nephrology, 2004,15(1):79-90.
Inhibitory effects of astragaloside IV on apoptosis of podocytes and its mechanism in diabetic rats
Objective To investigate the effects of astragaloside IV(AS-IV)on apoptosis of podocytes and its mechanism in diabetic rats.Methods Male SD rats were randomly divided into normal control group,diabetes group and diabetes with AS-IV treatment group with 10 in each group.Diabetes was induced by STZ intraperitoneal injection in rats.Rats in treatment group were given AS-IV 10mg/kg/d for 8 weeks.At the end of the 8th week,24h microalbumin,body weight,blood glucose, blood glycated hemoglobin A1c,alanine aminotransferase,blood urea nitrogen and creatinine were measured;renal pathological changes were evaluated by light microscopy with PAS and Masson staining;glomerular podocyte density was examined by WT-1 immunohistochemical staining;podocyte apoptosis was detected by TUNEL;the mRNA and protein expression of Bax and Bcl-2,apoptosis-related proteins in rat renal cortex were determined by Western blot and real time-PCR. Results Hyperglycemia,increased 24h microalbumin,mesangial expansion,interstitial fibrosis,podocyte loss and podocyte apoptosis,increased mRNA and protein expression of Bax and decreased mRNA and protein expression of Bcl-2 were detected in diabetic rats.AS-IV treatment inhibited podocyte apoptosis,ameliorated podocyte loss and renal histopathology,decreased microalbumin,partially restored mRNA and protein expression of Bax and Bcl-2.Conclusion AS-IV may inhibit podocyte apoptosis and ameliorate diabetic nephropathy by inhibiting the expression of Bax and restoring the expression of Bcl-2 in diabetic rats.
Astragaloside IV Diabetic nephropathy Podocyte Apoptosis
2014-07-03)
(本文編輯:嚴(yán)瑋雯)
浙江省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(LY12H05001)
310013 杭州,浙江醫(yī)院腎內(nèi)科
何東元,E-mail:hdy331@qq.com