国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

棕色脂肪分化的信號調(diào)節(jié)及其運動適應(yīng)機制研究進展

2014-04-15 02:43史珺漆正堂丁樹哲
中國運動醫(yī)學(xué)雜志 2014年4期
關(guān)鍵詞:棕色白色分化

史珺 漆正堂 丁樹哲

青少年健康評價與運動干預(yù)教育部重點實驗室,華東師范大學(xué)體育與健康學(xué)院(上海200241)

哺乳動物體內(nèi)一般存在兩種類型的脂肪組織,分別為白色脂肪組織 (white adipose tissue,WAT)和棕色脂肪組織(brown adipose tissue,BAT)。從形態(tài)學(xué)看,棕色脂肪細胞內(nèi)分布著很多小脂滴,呈現(xiàn)“多室”特征,而白色脂肪細胞內(nèi)只含有一個大脂滴,表現(xiàn)為“單室”特征;在能量代謝方面,WAT 以脂肪儲存為主,BAT 則主要以氧化脂肪釋放能量為主。 采用18FDG -PET (18fluoro -labeled 2 -deoxy -glucose positron emission tomography) 掃描技術(shù)可清楚地顯示,大部分正常成人頸部、腋窩、鎖骨、脊髓和腹腔等部位有明顯的棕色脂肪庫。 BAT 的含量與人體整體肥胖水平呈反比[1,2],與BMI 也呈反比關(guān)系[3,4]。 近些年來, 關(guān)于棕色脂肪分化機制及其運動適應(yīng)的研究有許多新進展,本文對此進行綜述。

1 BAT 與肥胖

早在19 世紀30 年代, 研究者就希望通過產(chǎn)熱增加能量消耗來治療肥胖,藥物治療是方法之一。 藥物通常有明顯的特異性,常常作用于交感神經(jīng)系統(tǒng)[5],中斷產(chǎn)熱和攝食的關(guān)聯(lián),BAT 是大多數(shù)藥物的靶組織。目前纖維原細胞生長因子21(Fgf21)[6]和膽汁酸[7]被認為是潛在的生熱劑, 但是長期服用這些藥物可能對心血管系統(tǒng)產(chǎn)生有害影響。 冷暴露也是方法之一,長期冷暴露可使BAT 最大化適應(yīng)性產(chǎn)熱。 大鼠實驗表明,高脂膳食肥胖老鼠在-4℃環(huán)境中治療,肥胖得到改善[8]。 Yoneshiro 等[2]的研究發(fā)現(xiàn),冷暴露導(dǎo)致的能量消耗增加與BAT 的分化呈正相關(guān), 提示BAT 應(yīng)被歸入到冷暴露導(dǎo)致能量消耗增加的機制之中。Cypess 等[1]采用18FDG-PET 技術(shù)對1972 名患者進行實證研究, 結(jié)果顯示BAT 的含量與BMI 呈反比,尤其是對老年人而言。 Vijgen 等[4]對病態(tài)肥胖者的研究也 顯示,BAT 的活性與BMI、BF%(body fat percentage)呈反比。鑒于BAT 與肥胖的高度相關(guān)性,研究者對BAT 產(chǎn)熱耗能治療肥胖進行了深入研究。Leibel 等[9]的經(jīng)典研究顯示,肥胖者減肥后其整體能量消耗 (基礎(chǔ)代謝率) 比相同體重未減肥者下降20%,且這種下降是永久性的。 Rothwell 等[10]的研究表明, 成人體內(nèi)40~50 g 的功能型BAT 足以增加人體20%的基礎(chǔ)代謝率。 而根據(jù)van Marken Lichtenbelt 等[11]的研究推算, 成人體內(nèi)250 g 的功能型BAT 才可以增加全身基礎(chǔ)能量消耗的20%。 目前,BAT 是唯一被確認可以非顫栗性產(chǎn)熱的組織器官[12]。 利用BAT 治療肥胖還要進行長期的摸索。

2 棕色脂肪分化

2.1 棕色脂肪的分化路徑

研究者原本認為棕色脂肪與白色脂肪擁有相同的分化前體,但后來發(fā)現(xiàn)并非如此。 Myf5(生肌因子5)是在胚胎發(fā)育時肌祖細胞中最早被誘導(dǎo)表達的因子,是生肌調(diào)節(jié)因子家族(MRFs)的一個成員。 Myf5-(Myf5-negative) 祖細胞可分化為血管基質(zhì)層(stromal vascular fraction,SVF),SVF 最終分化為白色脂肪細胞[13]。Myf5+(Myf5-positive)祖細胞可誘導(dǎo)分化為中央生皮肌節(jié)(central dermomyotome),后者最終分化為肩胛間經(jīng)典棕色脂肪細胞和骨骼肌細胞[14]。 因此, 經(jīng)典棕色脂肪細胞與骨骼肌細胞在分化上具有同源性,這一同源性很可能決定了BAT 的代謝特征與WAT 相距較遠,而與骨骼肌更為接近。 棕色脂肪細胞富含線粒體也是BAT 與骨骼肌同源性的又一特征。

另一方面, 棕色脂肪也可能來源于白色脂肪的轉(zhuǎn)分化。 UCP1 是BAT 產(chǎn)熱的關(guān)鍵基因, 也是BAT的特異性表達基因。 在長期冷暴露和β 腎上腺素能受體激動劑的刺激下, 成年動物白色脂肪細胞可能分化為UCP1-positive 脂肪細胞。 這些誘導(dǎo)產(chǎn)生的棕色樣脂肪細胞(beige cells 或者brite cells)具有許多經(jīng)典棕色脂肪細胞的生化和形態(tài)特征, 包括細胞內(nèi)脂滴具有“多室”的特征[15]。 但它們來自Myf5-細胞系,與經(jīng)典棕色脂肪細胞有著截然不同的起源。重要的是, 棕色脂肪細胞分化與轉(zhuǎn)錄因子PRDM16 相關(guān)聯(lián),PRDM16 是引導(dǎo)棕色脂肪分化的決定性因子,而這些來自WAT 的brite cells 雖然有消耗脂肪產(chǎn)熱的能力,但并不能表達PRDM16,而仍表達WAT 特異性的轉(zhuǎn)錄因子Hoxc9[16]。目前,尚不清楚brite cells 的表型是否為嚙齒動物所特有,人體WAT 中是否可以觀察到這種表型。 一些人體研究顯示,人體WAT 轉(zhuǎn)分化為BAT 要依賴PRDM16[17],這與大鼠brite cells的轉(zhuǎn)錄表達似乎并不一致。 目前尚不清楚是否所有的WAT 都有可能被誘導(dǎo)棕色脂肪樣表型,并且這種誘導(dǎo)是否受年齡、胰島素敏感性等因素的影響。

簡而言之,在發(fā)育起源上,棕色脂肪和白色脂肪由不同的祖細胞分化而來, 棕色脂肪和骨骼肌由Myf5+祖細胞分化,WAT 由Myf5-祖細胞分化。但白色脂肪在一定條件下也可轉(zhuǎn)分化為棕色脂肪。 這兩種途徑都可能是棕色脂肪的分化途徑(如圖1 所示)。

圖1 棕色脂肪的分化路徑及其調(diào)控因子

2.2 棕色脂肪分化的調(diào)控因子

棕色脂肪細胞與白色脂肪細胞有相似之處,二者的形態(tài)分化都受PPARγ(peroxisome proliferatorsactivated receptor γ) 和 C/EBP (CCAAT/enhancer binding protein)家族成員的轉(zhuǎn)錄調(diào)控[18]。 PPARγ 和C/EBPα 是脂肪細胞分化的重要轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,二者協(xié)同調(diào)控脂肪細胞分化。C/EBPβ 在脂肪形成的早期階段被迅速誘導(dǎo),對PPARγ、C/EBPα 的轉(zhuǎn)錄誘導(dǎo)起關(guān)鍵作用。

2.2.1 棕色脂肪分化的抑制因子

近年來, 對棕色脂肪分化的抑制因子研究有一些新進展, 但研究較為分散。 RB(retinoblastoma protein)蛋白家族成員包括pRB、P107、P130,它們能夠與E2F 轉(zhuǎn)錄因子家族的蛋白結(jié)合, 抑制靶基因轉(zhuǎn)錄。 已經(jīng)證實RB 參與脂肪、 肌肉等多種組織的分化。 Hansen 等[19]的研究表明,白色脂肪前體細胞的pRB(retinoblastoma protein)失活,導(dǎo)致棕色脂肪特異性UCP-1 表達。 且在β3-腎上腺素受體激動劑治療時,pRB 表達下調(diào)伴隨著白色脂肪棕色化。 P107 對白色脂肪棕色化起抑制作用。 Scimè 等[20]將出生后5天的小鼠敲除P107, 到3 周齡時70%的小鼠死亡。解剖顯示,敲除P107 的小鼠WAT 含量嚴重受損,且棕色脂肪特異性因子PGC-1α 和UCP-1 表達水平均顯著性升高。 RIP140 是一個配體依賴性的核受體活性抑制因子。 RIP140 對白色脂肪棕色化和線粒體呼吸有明顯的抑制作用[21]。 RIP140 敲除后導(dǎo)致白色脂肪棕色化關(guān)鍵因子的表達發(fā)生改變,包括UCP-1、PPARγ、cidea 等均上調(diào)。 相比較棕色脂肪分化的抑制因子, 對棕色脂肪分化誘導(dǎo)因子的研究更為系統(tǒng)和深入。

2.2.2 棕色脂肪分化誘導(dǎo)因子

從前脂肪細胞直到終末分化為棕色脂肪細胞,目前被證實的有利于棕色脂肪細胞生成的分子有:PRDM16、PPARα、PPARγ、PGC-1α(peroxisome proliferator -activated receptor -γ co -activator 1α)、C/EBPα、CREB (cyclic AMP response element binding protein)、microRNA 等[22]。 相對于WAT,PGC-1α 在BAT 中特異性高表達。 PGC-1α 作為輔因子能與PPARγ 結(jié)合,并作用于UCP1 的啟動子。在白色脂肪細胞中過表達PGC-1α 能誘導(dǎo)線粒體生成及UCP1表達[23]。 PRDM16 由Spiegelman 實驗室發(fā)現(xiàn)并于2007 年首次報道,在BAT 中特異性表達。 從目前的研究來看,PRDM16 可看作是棕色脂肪分化的輔激活因子,可調(diào)控PPARα、CtBP、PGC-1α、PPARγ 的轉(zhuǎn)錄活性,誘導(dǎo)棕色脂肪特有基因的表達。PRDM16 與PPARα 結(jié)合后激活其轉(zhuǎn)錄活性,可以誘導(dǎo)棕色脂肪/骨骼肌的轉(zhuǎn)化[15]。 有研究指出PRDM16 的表達可能是由于PPARα 的刺激,因此得出WAT 中PPARα 的激活導(dǎo)致了棕色脂肪基因表達, 如PGC-1α 和PRDM16[18]。而PGC-1α 和PRDM16 的表達又會促進WAT 中UCP1 的表達,即白色脂肪棕色化[24]。另一方面,PRDM16 與輔助共抑制因子CtBP-1 (Cterminal-binding protein-1)和CtBP-2(C-terminalbinding protein-2) 結(jié)合后,PRDM16 被募集到WAT特有基因的啟動子上,然后抑制這些WAT 特異性基因的轉(zhuǎn)錄,從而抑制向白色脂肪的分化[25]。 更為重要的是,在成纖維細胞中,PRDM16 與C/EBPα 配對后,依然有激活棕色脂肪分化的能力[25]。 總之,PRDM16在棕色脂肪細胞分化過程中扮演著非常重要的角色。

Ahfeldt 等[26]的研究顯示,PPARγ2 可誘導(dǎo)間質(zhì)干細胞(mesenchymal progenitor cells,MPCs)或者脂肪源間質(zhì)血管細胞(adipose-derived stromal vascular cells,ADSVCs)分化為白色脂肪細胞,而當C/EBPβ與PRDM16 結(jié)合到PPARγ2 后, 就會出現(xiàn)棕色脂肪的表型,伴有UCP1 高表達。 另一個非常重要的調(diào)節(jié)物 是insulin/IGF-1,insulin/IGF-1 通 過IRS-1 磷 酸化刺激棕色脂肪的分化, 經(jīng)過Ras-ERK1/2 通路和磷酸肌醇3 蛋白激酶通路 (phosphoinositide 3 kinase-Akt pathway) 協(xié)同作用抑制necdin 表達[27]。necdin 可以加強成肌分化,抑制脂肪分化。 先前的研究也表明[28],敲除胰島素受體底物(insulin receptor substrate,IRS)后,necdin 顯著升高,細胞分化停止。而當重組IRS 后,necdin 基因沉默,此時細胞重新向棕色脂肪細胞分化。

2.2.3 microRNA

最新研究顯示,microRNA 與棕色脂肪分化相關(guān), 且不同的microRNA 對棕色脂肪分化有不同的調(diào)節(jié)作用, 如microRNA-133 起抑制作用,miR-193b-365 起誘導(dǎo)作用。研究者發(fā)現(xiàn)miR-133 通過作用于靶基因PRDM16 的3’-UTR 區(qū)調(diào)控肌肉干細胞和棕色脂肪細胞分化。 miR-133 AntagomiR 是人工合成的miR-133 反義RNA。 在生肌過程中經(jīng)過miR-133 AntagomiR 處理可增加肌細胞解偶聯(lián)作用、生熱作用以及增強全身的能量消耗,調(diào)控肌肉干細胞向棕色脂肪細胞分化。研究表明,暴露于冷環(huán)境下的小鼠miR-133 水平下調(diào),導(dǎo)致肌肉干細胞重新生成棕色脂肪組織[29]。 另一個有調(diào)節(jié)作用的分子是miR-193b-365。 miR-193b-365 是一個有利于脂肪形成的共轉(zhuǎn)錄miRNA 基因簇, 包含miR-193b 和miR-365 等轉(zhuǎn)錄因子。 Sun 等[30]對SVF 細胞分化的研究顯示,miR-193b-365 是棕色脂肪形成所必需的。 實驗用鎖核酸LNA 阻礙miR-193b 和miR-365對棕色脂肪形成的影響。 結(jié)果顯示,與對照組相比,棕 色 脂 肪 標 記 蛋 白Cidea、Dio2、PGC-1α、PPARγ、PRDM16、UCP1 均顯著下降。 miR-193b 可能通過抑制RunX1T1 誘導(dǎo)棕色脂肪形成,RunX1T1 是抑制棕色脂肪表型的轉(zhuǎn)錄因子。 同時miR-193b 抑制肌生成相關(guān)因子Cdon、lgfbp5、Pax3、MyoD,阻止棕色脂肪前體細胞向肌源性細胞分化。miR-193b 也可以上調(diào)PPARγ 和C/EBPα 等棕色脂肪終末分化的標記蛋白。 miR-193b-365 受PRDM16 調(diào) 控,PRDM16 與PPARα 相互作用,促進miR-193b 和miR-365 的表達[30]。

棕色脂肪分化受誘導(dǎo)因子和抑制因子的共同調(diào)節(jié),目前對棕色脂肪分化抑制因子的研究較為粗淺。此外,microRNA 對棕色脂肪分化的調(diào)節(jié)起著重要作用, 但當前對microRNA 對棕色脂肪分化調(diào)節(jié)的研究很少, 未來需要探索更多microRNA 對棕色脂肪分化的調(diào)控作用, 并厘清microRNA 如何調(diào)控棕色脂肪分化的誘導(dǎo)因子和抑制因子。

3 運動與白色脂肪的轉(zhuǎn)分化

鑒于棕色脂肪與肥胖呈負相關(guān),過去幾十年,研究者進行各種動物實驗,試圖研究運動對BAT 的活化和募集是否有益。令人失望的是,大多數(shù)研究都沒有發(fā)現(xiàn)運動對BAT 的活化有任何作用[31,32]。 但是近幾年一些對嚙齒動物的研究顯示, 運動對棕色脂肪和beige cells 有刺激作用[33-36]。Xu 等[33]的小鼠實驗研究表明,運動增加了肩胛間BAT 脂肪前體細胞的募集,且使UCP-1 的表達增加了2 倍。 Seebacher 等[34]的研究表明, 低溫環(huán)境低強度運動訓(xùn)練可以增加骨骼肌和棕色脂肪PGC1α、PPARγ 和NRF-1 mRNA的水平。 研究顯示僅在運動和冷暴露相結(jié)合的情況下可以增加棕色脂肪UCP-1 的表達,而單獨的冷暴露則無此效應(yīng)。 這表明,運動對于BAT 的產(chǎn)熱機制是必要的。另一個研究也表明,一周訓(xùn)練后小鼠的內(nèi)臟白色脂肪出現(xiàn)beige cells, 運動組內(nèi)臟WAT 中UCP-1 高表達細胞是對照組的8 倍[35]。 Bostrm 等[36]研究了耐力運動對白色脂肪棕色化的標記蛋白如PRDM16、UCP1 和Cidea 等的影響,結(jié)果同樣顯示增加。

3.1 Irisin 信號途徑與白色脂肪棕色化

最近研究還發(fā)現(xiàn)一種名為Irisin 的新激素與白色脂肪棕色化關(guān)系密切。 PGC-1α 促進膜蛋白FNDC5 表達,F(xiàn)NDC5 經(jīng)剪切和修飾后, 轉(zhuǎn)變?yōu)樾录に豂risin。Bstrom 等[36]發(fā)現(xiàn)Irisin 的前體蛋白FNDC5誘導(dǎo)皮下白色脂肪棕色化,SVF 分化為脂肪細胞的過程中, 經(jīng)過20 nmol/L 的FNDC5 處理后,UCP-1 mRNA 水平升高7~500 倍, 產(chǎn)熱基因UCP1、Elovl3和Cidea 等均上調(diào)。 病毒介導(dǎo)小鼠肝臟過表達FNDC5 使血漿中Irisin 的濃度升高3~4 倍,Irisin 濃度的升高導(dǎo)致皮下白色脂肪UCP-1 mRNA 水平升高13 倍,能量消耗增加。 這表明Irisin 作用于白色脂肪細胞,刺激UCP1 表達以及廣泛作用于白色脂肪棕色化的過程中,最終導(dǎo)致能量消耗增加。 但也有研究持相反意見,Timmons 等[37]的研究表明,運動對Irisin的前體蛋白FNDC5 的刺激作用受限。研究者對參加耐力訓(xùn)練和抗阻訓(xùn)練的200 名受試者進行肌肉活檢,運用基因表達譜未檢測到FNDC5 mRNA 水平有顯著性增加。 Huh 等[38]的研究顯示,年輕健康的受試者進行急性無氧運動(短跑)后Irisin 水平升高,但是8 周無氧訓(xùn)練卻未使Irisin 水平變化。 目前還沒有研究檢測有氧訓(xùn)練對Irisin 的影響,而有氧運動相比較無氧運動能更大程度地增加PGC-1α 表達, 因此未來研究的焦點應(yīng)集中于有氧運動對Irisin 的影響。

3.2 Sirt1 信號途徑與白色脂肪棕色化

哺乳動物Sirtuin 蛋白家族包含7 個成員(Sirtuin1-7),它們均以NAD+作為輔酶,發(fā)揮去乙酰化酶或ADP-核糖基轉(zhuǎn)移酶的活性作用,參與調(diào)控許多重要的生命過程,如基因沉默、肌肉分化和DNA損傷修復(fù)等。 Sirt1 是哺乳動物中第一個被發(fā)現(xiàn)的Sirtuin 蛋白家族成員, 也是目前研究最為深入的Sirtuin 蛋白。

Sirt1 與白色脂肪棕色化關(guān)系密切。Qiang 等[39]提出一種機制, 即Sirt1 介導(dǎo)PPARγ 脫乙?;饔每赡艽龠M白色脂肪棕色化。 Sirt1 激活后,PPARγ 募集Sirt1, 配體構(gòu)象發(fā)生改變,PPARγ 脫乙?;鵏ys268和Lys293 位點。 在WAT 中,脫乙?;腜PARγ 與PRDM16 相作用, 促進能量的生成和白色脂肪棕色化。 現(xiàn)已確定Sirt1 作為PPARγ 脫乙酰酶,其效應(yīng)可以模擬配體依賴性PPARγ 活化的結(jié)果, 該過程與PPARγ 募集棕色化輔因子PRDM16 和清除輔抑制物NCoR 相關(guān)。 PPARγ 配體的棕色化功能, 以及PPARγ 配體選擇性募集輔激活因子PRDM16 的能力應(yīng)歸入到PPARγ 脫乙?;慕y(tǒng)一機制。白色脂肪組織中Sirt1 介導(dǎo)白色脂肪棕色化的功能,應(yīng)當區(qū)別于棕色脂肪中Sirt1 的功能,因為研究者在小鼠實驗?zāi)P椭形窗l(fā)現(xiàn)棕色脂肪Sirt1 有任何功能的增減。 值得注意的是,Sirt1 在室溫下不能誘導(dǎo)iWAT(subcutaneous WAT)的棕色化基因,提示Sirt1 介導(dǎo)的iWAT 棕色化需要激素和環(huán)境作用,比如冷暴露。因此,乙酰化PPARγ 的Lys268 和Lys293 可能被當作識別因素調(diào)節(jié)棕色化過程。 乙酰化PPARγ 的Lys268 和Lys293 有利于脂質(zhì)存儲,相反,PPARγ 去乙?;鼓芰績Υ嫦虍a(chǎn)熱耗能轉(zhuǎn)化。

運動激活Sirt1 信號途徑的機制可能為熱量限制理論,當營養(yǎng)物可供機體利用時,Sirt1 處于無活性狀態(tài),運動至能量耗竭時Sirt1 被激活[40]。目前尚沒有運動對白色脂肪Sirt1 活性影響的研究報道,但是有研究顯示不論是短時間大強度運動, 還是耐力運動均可增加骨骼肌Sirt1 的活性及其表達,且不受年齡等因素制約。 基于Sirt1 介導(dǎo)PPARγ 脫乙酰作用,促進白色脂肪棕色化,運動可能激活白色脂肪Sirt1,誘導(dǎo)白色脂肪棕色化(如圖2 所示)。

圖2 運動對白色脂肪轉(zhuǎn)分化的作用機制

4 小結(jié)

近年來對于棕色脂肪分化的研究有了很多新進展,對棕色脂肪的來源也有了新認識,即白色脂肪在一定條件下可以轉(zhuǎn)分化為棕色脂肪, 白色脂肪棕色化后能顯著提高機體的能量消耗, 因此棕色脂肪分化與肥胖的發(fā)生有密切關(guān)系, 也為減肥研究提供了新思路。目前研究發(fā)現(xiàn),棕色脂肪分化的抑制因子主要有pRB、P107、RIP140 等, 誘導(dǎo)因子有PRDM16、PPARα、PPARγ、PGC-1α、Insulin/IGF-1、CREB 等,此外,microRNA 對棕色脂肪分化有調(diào)節(jié)作用。 運動對肥胖的干預(yù)可能通過Irisin、Sirt1 信號途徑誘導(dǎo)白色脂肪棕色化,但還需更多的實證研究。

[1] Cypess AM,Lehman S,Williams G,et al. Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans.N Engl J Med,2009,360(15):1509-1517.

[2] Yoneshiro T,Aita S,Matsushita M,et al. Brown adipose tissue,whole-body energy expenditure,and thermogenesis in healthy adult men. Obesity,2011,19(1):13-16.

[3] Lee P,Ho KKY,Greenfield JR. Hot fat in a cool man:infrared thermography and brown adipose tissue. Diabetes Obes Metab,2011,13(1):92-93.

[4] Vijgen GHEJ,Bouvy ND,Teule GJJ,et al. Brown adipose tissue in Morbidly obese Subjects. PLoS ONE,2011,6(2):e17247.

[5] Cannon B,Nedergaard J. Brown adipose tissue:function and physiological significance. Physiol Rev,2004,84:277-359.

[6] Hondares E,Rosell M,et al. Hepatic FGF21 expression is induced at birth via PPARalpha in response to milk intake and contributes to thermogenic activation of neonatal brown fat. Cell Metab,2010,11(3):206-212.

[7] Pols TW,Norieqa LG,Nomura M,et al. The bile acid membrane receptor TGR5 as an emerging target in metabolism and inflammation. J Hepatol,2011,54 (6):1263-1272.

[8] Cannon B,Nedergaard J. Thermogenesis challenges the adipostat hypothesis for body-weight control. Proc Nutr Soc,2009,68(4):401-407.

[9] Leibel RL,Rosenbaum M,Hirsch J. Changes in energy expenditure resulting from altered body weight. N Engl J Med,1995,332(10):621-628.

[10] Rothwell NJ,Stock MJ. Luxuskonsumption,diet-induced thermogenesis and brown fat:the case in favour. Clin Sci(Lond),1983,64(1):19-23.

[11] van Marken Lichtenbelt WD,Schrauwen P. Implications of nonshivering thermogenesis for energy balance regulation in humans. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2011,301(2):R285-R296.

[12] Cannon B,Nedergaard J. Nonshivering thermogenesis and its adequate measurement in metabolic studies. J Exp Biol,2011,214(2):242-253.

[13] Ailhaud G,Grimaldi P,Négrel R. Cellular and molecular aspects of adipose tissue development. Annu Rev Nutr,1992,12:207-233.

[14] Seale P,Bjork B,Yang W,et al. PRDM16 controls a brown fat/skeletal muscle switch. Nature,2008,454(7207):961-967.

[15] Frontini A,Cinti S. Distribution and development of brown adipocytes in the murine and human adipose organ. Cell Metab,2010,11(4):253-256.

[16] Petrovic N,Walden TB,Shabalina IG,et al. Chronic peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARgamma) activation of epididymally derived white adipocyte cultures reveals a population of thermogenically competent,UCP1-containing adipocytes molecularly distinct from classic brown adipocytes. J Biol Chem,2010,285(10):7153-7164.

[17] Hondares E,Rosell M,Díaz-Delfín J,et al. Peroxisome proliferator-activated receptor α(PPARα) induces PPARγ coactivator 1α(PGC-1α) gene expression and contributes to thermogenic activation of brown fat:involvement of PRDM16. J Biol Chem,2011,286(50):43112-43122.

[18] Rosen ED,Spiegelman BM. Molecular regulation of adipogenesis. Annu Rev Cell Dev Biol,2000,16:145-171.

[19] Hansen JB,Jorgensen C,Petersen PK,et al. Retinoblastoma protein functions as a molecular switch determining white versus brown adipocyte differentiation. Proc Natl Acad Sci USA,2004,101(17):6833-6833.

[20] Scimè A,Grenier G,Huh MS,et al. Rb and p107 regulate preadipocyte differentiation into white versus brown fat through repression of PGC-1alpha. Cell Metab,2005,2(5):283-95.

[21] Christian M,Kiskinis E,Debevec D,et al. RIP140 -targeted repression of gene expression in adipocytes. Mol Cell Biol,2005,25(21):9383-9391.

[22] Birerdinc A,Jarrar M,Stotish T,et al. Manipulating molecular switches in brown adipocytes and their precursors:A therapeutic potential. Prog Lipid Res,2013,52(1):51-61.

[23] Uldry M,Yang W,St-Pierre J,et al. Complementary action of the pgc-1 coactivators in mitochondrial biogenesis and brown fat differentiation. Cell Metab,2006,3(5):333-41.

[24] Tiraby C,Tavernier G,Lefort C,et al. Acquirement of brown fat cell features by human white adipocytes. J Biol Chem,2003,278(35):33370-33376.

[25] Kajimura S,Seale P,Kubota K,et al. Initiation of myoblast to brown fat switch by a PRDM16-C/EBP-beta transcriptional complex.Nature,2009,460(7259):1154-1158.

[26] Ahfeldt T,Schinzel RT,Lee YK,et al. Programming human pluripotent stem cells into white and brown adipocytes. Nat Cell Biol,2012,14(2):209-219.

[27] Cypess AM,Zhang H,Schulz TJ,et al. Insulin/IGF-I regulation of necdin and brown adipocyte differentiation via CREB- and FoxO1-associated pathways. Endocrinology,2011,152(10):3680.

[28] Tseng YH,Butte AJ,Kokkotou E,et al. Prediction of preadipocyte differentiation by gene expression reveals role of insulin receptor substrates and necdin. Nat Cell Biol,2005,7(6):601-611.

[29] Yin H,Pasut A,Soleimani VD,et al. MicroRNA -133 Controls Brown Adipose Determination in Skeletal Muscle Satellite Cells by Targeting Prdm16. Cell Metab,2013,17(2):210-224.

[30] Sun L,Xie H,Mori MA,et al. Mir193b-365 is essential for brown fat differentiation. Nat Cell Biol,2011,13(8):958-965.

[31] Scarpace P,Yenice S,Tümer N. Influence of exercise training and age on uncoupling protein mRNA expression in brown adipose tissue. Pharmacol Biochem Behav,1994,49(4):1057-1059.

[32] Segawa M,Oh-Ishi S,Kizaki T,et al. Effect of running training on brown adipose tissue activity in rats:a reevaluation. Res Commun Mol Pathol Pharmacol,1998,100(1):77-82.

[33] Xu X,Ying Z,Cai M,et al. Exercise ameliorates high-fat diet -induced metabolic and vascular dysfunction,and increases adipocyte progenitor cell population in brown adipose tissue. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2011,300(5):R1115-R1125.

[34] Seebacher F,Glanville E. Low levels of physical activity increase metabolic responsiveness to cold in a rat. PLoS ONE,2010,5(9):e13022.

[35] De Matteis R,Lucertini F,Guescini M,et al. Exercise as a new physiological stimulus for brown adipose tissue activity. Nutr Metab Cardiovac Dis,2013,23(6):582-590.

[37] Timmons JA,Baar K,Davidsen PK,et al. Is irisin a human exercise gene? Nature,2012,488(7413):E9-E10.

[38] Huh J,Panagiotou G,Mougios V,et al. FNDC5 and irisin in humans:I. Predictors of circulating concentrations in serum and plasma and II. mRNA expression and circulating concentrations in response to weight loss and exercise. Metabolism,2012,61(12):1725-1738.

[39] Qiang L,Wang L,Kon N,et al. Brown remodeling of white adipose tissue by SirT1-dependent deacetylation of Pparγ.Cell,2012,150(3):620-632.

[40] Cohen HY,Miller C,Bitterman KJ,et al. Calorie restriction promotes mammalian cell survival by inducing the SIRT1 deacetylase. Science,2004,305(5682):390-392.

猜你喜歡
棕色白色分化
兩次中美貨幣政策分化的比較及啟示
又香又甜的棕色方塊
分化型甲狀腺癌切除術(shù)后多發(fā)骨轉(zhuǎn)移一例
魯政委:房地產(chǎn)同城市場初現(xiàn)分化
新興市場貨幣:內(nèi)部分化持續(xù)
雪為什么是白色的
總之就是要選白色
總之就是要選白色
總之就是要選白色
無論什么顏色和棕色
永寿县| 上饶县| 平原县| 南充市| 西青区| 东至县| 建昌县| 西贡区| 六枝特区| 北流市| 金湖县| 宜州市| 仙居县| 大兴区| 朝阳县| 荆州市| 丰台区| 依安县| 灵山县| 开远市| 香港| 新安县| 墨脱县| 秀山| 横山县| 西宁市| 江口县| 武功县| 墨脱县| 巫溪县| 奉贤区| 盘山县| 长白| 许昌县| 汾西县| 修文县| 东乌珠穆沁旗| 湟源县| 和田县| 达拉特旗| 铜陵市|