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辣椒SRAP—PCR反應(yīng)體系優(yōu)化及雜交群體多態(tài)性引物篩選

2014-04-29 00:44張佳琦呂慶芳董黎梨李映志葉春海
安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年7期
關(guān)鍵詞:辣椒

張佳琦 呂慶芳 董黎梨 李映志 葉春海

摘要[目的]對辣椒SRAP反應(yīng)體系進(jìn)行研究和優(yōu)化,并利用優(yōu)化體系對164對多態(tài)性引物進(jìn)行篩選。[方法]采用單因素隨機(jī)試驗(yàn)設(shè)計(jì)和L25(65)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)對辣椒SRAP反應(yīng)體系中6種關(guān)鍵因素(退火溫度、Taq DNA聚合酶、Mg2+、dNTPs、引物、模板DNA)進(jìn)行體系優(yōu)化,并以“泡椒”ד青皮大椒”的親本和F1代為材料,利用聚丙烯胺酰胺凝膠進(jìn)行篩選。[結(jié)果]辣椒SRAPPCR的最佳反應(yīng)體系為:退火溫度35.5 ℃,Taq DNA聚合酶1.0 U,模板DNA 2.25 ng/μl,dNTPs 0.2 mmol/L,引物0.4 μmoL/L,Mg2+ 2 mmol/L,總體積為20 μl。利用該體系,從164對SRAP引物組合中篩選出擴(kuò)增條帶清晰、多態(tài)性豐富、條帶穩(wěn)定的31對引物組合。[結(jié)論]該體系的建立與多態(tài)性引物組合的篩選為SRAP標(biāo)記技術(shù)在辣椒育種中的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

關(guān)鍵詞辣椒(Capsicum spp.);正交試驗(yàn)設(shè)計(jì);單因素隨機(jī)試驗(yàn)設(shè)計(jì);SRAP;PCR

中圖分類號S641.3文獻(xiàn)標(biāo)識碼A文章編號0517-6611(2014)07-01913-04

辣椒(Capsicum spp.)是一種世界性的蔬菜作物,即可鮮食又可用作辣椒油、辣椒紅素和辣椒素的提煉[1],同時含有豐富的VC和礦質(zhì)元素[2],是我國人民飲食結(jié)構(gòu)的重要組成部分。隨著SSR(Simple sequence repeat,簡單序列重復(fù))、RAPD(Random Amplified polymorphism DNA,隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA)、ISSR(Inter-simple sequence repeat,簡單序列重復(fù)區(qū)間擴(kuò)增多態(tài)性)、AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism,擴(kuò)增片斷長度多態(tài)性)和SRAP(Sequence-Related Amplified Polymorphism,相關(guān)序列多態(tài)性)等DNA分子標(biāo)記技術(shù)的發(fā)展,其在辣椒育種中的運(yùn)用日益增多[3-10]。

SRAP標(biāo)記是Li和Quiros開發(fā)的一種基于PCR ( polymerase chain reaction,聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng))的新型分子標(biāo)記技術(shù)[11]。該標(biāo)記通過獨(dú)特的引物設(shè)計(jì)可對開放閱讀框 (open reading frames,ORFs)進(jìn)行擴(kuò)增,因個體間內(nèi)含子、啟動子與間隔區(qū)長度不等而產(chǎn)生多態(tài)性。由于其具有多態(tài)性豐富、成本低廉、操作簡便、穩(wěn)定性好和高度共顯性等特點(diǎn)[12],被廣泛用于遺傳多樣性評價[13]、種質(zhì)材料鑒定[14]和遺傳圖譜構(gòu)建[15-18]等最早開展SRAPPCR反應(yīng)體系的優(yōu)化研究。隨后,這一分子標(biāo)記技術(shù)被用于辣椒的種子純度檢測[20-21]、遺傳多樣性分析[22-24]、辣椒雜種優(yōu)勢的預(yù)測[25]和自交系遺傳關(guān)系評價[26]等方面。

由于SRAP分子標(biāo)記直接擴(kuò)增開放閱讀框,提高了擴(kuò)增結(jié)果與表型性狀的相關(guān)性,可將分子標(biāo)記與基因克隆直接結(jié)合起來[27],因此而成為遺傳圖譜構(gòu)建的重要分子標(biāo)記之一[28-31],但在辣椒遺傳圖譜構(gòu)建中的應(yīng)用還比較少。鑒于此,筆者構(gòu)建 “泡椒”ד青皮大椒”的分離群體,通過SRAPPCR擴(kuò)增體系優(yōu)化,利用親本和F1代材料篩選擴(kuò)增多態(tài)性豐富且條帶穩(wěn)定的引物組合,以期為辣椒遺傳圖譜的構(gòu)建奠定基礎(chǔ)。

1材料與方法

1.1材料 以2013年3月種于廣東雷州的青皮大椒、泡椒及其F1代植株為試驗(yàn)試材。Taq DNA聚合酶和dNTPs,均購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限公司;1 000 bp DNA Marker,購自購自寶生物工程(大連)有限公司;SRAP引物,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;PCR儀,購自Biometra;凝膠電泳設(shè)備,購自北京鴻濤基業(yè)科技發(fā)展有限責(zé)任公司。

1.2基因組DNA的提取與檢測 采用改良CTAB法[32]提取青皮大椒的總DNA,并采用紫外分光光度計(jì)法檢測其濃度,于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3SRAPPCR單因素隨機(jī)試驗(yàn) 以青皮大椒總DNA為材料,以含Taq DNA聚合酶1 U、Mg2+ 2 mmol/L、模板2.5 ng/μl、dNTPs 0.2 mmol/L、引物0.4 μmol/L的20 μl反應(yīng)體系為基礎(chǔ),分別改變退火溫度(33、34、35、36和37 ℃)、Taq DNA聚合酶量(0.2、0.5、1.0、1.5和2.0 U)、模板濃度(0.5、1、2、2.5和5 ng/μl)、dNTPs濃度(0.05、0.10、0.20、0.25和0.50 mmol/L)、引物濃度(0.2、0.3、0.4、0.5和0.6 μmol/L)和Mg2+濃度(1.0、1.5、2.0、2.5和3.0 mmol/L),以EM6為正向引物、ME18為反向引物,進(jìn)行5水平單因素隨機(jī)試驗(yàn),3次重復(fù)。

1.4擴(kuò)增程序 參考Li和Quiros的方法:94 ℃,5 min;94 ℃,1 min,35 ℃,1 min,72 ℃,1 min,5個循環(huán);隨后將退火溫度升至50 ℃,其他條件不變,進(jìn)行35個循環(huán);最后以72 ℃延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)6%非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳后,銀染檢測[11]。

1.5SRAPPCR正交試驗(yàn) 以青皮大椒總DNA為模板,采用L25(65)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)(表1)。SRAP正向引物為EM6,反向引物為ME18,總反應(yīng)體系20 μl,基本擴(kuò)增程序按“1.4”中方法;重復(fù)2次。從擴(kuò)增條帶數(shù)、凝膠染色背景和帶的強(qiáng)弱等方面綜合評價擴(kuò)增效果[33],以條帶數(shù)為主,對所有結(jié)果按照效果好壞排序,取其排序的數(shù)字作為擴(kuò)增效果的評價值,評價值越高,結(jié)果越好。

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