廖朝霞,王 飛,曹德雄,柳垂亮,李玉娟
(1.中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院麻醉科,廣東廣州 510120;2.廣東省佛山市禪城中心醫(yī)院麻醉科,廣東佛山 528030)
吸入麻醉藥異氟醚是臨床常用的吸入麻醉藥。目前有多篇研究報道異氟醚可導(dǎo)致哺乳類動物(包括嚙齒類,靈長類等)發(fā)育期大腦神經(jīng)細(xì)胞毒性并損害幼年和成年時期的空間學(xué)習(xí)記憶[1-3],而誘導(dǎo)發(fā)育神經(jīng)細(xì)胞凋亡是異氟醚神經(jīng)毒性的主要機制之一,但其誘導(dǎo)凋亡的信號調(diào)節(jié)通路目前尚未完全明確。
絲裂原激活的蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPKs)為絲氨酸-蘇氨酸蛋白激酶,介導(dǎo)信號從細(xì)胞表面向核內(nèi)傳遞的重要信號系統(tǒng),參與細(xì)胞生長、增殖、分化、凋亡等多種生理過程。p38 MAPK是MAPKs家族中重要的一員,主要介導(dǎo)炎癥、應(yīng)激、損傷等信號傳遞,能被促炎細(xì)胞因子、毒素等應(yīng)激因素所激活,在調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)、神經(jīng)退行性改變和神經(jīng)細(xì)胞凋亡過程中發(fā)揮作用,p38通路異常過度激活可導(dǎo)致細(xì)胞生長停滯和凋亡[4]。
我們前期研究發(fā)現(xiàn),異氟醚和七氟醚誘導(dǎo)的發(fā)育幼鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡過程中,可以不同程度地影響MAPK通路的活性,異氟醚可以同時減少磷酸化ERK1/2表達(dá),增加磷酸化 JNK和磷酸化 p38表達(dá)[5],誘導(dǎo)更多的神經(jīng)細(xì)胞凋亡。JNK抑制劑可以減少異氟醚誘導(dǎo)的幼鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡,提示JNK信號通路激活參與了異氟醚誘導(dǎo)的發(fā)育期海馬神經(jīng)細(xì)胞毒性[6]。是否p38 MAPK也參與了異氟醚誘導(dǎo)的發(fā)育期海馬神經(jīng)細(xì)胞毒性目前未見相關(guān)報道。本研究擬使用p38 MAPK抑制劑觀察p38 MAPK信號通路在異氟醚誘導(dǎo)的發(fā)育大鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡中的作用。
1.1 儀器與試劑 麻醉氣體檢測儀(美國歐米達(dá)公司),Olympus IX70倒置顯微鏡(日本奧林巴斯公司)。異氟醚(美國雅培制藥有限公司),SB203580(美國Selleck公司)。一抗均為兔抗大鼠(美國Cell Signal生物技術(shù)公司),羊抗兔二抗(武漢博士德公司),TUNEL熒光染色試劑盒(美國Promega公司),Hoechst33258染色液(碧云天生物技術(shù)研究所)。
1.2 動物處理及分組 出生后7 d(P7)的SD大鼠,隨機分為4組:空氣 +DMSO組(Air+DMSO組)、空氣 +SB203580組(Air+SB20組)、異氟醚 +DMSO組(Iso+DMSO組)、異氟醚 +SB203580組(Iso+SB20組)。其中SB203580為p38 MAPK抑制劑,溶解于DMSO,經(jīng)側(cè)腦室注射,SB203580的注射劑量為20 nmol。前2組吸入空氣,后2組吸入體積分?jǐn)?shù)為0.011異氟醚4 h。DMSO組與抑制劑組在處理前30min側(cè)腦室注射體積分?jǐn)?shù)為0.1DMSO或p38 MAPK抑制劑5μl。幼鼠麻醉結(jié)束后6 h,一部分?jǐn)囝^取腦,取新鮮的海馬組織,Western blot方法檢測海馬激活型 caspase-3,磷酸化 p38(phosphop38,p-p38)及其下游分子磷酸化 NF-κB(phospho-NF-κB,p-NF-κB),Bax和Bcl-2等蛋白的表達(dá);一部分幼鼠經(jīng)心臟灌注后取腦組織,使用原位末端轉(zhuǎn)移酶標(biāo)記(terminal deoxyribonucleotide transferase-mediated dUTP nick end labeling,TUNEL)法檢測海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡。
1.3 麻醉處理 按照我們以前報道的方法[5-6],將新生大鼠放置于密閉麻醉箱中,該麻醉箱放置于預(yù)設(shè)溫度為37℃的水浴箱中。麻醉箱與麻醉機相連,Iso組使用體積分?jǐn)?shù)為0.011的異氟醚處理4 h,空氣組則吸入空氣,麻醉氣體通過麻醉機的揮發(fā)罐由壓縮空氣輸送通過該麻醉箱,氣體流量為2 L·min-1。幼鼠呼氣末麻醉氣體的濃度、氧氣和二氧化碳濃度由連接于麻醉箱的麻醉氣體監(jiān)測儀監(jiān)測。
1.4 組織處理 各組分別在麻醉處理結(jié)束后6 h,取6只幼鼠,斷頭取腦,冰上分離腦海馬組織,液氮速凍后轉(zhuǎn)移至-80℃保存,組織用來做Western blot分析。另外在麻醉結(jié)束6 h后每組均取6只幼鼠,經(jīng)心臟灌注40 g·L-1多聚甲醛固定液15 min后取腦。腦組織在同樣的灌注液中4℃后固定48 h后梯度脫水,石蠟包埋,參照幼鼠腦解剖圖譜,分別在前囟-3.14~-4.16 mm區(qū)經(jīng)冠狀平面切取5μm連續(xù)石蠟切片,每隔200μm取3個腦片,每個腦組織取18張腦片,進行TUNEL染色。
1.5 W estern blot 按照我們以前報道的方法[5-6]。簡述如下,新鮮冰凍的腦海馬組織經(jīng)超聲裂解后提取蛋白,根據(jù)其蛋白濃度(BCA法測定),配平使各樣本蛋白等量。1∶1 000兔抗大鼠cleaved caspase-3多克隆抗體,1∶1 000兔抗大鼠pp38抗體,1∶1 000兔抗大鼠p38抗體,1∶1 000兔抗大鼠p-NF-κB抗體,1∶1 000兔抗大鼠Bax抗體,1∶1 000兔抗大鼠Bcl-2抗體以及1∶2 000β-actin,4℃孵育過夜,1∶5 000二抗室溫孵育1 h,使用ECL進行膠片顯影。
1.6 TUNEL 參照我們以前報道的方法進行[6]。簡述如下,石蠟組織切片脫蠟水化后,蛋白酶 K工作液(20 mg· L-1)室溫反應(yīng)15 min,平衡緩沖液分別處理10 min,每個樣本滴加50μl的酶反應(yīng)液(TdT 5μl,熒光素連接的dUTP混合緩沖液45μl)于37℃、濕盒中避光孵育60 min。去離子水終止反應(yīng),Hoechst33258避光反應(yīng)5 min,抗熒光淬滅封片劑封片。Olympus IX70倒置熒光顯微鏡獲得海馬CA1區(qū)200×圖像用Image-Pro Plus軟件進行圖像分析,并采用盲法計算單位面積的陽性細(xì)胞數(shù)。
1.7 統(tǒng)計學(xué)分析 實驗數(shù)據(jù)經(jīng)SPSS 13.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,以ˉx±s表示,以Graphpad Prism 6.0統(tǒng)計軟件分析。采用單因素方差分析(one-way ANOVA)檢驗,組間采用Turkey法檢驗進一步對各組進行比較。
2.1 SB203580減少了異氟醚誘導(dǎo)的新生鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡 在幼鼠海馬CA1區(qū),Iso+DMSO組單位面積(mm2)的 TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)(133.71±30.19),比 Air+DMSO組(22.74±11.92)增加了約4.8倍(P<0.01),而 Iso+SB20組的單位面積(mm2)TUNEL陽性細(xì)胞(51.05±10.25)比 Iso+DMSO組降低了約 3/5(P<0.01)(Fig 1,Tab 1)。Western blot檢測海馬早期凋亡蛋白cleaved caspase-3的表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn)異氟醚增加了海馬cleaved caspase-3的表達(dá)(P=0.003),而 SB203580逆轉(zhuǎn)了異氟醚誘導(dǎo)的cleaved caspase-3的表達(dá)增多(P=0.007)。上述結(jié)果提示p38抑制劑可以減輕異氟醚誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡(Fig 2,Tab 2)。Air+SB20組TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)目及cleaved caspase-3表達(dá)與Air+DMSO組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,說明SB203580本身不會引起神經(jīng)細(xì)胞凋亡。
Tab 1 Effect of SB203580 on isoflurane-induced increase of TUNEL positive cells in hippocampus CA1 area(±s,n=6)
Tab 1 Effect of SB203580 on isoflurane-induced increase of TUNEL positive cells in hippocampus CA1 area(±s,n=6)
The count of TUNEL positive cellswas catulated by diving the number of TUNEL positive cells by the area of hippocampus CA1.**P<0.01 vs Air+DMSO;##P<0.01 vs Iso+DMSO
Group TUNEL positive cells/mm-2 Air+DMSO 22.710±5.964 Air+SB20 20.367±4.273 Iso+DMSO 133.714±7.503**Iso+SB20 39.964±5.139##
2.2 SB203580對異氟醚麻醉誘導(dǎo)的海馬p-p38及其下游p-NF-κB表達(dá)的影響 與Air+DMSO組比較,Iso+DMSO組幼鼠海馬p38(P<0.01)及其下游 NF-κB(P=0.004)的磷酸化表達(dá)增加,提示異氟醚麻醉激活了p38 MAPK通路。與Iso+DMSO組比較,Iso+SB20組 p-p38(P<0.01)及 p-NF-κB(P=0.028)的表達(dá)降低,提示p38抑制劑SB203580抑制了異氟醚誘導(dǎo)的p38及其下游NF-κB的激活。Air+SB20組p-p38及p-NF-κB表達(dá)與Air+DMSO組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,說明SB203580對正常幼鼠的p38及 NF-κB活性沒有明顯影響(Fig 2,Tab 2)。
Fig 1 TUNEL positive cell in hippocam pus CA1 area(×200)Representative photomicrographs of Hoechest-and TUNEL-positive cells.Green staining indicated TUNEL positive cells and blue staining indicated nuclei.Scan bar=50μm.
Fig 2 Expression of cleaved caspase-3,phospho-p38,p38,phospho-NF-κB,Bcl-2 and Bax proteins in hippocam pus by W estern blot
2.3 SB203580對異氟醚麻醉誘導(dǎo)的新生大鼠海馬Bax和Bcl-2蛋白表達(dá)的變化 與Air+DMSO組比,Iso+DMSO組海馬 Bax表達(dá)增加(P<0.01)和Bcl-2表達(dá)降低(P<0.01),Bcl-2/Bax比值下降(P<0.01),提示異氟醚麻醉激活了Bcl-2家族凋亡相關(guān)蛋白通路;與Iso+DMSO組相比,Iso+SB20組幼鼠海馬 Bax表達(dá)下調(diào)(P<0.01),Bcl-2表達(dá)增加(P<0.01),Bcl-2/Bax比值上升(P=0.006),提示 p38抑制劑SB203580逆轉(zhuǎn)了異氟醚誘導(dǎo)的Bcl-2家族凋亡相關(guān)蛋白的變化。Air+SB20組Bax和Bcl-2蛋白表達(dá)與Air+DMSO組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,提示SB203580本身不會引起B(yǎng)cl-2家族凋亡相關(guān)蛋白的變化(Fig 2,Tab 2)。
本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)異氟醚可以通過誘導(dǎo)p38及其下游分子NF-κB磷酸化表達(dá)增加而激活p38 MAPK通路,并且通過增加Bax表達(dá),降低Bcl-2的表達(dá),從而降低Bcl-2/Bax比值,誘導(dǎo)海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡。而p38抑制劑SB203580能通過抑制異氟醚誘導(dǎo)的p38及NF-κB磷酸化激活,逆轉(zhuǎn)異氟醚誘導(dǎo)的Bax、Bcl-2蛋白表達(dá)以及Bcl-2/Bax比值的變化,減輕異氟醚麻醉引起的神經(jīng)細(xì)胞凋亡。結(jié)果提示,p38 MAPK信號通路激活是異氟醚引起的幼鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡的機制之一。
凋亡是異氟醚誘導(dǎo)發(fā)育神經(jīng)細(xì)胞毒性的主要機制之一。TUNEL是檢測細(xì)胞凋亡的金指標(biāo),而caspase-3是檢測早期細(xì)胞凋亡的常用指標(biāo)。有研究報道[7],異氟醚麻醉誘導(dǎo)神經(jīng)細(xì)胞凋亡的高峰時間發(fā)生在麻醉結(jié)束后6 h左右。本研究發(fā)現(xiàn),在麻醉后6h,異氟醚麻醉可以引起突觸發(fā)育期SD大鼠海馬cleaved caspase-3表達(dá)增加,TUNEL染色陽性數(shù)目增加,與其他學(xué)者報道以及我們前期研究結(jié)果一致[5-7]。
Tab 2 Effects of SB203580 on isoflurane-induced activation of p38/NF-κB pathway and apoptosis pathway(±s,n=6)
Tab 2 Effects of SB203580 on isoflurane-induced activation of p38/NF-κB pathway and apoptosis pathway(±s,n=6)
The objective of protein bandswasexpressed by the density ratio of the corresponding band toβ-actin or p38 after densitometric analysis.Each value was presented after normalization.**P<0.01 vs Air+DMSO;#P<0.05,##P<0.01 vs Iso+DMSO
Group cleaved caspase-3/β-actin p-p38/p38 p-NF-κB/β-actin Bax/β-actin Bcl-2/β-actin Bcl-2/Bax Air+DMSO 1.000±0.163 1.073±0.147 0.993±0.130 0.964±0.137 0.989±0.111 1.030±0.103 Air+SB20 0.946±0.218 0.965±0.223 0.931±0.136 0.922±0.142 0.892±0.130 0.977±0.179 Iso+DMSO 2.095±0.383** 1.887±0.426** 1.662±0.233** 1.960±0.354** 0.328±0.260** 0.278±0.156**Iso+SB20 1.210±0.270## 1.173±0.173## 1.172±0.163# 1.100±0.273## 0.987±0.254## 0.587±0.121##
異氟醚誘導(dǎo)發(fā)育神經(jīng)細(xì)胞凋亡的機制中,線粒體凋亡通路起著重要的作用。Bcl-2家族蛋白的表達(dá)平衡對維持正常的線粒體膜電位至關(guān)重要。我們前期的研究結(jié)果也發(fā)現(xiàn)可通過抑制Akt/Bad通路,減少Bad磷酸化,降低Bcl-xl/Bad比值誘導(dǎo)幼鼠皮質(zhì)和海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡[8-10]。小鼠在體和離體模型均證實了暴露于體積分?jǐn)?shù)為0.02的異氟醚6h可以上調(diào)神經(jīng)元Bax水平,降低Bcl-2表達(dá),同時增加ROS的蓄積,促進細(xì)胞色素C從線粒體釋放到胞質(zhì),導(dǎo)致caspase-9和caspase-3的激活,最終引起細(xì)胞凋亡[11]。這與本研究發(fā)現(xiàn)的積分?jǐn)?shù)為0.011的異氟醚增加P7大鼠海馬Bax水平,降低Bcl-2表達(dá)以及降低Bcl-2/Bax比值的結(jié)果一致。此外,異氟醚也可通過開放線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔(mitochondrial permeability transition pore,MPTP)介導(dǎo)對小鼠海馬神經(jīng)元的毒性,提高ROS的水平,降低線粒體膜電位和 ATP的生成,激活 caspase-3,促進細(xì)胞凋亡[12]。
異氟醚不僅能誘導(dǎo)發(fā)育期神經(jīng)細(xì)胞凋亡,且短時間的異氟醚預(yù)處理對缺血大鼠模型和缺氧皮質(zhì)神經(jīng)元均有神經(jīng)保護作用。Zheng等[13]發(fā)現(xiàn)體積分?jǐn)?shù)為0.02的異氟醚預(yù)處理對大鼠腦缺血的神經(jīng)保護作用與p38 MAPK通路激活密切相關(guān)。Bickler等[14]則發(fā)現(xiàn)異氟醚減少缺氧皮質(zhì)神經(jīng)元凋亡的作用與異氟醚誘導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度輕度增加,以及Ca2+依賴的 Pyk2/ERK,JNK/C-Jun和 PI3-kinase/Akt通路激活有關(guān);然而單獨的異氟醚或缺氧均可誘導(dǎo)皮質(zhì)神經(jīng)元凋亡和p38磷酸化增加,異氟醚和缺氧共同處理的神經(jīng)元中p38磷酸化則減少,這是否與異氟醚預(yù)處理的神經(jīng)保護作用有關(guān)還不清楚。
p38 MAPK信號通路,在神經(jīng)細(xì)胞凋亡過程中也可發(fā)揮重要作用[15-16]。研究發(fā)現(xiàn) p38 MAPK的激活與阿爾采末病中β-淀粉樣沉積和tau蛋白高度磷酸化引起的神經(jīng)元凋亡密切相關(guān)[17-18];p75神經(jīng)營養(yǎng)受體表達(dá)增加引起的氧自由基在線粒體的積聚和細(xì)胞凋亡也依賴于 p38 MAPK磷酸化激活[19]。我們前期的研究也發(fā)現(xiàn)異氟醚增加了幼鼠皮質(zhì)神經(jīng)細(xì)胞凋亡和p38 MAPK磷酸化表達(dá)[5]。本研究進一步發(fā)現(xiàn)積分?jǐn)?shù)為0.011的異氟醚誘導(dǎo)幼鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡的同時,也增加了海馬p38 MAPK與其下游NF-κB的磷酸化表達(dá),說明異氟醚麻醉也激活了p38 MAPK信號通路。
p38 MAPK激活后,一方面可以直接激活Bax轉(zhuǎn)移并插入線粒體外膜。在線粒體外膜,Bax發(fā)生寡聚體化,形成MPTP,影響線粒體膜通透性,細(xì)胞色素 C釋放至胞質(zhì),caspase級聯(lián)反應(yīng)被激活,cleaved caspase-3表達(dá)增加而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[16,20]。另一方面,磷酸化p38還可以磷酸化核轉(zhuǎn)錄因子NF-κB,激活的NF-κB可與許多靶基因的特異性同源DNA序列結(jié)合,調(diào)控細(xì)胞核凋亡相關(guān)基因的表達(dá)。本研究發(fā)現(xiàn),p38特異性抑制劑SB203580不僅逆轉(zhuǎn)了異氟醚誘導(dǎo)的p38 MAPK與其下游NF-κB蛋白磷酸化激活,也逆轉(zhuǎn)了異氟醚誘導(dǎo)的Bax、Bcl-2蛋白表達(dá)以及Bcl-2/Bax比值的變化,減輕了異氟醚誘導(dǎo)的幼鼠海馬caspase-3激活和細(xì)胞凋亡,提示SB203580可以從線粒體通路以及細(xì)胞核通路兩方面減輕異氟醚麻醉引起的神經(jīng)細(xì)胞凋亡。Ghatan等[21]使用人SH-SY5Y神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞和原代皮質(zhì)細(xì)胞進行研究,發(fā)現(xiàn)一氧化氮(NO)誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡與激活p38 MAPK,促進Bax從胞質(zhì)向線粒體轉(zhuǎn)移,增加線粒體膜通透性有關(guān),與我們的結(jié)果一致。雖然本研究結(jié)果提示p38 MAPK激活參與了異氟醚誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡,但是對于p38 MAPK激活后線粒體凋亡通路和細(xì)胞核凋亡通路哪一個優(yōu)先啟動,那一條通路占有主導(dǎo)地位,本研究尚不能得出結(jié)論。
已證明 p38 MAPK/NF-κB通路激活與炎癥反應(yīng)密切相關(guān)[22],而近期的研究發(fā)現(xiàn)神經(jīng)炎癥可以促進吸入麻醉藥誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡和認(rèn)知功能障礙[23-25]。異氟醚麻醉可以增加老年小鼠海馬促炎性細(xì)胞因子白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)和白細(xì)胞介素6(interleukin-6,IL-6)水平,而且NF-κB激活參與了異氟醚引起的海馬IL-1β和IL-6水平增加[25]。使用IL-1β基因敲除的小鼠可以改善異氟醚誘導(dǎo)的認(rèn)知功能障礙,提示IL-1β激活參與了異氟醚誘導(dǎo)的認(rèn)知功能障礙[23-24]。而 Shen等[26]發(fā)現(xiàn)使用抗炎藥能減輕七氟醚誘導(dǎo)的幼鼠神經(jīng)毒性和認(rèn)知功能損害,提示神經(jīng)炎性通路的激活與吸入麻醉藥的神經(jīng)毒性密切相關(guān)。我們的結(jié)果顯示p38抑制劑 SB203580抑制p38 MAPK/NF-κB通路激活,推測異氟醚誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡有可能與激活p38 MAPK/NF-κB通路引起的神經(jīng)炎癥有關(guān),確切的結(jié)論需要進一步檢測海馬炎性因子的表達(dá)變化來證明。
本研究的不足之處在于沒有應(yīng)用NF-κB抑制劑深入探討NF-κB通路下游的蛋白變化,沒有檢測異氟醚和p38 MAPK/NF-κB通路抑制劑對幼鼠海馬促炎性細(xì)胞因子IL-1β和IL-6表達(dá)水平的影響,以及對幼鼠成年期的認(rèn)知功能的影響。這些需在以后的研究中進一步完善。
總之,本研究通過建立P7新生大鼠吸入體積分?jǐn)?shù)為0.011的異氟醚4 h模型,并聯(lián)合使用p38抑制劑SB203580處理,發(fā)現(xiàn)異氟醚可通過激活p38 MAPK通路來誘導(dǎo)新生大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞的凋亡。
參考文獻:
[1] Jevtovic-Todorovic V,Hartman R E,Izumi Y,et al.Early exposure to common anesthetic agents causeswidespread neurodegeneration in the developing rat brain and persistent learning deficits[J].Neurosci,2003,23(3):876-82.
[2] Li Y,Liang G,Wang S,et al.Effects of fetal exposure to isoflurane on postnatal learning and memory in rats[J].Neuropharmocology,2007,53(8):942-50.
[3] Brambrink A M,Evers A S,Avidan M S,et al.Isoflurane-induced neuroapoptosis in the neonatal rhesusmacaque brain[J].Anesthesiology,2010,112(4):834-41.
[4] Harding SJ,Browne G J,Miller BW,etal.Activation of ASK1,downstream MAPKK and MAPK isoforms during cardiac ischaemia[J].Biochim Biophys Acta,2010,1802(9):733-40.
[5] 李玉娟,柳垂亮,張 靜,等.異氟醚和七氟醚對新生大鼠皮質(zhì)凋亡以及JNK和p38表達(dá)的不同影響 [J].中國病理生理雜志,2011,27(1):72-6.
[5] Li Y J,Liu C L,Zhang J,etal.Effects of isoflurane and sevoflurane on apoptosis of cortical neuron in neonatal rats and the role of MAPKs pathway[J].Chin JPathophysi,2011,27(1):72-6.
[6] Li Y J,Wang F,Liu C L,etal.JNK pathwaymay be involved in isoflurane-induced apoptosis in the hippocampi of neonatal rats[J].Neurosci Lett,2013,545:17-22.
[7] Bradham C,McClay D R.p38 MAPK in development and cancer[J].Cell Cycle,2006,5:824-8.
[8] 李玉娟,柳垂亮,王 飛,等.異氟醚和七氟醚對新生大鼠皮質(zhì)凋亡以及Akt和Bcl-xl/Bad表達(dá)的不同影響 [J].中山大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)科學(xué)版),2011,32(3):291-6.
[8] Li Y J,Liu C L,Wang F,etal.Differenteffects of isoflurane and sevoflurane on apoptosis of cortical neuron and expression of Akt and Bcl-xl/Bad in neonatal rats[J].J Sun Yat-sen Univ(Med Sci),2011,32(3):291-6.
[9] 韓 雪,胡楚文,李玉娟,等.右旋美托咪啶通過Akt/Bad通路抑制異氟醚引起的新生大鼠海馬細(xì)胞凋亡 [J].中國藥理學(xué)通報,2013,29(12):1702-6.
[9] Han X,Hu C W,Li Y J,et al.Dexmedetomidine attenuates isoflurane-induced hippocampal neuroapoptosis through activation of Akt/Bad signaling pathways in neonatal rats[J].Chin Pharmacol Bull,2013,29(12):1702-6.
[10]Li Y,Zeng M,Chen W,et al.Dexmedetomidine reduces isoflurane-induced neuroapoptosis partly by preserving PI3K/Akt pathway in the hippocampusof neonatal rats[J].PLoSOne,2014,9(4):e93639.
[11]Zhang Y,Dong Y,Wu X,etal.Themitochondrial pathway of anesthetic isoflurane-induced apoptosis[J].J Biol Chem,2010,285(6):4025-37.
[12]Zhang Y,Xu Z,Wang H,et al.Anesthetics isoflurane and desflurane differently affect mitochondrial function,learning,and memory[J].Ann Neurol,2012,71(5):687-98.
[13]Zheng S,Zuo Z.Isoflurane preconditioning induces neuroprotection against ischemia viaactivation ofp38mitogen-activated protein kinases[J].Mol Pharmacol,2004,65(5):1172-80.
[14]Bickler P E,F(xiàn)ahlman C S.The inhaled anesthetic,isoflurane,enhances Ca2+-dependent survival signaling in cortical neurons and modulates MAP kinases,apoptosis proteins and transcription factors during hypoxia[J].Anesth Analg,2006,103(2):419-29.
[15]Jiang Q,Li F,Shi K,et al.ATF4 activation by the p38MAPK-eIF4E axismediates apoptosis and autophagy induced by selenite in Jurkat cells[J].FEBS Lett,2013,587(15):2420-9.
[16]Wakeman D,Guo J,Santos JA,et al.p38 MAPK regulates Bax activity and apoptosis in enterocytes at baseline and after intestinal resection[J].Am JPhysiol Gastrointest Liver Physiol,2012,302(9):G997-1005.
[17]Wagner E F,Nebreda A R.Signal integration by JNK and p38 MAPK pathways in cancer development[J].Nat Rev Cancer,2009,9(8):537-49.
[18]Ganeshan V R,Schor N F.p75 neurotrophin receptor and fenretinide-induced signaling in neuroblastoma[J].Cancer Chemother Pharmacol,2014,73(2):271-9.
[19]Yang X,Yao J,Luo Y,etal.p38 MAP kinasemediates apoptosis after genipin treatment in non-small-cell lung cancer H1299 cells via a mitochondrial apoptotic cascade[J].J Pharmacol Sci,2013,121(4):272-81.
[20]Ghatan S,Larner S,Kinoshita Y,et al.p38 MAP kinasemediates bax translocation in nitric oxide-induced apoptosis in neurons[J].JCell Biol,2000,150(2):335-47.
[21]Feng F L,Yu Y,Liu C,et al.KAT5 silencing induces apoptosis of GBC-SD cells through p38MAPK-mediated upregulation of cleaved Casp9[J].Int J Clin Exp Pathol,2013,7(1):80-91.
[22]Kim Y J,Hwang SY,Oh E S,etal.IL-1 beta,an immediate early protein secreted by activatedmicroglia,induces iNOS/NO in C6 astrocytoma cells through p38 MAPK and NF-kappaB pathways[J].JNeurosci Res,2006,84(5):1037-46.
[23]Lin D,Zuo Z.Isoflurane induces hippocampal cell injury and cognitive impairments in adult rats[J].Neuropharmacology,2011,61(8):1354-9.
[24]Cao L,Li L,Lin D,Zuo Z.Isoflurane induces learning impairment that is mediated by interleukin 1βin rodents[J].PLoS One,2012,7(12):e51431.
[25]Li ZQ,Rong X Y,Liu Y J,etal.Activation of the canonical nuclear factor-κB pathway is involved in isoflurane-induced hippocampal interleukin-1βelevation and the resultant cognitive deficits in aged rats[J].Biochem Biophys Res Commun,2013,438(4):628-34.
[26]Shen X,Dong Y,Xu Z,et al.Selective anesthesia-induced neuroinflammation in developingmouse brain and cognitive impairment[J].Anesthesiology,2013,118(3):502-15.