李家奇,孟維艷,周延民,蔡 青,阿 蘭,付 麗,李保勝,王世振
(1.吉林大學(xué)口腔醫(yī)院種植中心,吉林 長(zhǎng)春 130021;2.山東省德州市人民醫(yī)院口腔科,山東 德州 253000)
種植義齒已成為全口或部分牙齒缺失修復(fù)的主要手段,并且有較高的成功率[1]。種植義齒的成功與否不僅取決于良好的骨結(jié)合,軟組織封閉對(duì)于種植修復(fù)的長(zhǎng)期成功率來(lái)說(shuō)也是極其重要的[2]。軟組織可形成種植體周?chē)纳飳W(xué)封閉,從而保護(hù)下面的骨組織免受微生物的侵襲。一些體外和動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究[3]已證實(shí):種植體表面的微形貌是影響成纖維細(xì)胞黏附和分化的關(guān)鍵因素。相對(duì)于光滑表面,不同的表面處理方法得到的的粗糙表面可改變上皮細(xì)胞和成纖維細(xì)胞的形態(tài)、增殖和基因表達(dá)[4],對(duì)于提高軟組織的整合有顯著優(yōu)勢(shì),可阻止牙齦根方遷移和細(xì)菌的入侵,從而提高軟組織穩(wěn)定性和封閉作用,減少骨吸收[5]。研究[6-7]還發(fā)現(xiàn):與光滑表面相比,具有微米-納米表面的種植體可誘導(dǎo)成纖維細(xì)胞黏附和改變膠原纖維方向,促進(jìn)牙齦組織的黏附,并且納米表面可以調(diào)節(jié)成纖維細(xì)胞的炎癥反應(yīng)。本研究旨在通過(guò)比較光滑表面與微米-納米表面對(duì)軟組織的影響,尋找出一種可促進(jìn)牙齦軟組織附著的純鈦表面形貌,并為今后種植體頸部設(shè)計(jì)提供指導(dǎo)。
圓柱形純鈦試件(D 3mm×11mm,萊頓北京生物材料制品公司提供)40個(gè),使用砂紙(耐水砂紙600目、耐水砂紙320目、不耐水砂紙320目、不耐水砂紙160目)依次對(duì)鈦柱表面進(jìn)行打磨,再使用不同溶液(丙酮、無(wú)水乙醇和蒸餾水)對(duì)鈦件依次沖洗10min。試件隨機(jī)分成4組,每組10個(gè)。光滑組(S組):不做任何處理;酸蝕組(AE組):用一定濃度(1∶199)氫氟酸對(duì)鈦柱軸面進(jìn)行2min酸蝕處理;電化學(xué)腐蝕組(ECE組):用自制電解儀對(duì)鈦柱軸面進(jìn)行直流電化學(xué)處理,采用不同濃度(0.1~17.0mol·L-1)氫氟酸得到2種不同表面,分別為ECE1和ECE2組;電化學(xué)腐蝕加酸蝕組(ECA組):在ECE2組處理的基礎(chǔ)上再用一定濃度(1∶199)氫氟酸對(duì)鈦柱軸面進(jìn)行2min酸蝕處理。處理過(guò)的種植體再經(jīng)上述3種溶液依次超聲清洗10min,高溫(121.3℃)、高壓(1.05kg·cm-2)20min滅菌后備用。
健康成年雜種犬(吉林大學(xué)和平小區(qū)動(dòng)物醫(yī)院實(shí)驗(yàn)中心提供)6只,雌、雄各半,體質(zhì)量12~14kg。
犬以速眠新注射液(吉林大學(xué)和平校區(qū)動(dòng)物醫(yī)院提供)肌肉注射(0.1mL·kg-1),麻醉成功后,口腔消毒,口外鋪巾,局部黏骨膜下注射2%利多卡因。采用微創(chuàng)拔牙器械拔除犬右側(cè)下頜第一和第二前磨牙、左側(cè)第一前磨牙。甲硝唑和生理鹽水反復(fù)沖洗拔牙創(chuàng),采用即刻種植+非埋植種植術(shù),用組合鉆(鉆速<1 500r·min-1)逐級(jí)備孔,按預(yù)定順序植入5枚種植體(即S組、AE組、ECE1組、ECE2組和ECA組各1顆),頂端高于黏膜3mm,扭力達(dá)到30N。種植體均無(wú)咬合接觸,緊密縫合牙齦。術(shù)后每天肌注青霉素80萬(wàn)U,連用5d。每天用1%洗必泰液擦洗口腔1次,連擦7d。各組犬均予軟飼料喂養(yǎng)??p合線任由脫落。種植術(shù)后20d時(shí)處死3只,3個(gè)月時(shí)處死3只。
用鋸條取下含種植體的下頜骨塊,用片鋸修建成1cm×1cm×1cm骨、牙齦和種植體聯(lián)合標(biāo)本,以0.1mol·L-1磷酸緩沖液沖洗,固定于3%戊二醛2d。用Leica SP1600鋸式切片機(jī)從種植體中心位置沿縱軸切割,取一半標(biāo)本以0.1mol·L-1磷酸緩沖液沖洗15min,0.5%鋨酸固定1h,再以0.1mol·L-1磷酸緩沖液15min,50%、70%、80%、90%和95%酒精逐級(jí)脫水各15min。真空干燥法干燥,噴金,掃描電鏡(SEM)觀察牙齦與種植體結(jié)合界面,然后再機(jī)械拉除軟組織,觀察種植體表面和軟組織黏附于種植體的組織面。
S組低倍鏡下(×180)觀察種植體表面較光滑(圖1A);高倍鏡下(×20 000)見(jiàn)較淺的溝紋(圖1B)。AE組低倍鏡下(×500)觀察種植體表面微粗糙(圖1C);高倍鏡下(×50 000)可見(jiàn)均勻密集的納米突,為20~100nm的圓鈍突起(圖1D)。ECE1組低倍鏡下(×40)見(jiàn)種植體表面粗糙,并可見(jiàn)均勻的凹孔(圖1E);高倍鏡下(×500)見(jiàn)直徑約30~80μm圓形或橢圓形淺碟狀凹(圖1F),10 000倍鏡下見(jiàn)凹的表面呈蜂窩狀,邊緣不規(guī)則(圖1G)。ECE2組低倍鏡下(×200)見(jiàn)均勻細(xì)膩的微粗糙種植體表面(圖1H);高倍鏡下(×500)見(jiàn)分布均勻的微米凹,該微米凹為圓形或橢圓形淺碟狀凹,凹內(nèi)含有散在的小孔(圖1I);2 000倍鏡下可見(jiàn)微米凹的直徑約10~25μm(圖1J)。ECA組低倍鏡下(×50)可見(jiàn)種植體表面均勻細(xì)膩,微粗糙形態(tài)(圖1K);200倍鏡下見(jiàn)分布均勻的微米-納米表面,該表面的微米凹為圓形或橢圓形淺碟狀凹,直徑約10~25μm,邊緣圓鈍,表面可見(jiàn)白色粒狀物質(zhì)形成,即納米突(圖1L);該納米突在40 000倍鏡下可見(jiàn)均勻分布于微米凹的表面,呈直徑約20~80nm的半球形突起(圖1M)。
圖1 各組種植體表面掃描電鏡圖Fig.1 SEM pictures of implant surface in various groups
本組共有2只種植體松動(dòng),分別于術(shù)后3和5d時(shí)脫落。余下種植體周?chē)例l無(wú)紅腫,軟組織為粉紅色,較致密。種植體無(wú)松動(dòng),種植體周?chē)猩倭寇浌浮?個(gè)月時(shí)周?chē)例l粉紅致密,無(wú)紅腫,緊密包繞種植體周?chē)7N植體無(wú)松動(dòng),周?chē)猩倭寇浌浮?/p>
2.3.1 種植體-上皮組織界面 掃描電鏡下觀察,各組犬牙齦上皮斷面呈層狀,表面角化層明顯,20d時(shí)結(jié)合上皮與種植體表面連接緊密,各組間比較未見(jiàn)明顯差異(圖2);3個(gè)月時(shí),上皮組織更加致密,上皮組織緊密附著在種植體表面,各組間未見(jiàn)明顯差異,但其厚度明顯大于生長(zhǎng)20d時(shí)(圖3)。
2.3.2 種植體-結(jié)締組織界面 20d時(shí),S組結(jié)締組織與種植體大部分開(kāi)裂分離,膠原纖維伸向種植體表面時(shí)與種植體表面平行排列(圖4A);AE組也可見(jiàn)結(jié)締組織與種植體部分開(kāi)裂,膠原纖維呈樹(shù)枝狀,膠原纖維根部與種植體表面緊密垂直接觸(圖4B);ECE1組結(jié)締組織開(kāi)裂較少,膠原纖維比酸蝕組濃密,膠原纖維垂直緊密附著在種植體表面,呈簇狀(圖4C);ECE2組結(jié)締組織開(kāi)裂也較少,膠原纖維方向比較雜亂,呈網(wǎng)狀垂直扎向種植體表面(圖4D);ECA組膠原纖維比較濃密,比AE組稍致密,呈綹狀垂直扎向種植體表面(圖4E)。3個(gè)月時(shí),S組結(jié)締組織和種植體大部分開(kāi)裂分離,膠原纖維致密排列,與種植體表面平行(圖4F);AE組膠原纖維排列較濃密,膠原纖維垂直扎向種植體表面(圖4G);ECE1組膠原纖維非常濃密,膠原纖維互相交錯(cuò)垂直扎向種植體表面,可見(jiàn)部分不規(guī)律斜行纖維(圖4H);ECE2組少量結(jié)締組織與種植體分離,膠原纖維緊密排列呈綹狀,垂直扎向種植體(圖4I);ECA組膠原纖維比較濃密,膠原纖維互相交錯(cuò),垂直扎向種植體表面,可見(jiàn)不規(guī)律的斜行纖維(圖4J)。生長(zhǎng)3個(gè)月的結(jié)締組織高度大于生長(zhǎng)20d的結(jié)締組織。
圖2 20d時(shí)上皮組織與種植體表面結(jié)合部位掃描電鏡圖Fig.2 SEM pictures of conjunction of epithelium and implant surface at 20th day
圖3 3個(gè)月時(shí)上皮組織與種植體表面結(jié)合部位掃描電鏡圖Fig.3 SEM pictures of conjunction of epithelium and implant surface at 3rd month
圖4 20d和3個(gè)月時(shí)結(jié)締組織和種植體表面結(jié)合部位掃描電鏡圖Fig.4 SEM pictures of conjunction of collagen fibers and implant surface at 20th day and 3rd month
2.3.3 種植體表面 20d和3個(gè)月時(shí)掃描電鏡下 觀察種植體表面均未見(jiàn)明顯的上皮組織殘留物。20d時(shí),S組種植體表面較干凈,見(jiàn)少量的膜狀物和極少量膠原纖維殘留,表面暴露大部分金屬紋理(圖5A和B)。AE組低倍鏡下見(jiàn)表面殘留膠原纖維量比光滑組多,呈斑片狀;高倍鏡下見(jiàn)膠原纖維與種植體表面垂直黏附(圖5C和D)。ECE1組低倍鏡下見(jiàn)種植體表面大部分被殘留的膠原纖維覆蓋;高倍鏡下見(jiàn)斷裂的膠原纖維垂直扎在種植體表面,部分膠原纖維平行于種植體(圖5E和F)。ECE2組低倍鏡下見(jiàn)種植體表面大部分被無(wú)定形基質(zhì)和膠原纖維覆蓋;高倍鏡下見(jiàn)部分無(wú)定形基質(zhì)與表面分離翹起,成簇的膠原纖維垂直扎向種植體表面(圖5G和H)。ECA組低倍鏡下見(jiàn)膠原纖維黏附于種植體表面呈簇狀;高倍鏡下見(jiàn)膠原纖維垂直黏附于種植體表面,部分無(wú)定形基質(zhì)與表面分離翹起(圖5I和J)。3個(gè)月時(shí),S組低倍鏡下觀察種植體表面殘留少量膜狀物和膠原纖維,表面大部分暴露金屬紋理,高倍鏡下見(jiàn)殘留的膜狀物分離翹起,膠原纖維平行黏附在表面(圖6A和B)。AE組表面殘留的膜狀物和膠原纖維比S組多,低倍鏡下呈魚(yú)鱗狀,殘留的膠原纖維厚實(shí);高倍鏡下發(fā)現(xiàn)膠原纖維垂直表面,其下面的無(wú)定形基質(zhì)大部分與種植體表面分離(圖6C和D)。ECE1組低倍鏡下見(jiàn)表面凹孔中殘留大量的膜狀物和膠原纖維;高倍鏡下見(jiàn)膠原纖維有水平平鋪于種植體表面,也可見(jiàn)有垂直伸向種植體表面(圖6E和F)。ECE2組低倍鏡下見(jiàn)表面殘留大量的膠原纖維,呈斑塊狀非常厚實(shí);高倍鏡下見(jiàn)膠原纖維伸出2~3個(gè)突起扎在凹孔中(圖6G和H)。ECA組低倍鏡下見(jiàn)殘留大量的膠原纖維和膜狀物,呈龜裂的斑塊狀;高倍鏡下見(jiàn)膠原纖維垂直伸向種植體表面,像觸角一樣的突起緊緊抓在凹孔壁的納米突上(圖6I~K)。
圖5 20d時(shí)去除軟組織后種植體表面掃描電鏡圖Fig.5 SEM pictures of implant surface after removing soft tissue at 20th day
圖6 3個(gè)月時(shí)去除軟組織后種植體表面掃描電鏡圖Fig.6 SEM pictures of implant surface after removing soft tissue at 3rd month
2.3.4 與種植體表面黏附的軟組織界面 20d和3個(gè)月時(shí)與種植體表面黏附的牙齦組織面無(wú)顯著差別。S組與種植體黏附的牙齦組織面為光滑的一層無(wú)定形基質(zhì)膜狀結(jié)構(gòu)(圖7A)。AE組與種植體黏附的牙齦組織面見(jiàn)與種植體表面納米突大小相對(duì)應(yīng)的納米凹(圖7B)。ECE1組與種植體黏附的牙齦組織面見(jiàn)與種植體微米凹大小相對(duì)應(yīng)且相對(duì)粗糙的微米突(圖7C)。ECE2組與種植體黏附的牙齦組織面見(jiàn)與種植體表面微米凹大小相對(duì)應(yīng)的光滑突起,該突起頭大帶蒂鑲嵌在種植體表面(圖7D)。ECA組與種植體黏附的牙齦組織面見(jiàn)與種植體微米-納米結(jié)構(gòu)大小相對(duì)應(yīng)的微米突,該突起表面有大量納米凹,與種植體表面形成錯(cuò)綜復(fù)雜的微米-納米鑲嵌結(jié)構(gòu)(圖7E)。
圖7 牙齦軟組織與種植體結(jié)合部位的組織面掃描電鏡圖Fig.7 SEM pictures of tissue surfaces of gingival conjuncted with implant surface
種植修復(fù)是否成功與骨和軟組織對(duì)種植體表面的緊密附著有關(guān),除了骨,軟組織黏附于種植體頸部的封閉作用也是非常重要的[8]。種植體通過(guò)不同表面改性方法得到的不同粗糙表面可對(duì)成纖維細(xì)胞和膠原纖維產(chǎn)生較大影響[9]。近年來(lái),對(duì)粗化種植體頸部表面形貌,尤其是微米形貌和納米形貌的作用越來(lái)越受到關(guān)注[10]。
本組動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中有2只種植體可能因進(jìn)食或咬硬物等不確定因素導(dǎo)致脫落,其余種植體均與周?chē)M織結(jié)合良好。本研究觀察到:S組膠原纖維平行黏附于種植體表面,結(jié)締組織與種植體界面之間見(jiàn)較多大小不等的裂隙,撕脫軟組織后的種植體表面殘留的膠原纖維非常少,可見(jiàn)結(jié)締組織與光滑表面種植體的黏附力是較低的。本研究結(jié)果表明:改變種植體頸部的表面形貌是提高軟組織黏附的關(guān)鍵因素,尤其是多空三維的微米-納米形貌,可誘導(dǎo)成纖維細(xì)胞呈錨狀緊密扎在種植體表面空隙中,使結(jié)締組織緊密附著,改善軟組織黏附力[11]。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)電化學(xué)方法得到的具有微米凹的ECE2表面,膠原纖維垂直扎入微米凹中,開(kāi)裂現(xiàn)象少見(jiàn);結(jié)締組織與種植體結(jié)合的組織面形成頭大帶蒂的突起,該突起鑲嵌在種植體表面微米凹中,在撕脫軟組織這種強(qiáng)大的外力下,膠原纖維即使自身斷裂,而膠原纖維根方像觸手一樣緊緊抓在微米凹壁上,特別是結(jié)締組織生長(zhǎng)3個(gè)月時(shí)的種植體表面,幾乎全部被殘留的膠原纖維覆蓋,足以看出這種微米表面與結(jié)締組織的黏附是很牢固的;ECA組結(jié)締組織未見(jiàn)與種植體表面開(kāi)裂,結(jié)締組織組織面與種植體表面也形成了錯(cuò)綜復(fù)雜的微米-納米鑲嵌結(jié)構(gòu),膠原纖維根方像觸手一樣垂直抓在微米凹和納米突上,有的一根膠原纖維甚至分出2~3個(gè)分支抓在納米突上,生長(zhǎng)20d和3個(gè)月的種植體表面,均大部分被殘留的膠原纖維覆蓋,表明微米-納米表面與結(jié)締組織的黏附也非常緊密。Zhao等[12]研究發(fā)現(xiàn):種植體表面大小適宜的空洞可以誘導(dǎo)結(jié)締組織膠原纖維垂直插入種植體表面,形成緊密結(jié)合,表明以上的微米表面和微米-納米表面均可促進(jìn)結(jié)締組織緊密附著,ECA組兼具的納米表面更有優(yōu)勢(shì)。本研究中,AE組也可見(jiàn)結(jié)締組織與種植體表面開(kāi)裂,垂直伸向種植體表面的膠原纖維只能抓在納米突上,結(jié)締組織組織面與種植體表面的納米級(jí)突起黏附,撕脫軟組織后的種植體表面殘留的膠原纖維不多,表明結(jié)締組織與種植體黏附力不及ECE2組和ECA組,但優(yōu)于S組;ECE1組種植體表面的微米凹為30~80μm,比ECE2組和ECA組的凹孔大,可見(jiàn)其表面有一部分膠原纖維平行黏附在種植體表面,而其他各實(shí)驗(yàn)組均未見(jiàn)任何平行黏附的纖維。有研究[13]發(fā)現(xiàn):膠原纖維平行排列的結(jié)締組織易向根方遷移,而垂直黏附的膠原纖維與種植體表面結(jié)合緊密,可防止其軟組織退縮。本研究中,ECE1組種植體表面殘留的膠原纖維較S組和AE組多,可推斷該表面結(jié)締組織的黏附力相對(duì)ECE2組和ECA組較弱,但優(yōu)于AE組和S組。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果與Rossi等[14]研究結(jié)果相一致,與光滑種植體表面相比,粗糙多孔的微米-納米種植體表面確實(shí)與上皮組織和結(jié)締組織結(jié)合較緊密,軟組織不易脫離,炎癥反應(yīng)輕且骨組織吸收少。本研究結(jié)果提示:種植體周?chē)例l上皮和結(jié)締組織的附著與種植體頸部的表面形貌密切相關(guān),微米和微米-納米 表面可促進(jìn)結(jié)締組織牢固附著,明顯改善牙齦組織與種植體頸部的黏附,從而阻止結(jié)合上皮的根方移動(dòng),防止細(xì)菌及產(chǎn)物進(jìn)入骨組織內(nèi),為種植的成功奠定基礎(chǔ)。目前種植體表面影響軟組織附著的微形貌大小形態(tài)研究結(jié)果不一,最適軟組織黏附的精準(zhǔn)表面和具體機(jī)制還有待于進(jìn)一步探討。
本研究雖發(fā)現(xiàn)上皮組織呈層狀黏附于種植體頸部,但將種植體與牙齦撕脫后,種植體表面未見(jiàn)任何殘留的上皮結(jié)構(gòu),可見(jiàn)上皮與種植體表面的黏附是非常脆弱的。本研究中,除S組外,結(jié)締組織膠原纖維均垂直呈網(wǎng)狀緊密黏附在種植體表面,撕脫牙齦后的種植體表面可見(jiàn)膠原纖維殘留,這與Nevins等[15]研究結(jié)果一致,說(shuō)明牙齦組織主要是依靠結(jié)締組織黏附在種植體頸部,上皮組織的黏附作用非常微弱,結(jié)締組織是封閉口腔環(huán)境和種植體-骨組織界面的重要結(jié)構(gòu)。本研究結(jié)果顯示:生長(zhǎng)3個(gè)月時(shí)牙齦上皮和結(jié)締組織厚度均明顯大于生長(zhǎng)20d的上皮和結(jié)締組織,可見(jiàn)軟組織生長(zhǎng)成熟需要較長(zhǎng)時(shí)間;同時(shí)發(fā)現(xiàn):膠原纖維近種植體表面的一端埋在種植體表面的一層無(wú)定形物質(zhì)中,厚約20nm,將種植體表面與膠原纖維分隔開(kāi),特別是ECE2組和ECA組,撕脫掉軟組織后的種植體表面幾乎看不到金屬表面,只見(jiàn)與種植體表面形貌起伏相當(dāng)?shù)臒o(wú)定形膜狀結(jié)構(gòu)和殘留的膠原纖維,結(jié)締組織似乎是黏附在種植體表面,這種黏附可能有阻擋結(jié)合上皮根方遷移的作用。
[1]Diz P,Scully C,Sanz M.Dental implants in the medically compromised patient[J].J Dent,2013,41(3):195-206.
[2]Quaranta A, Piattelli A, Scarano A, et al. Light microscopic evaluation of the dimensions of peri-implant mucosa around immediately loaded and submerged titanium implants in monkeys [J].J Periodontol,2008,79(9): 1697-1703.
[3]Kokubu E,Hamilton DW,Inoue T,et al.Modulation of human gingival fibroblast adhesion,morphology,tyrosine phosphorylation,and ERK 1/2localization on polished,grooved and SLA substratum topographies [J].J Biomed Mater Res A,2009,91(3):663-670.
[4]Yamano S,Ma AK,Shanti RM,et al.The influence of different implant materials on human gingival fibroblast morphology,proliferation,and gene expression [J].Int J Oral Maxillofac Implants,2010,26(6):1247-1255.
[5]BaltriukienéD,Sabaliauskas V,Bal?iūnas E,et al.The effect of laser-treated titanium surface on human gingival fibroblast behavior [J].J Biomed Mater Res A,2013,10(1):1-8.
[6]Kearns VR,Williams RL, Mirvakily F,et al.Guided gingival fibroblast attachment to titanium surfaces:aninvitrostudy [J].J Clini Periodontol,2013,40(1):99-108.
[7]Schwartz‐Filho HO,Morandini ACF,Ramos Junior ES,et al.Titanium surfaces with nanotopography modulate cytokine production in cultured human gingival fibroblasts[J].J Biomed Mater Res A,2012,100(10):2629-2636.
[8]Chai WL,Moharamzadeh K,Noort R,et al.Contour analysis of an implant-soft tissue interface [J].J Periodontal Res,2013,48(5):663-670.
[9]Kim H,Murakami H,Chehroudi B,et al.Effects of surface topography on the connective tissue attachment to subcutaneous implants [J].Int J Oral Maxillofac Implants,2006,21(3):354-365.
[10]Luigi G,Adriana O,Assunta BM,et al.Human gingival fibroblast functions are stimulated by oxidized nano-structured titanium surfaces [J].J Dent,2013,41(10):71-90.
[11]Werner S,Huck O,F(xiàn)risch B,et al. The effect of microstructured surfaces and laminin-derived peptide coatings on soft tissue interactions with titanium dental implants [J].Biomaterials,2009,30(12):2291-2301.
[12]Zhao BH,Cui FZ,Liu Y,et al.Histomorphometrical and clinical study of connective tissue around titanium dental implants with porous surfaces in a canine model [J].J Biomater Appl,2013,27(6):685-693.
[13]Furuhashi A,Ayukawa Y,Atsuta I,et al.Influence of Titanium Surface Topography on Peri-Implant Soft Tissue Integration [J].Key Eng Mater,2013,29(529):559-564.
[14]Rossi S,Tirri T,Paldan H,et al.Periimplant tissue response to TiO2surface modified implants [J].Clin Oral Implants Res,2008,19(4):348-355.
[15]Nevins M,Kim DM,Jun SH,et al.Histologic evidence of a connective tissue attachment to laser microgrooved abutments:a canine study [J].Inter J Periodontics Restorative Dent,2010,30(3):245-255.
吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2014年1期