詹嘉紅,吳萍
(韓山師范學(xué)院生物系,廣東潮州521041)
紅花羊蹄甲(Bauhinia blakeana Dunn)別名洋紫荊、洋櫻花、艷紫荊,是豆科蘇木亞科羊蹄甲屬常綠喬木,也是我國嶺南一帶很受青睞的綠化觀光樹種。紅花羊蹄甲葉、根、樹皮、花可做藥用,具有止血、健脾燥濕、潤肺止咳、消炎的功效,可治療咯血、消化不良、咳嗽、便秘、肝炎、肺炎等疾病[1]。研究表明,紅花羊蹄甲花提取物對大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、金黃色葡萄球菌等均有抑菌效果[2]。紅花羊蹄甲花期長達半年,花量茂盛,花色艷麗,色素含量高。本試驗對紅花羊蹄甲紫紅色花花色素的最佳提取條件和穩(wěn)定性進行研究,旨在為該色素的進一步開發(fā)利用提供依據(jù)。
紅花羊蹄甲花瓣采自韓山師范學(xué)院校園內(nèi)。無水乙醇、苯甲酸鈉、檸檬酸、蔗糖、亞硫酸鈉、過氧化氫等試劑均為分析純。
722S型可見光分光光度計、FA2004電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司天平儀器廠;JJ-2組織搗碎勻漿機、HH-2數(shù)顯恒溫水浴鍋:江蘇省金壇市友聯(lián)儀器研究所。
1.2.1 色素的提取工藝流程
新鮮花瓣→烘干(40℃、20 h)→粉碎過篩(40目)→浸提→過濾→色素提取液。
1.2.2 色素最大吸收波長的確定
準確稱取花瓣粉末0.200 g,加入60%乙醇溶液20 mL,浸提30 min后過濾,濾液在波長400.00 nm~600.00 nm范圍內(nèi)進行掃描,測定吸光度,篩選最大吸收波長。如圖1所示。
圖1 紅花羊蹄甲花色素的吸收光譜圖Fig.1 Absorbing spectrum of flower pigments
紅花羊蹄甲花色素在波長530 nm處有明顯吸收峰,與文獻[3]報道的最大吸收波長547 nm不同,估計與提取劑的差異有關(guān)。本試驗均采用530 nm為測試點。
1.2.3 提取工藝最優(yōu)參數(shù)的確定[4]
以吸光值代表色素提取率,考察乙醇浸提劑濃度、料液比、浸提時間和浸提溫度對色素提取的影響,初步確定各因素的適宜值。進而采用L9(34)的四因素三水平正交設(shè)計進行選擇實驗,綜合確定最佳提取工藝條件。實驗設(shè)計中的因素及水平表見表1。
表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factor level of orthogonal design
1.2.4 色素的穩(wěn)定性實驗
按優(yōu)化的提取工藝條件制備色素樣液,以最大吸收波長的吸光值為評定穩(wěn)定性指標,進行光照、溫度、氧化劑、還原劑和常見食品添加劑對色素穩(wěn)定性的影響研究。
2.1.1 浸提劑濃度的影響
準確稱取花瓣粉末若干份,每份0.200 g,分別加入不同濃度的乙醇溶液20 mL,浸提30 min后過濾,濾液在波長530 nm處測其吸光度A530。圖2顯示,乙醇濃度在10%~30%范圍內(nèi),色素的提取率相差不大,當(dāng)乙醇濃度高于30%時,色素的提取率隨著乙醇濃度的增加明顯增大,其中乙醇濃度為40%時提取率最大,因此選擇40%的乙醇溶液為最佳提取劑。
圖2 浸提劑濃度對色素提取的影響Fig.2 Influence of solven concentration on extraction of pigment
2.1.2 浸提溫度的影響
準確稱取花瓣粉末若干份,每份0.200 g,分別加入20 mL 40%的乙醇溶液,在不同溫度條件下浸提30 min后過濾,濾液在波長530 nm處測其吸光度A530。圖3顯示,浸提溫度在30℃~40℃范圍內(nèi),色素提取率呈逐漸上升的趨勢,當(dāng)溫度達到40℃時,色素類物質(zhì)的溶出速度達到最大,超過40℃后,提取率反而有所下降。因此選擇最佳浸提溫度為40℃。
圖3 浸提溫度對色素提取的影響Fig.3 Influence of the temperature on extraction of pigment
2.1.3 料液比的影響
準確稱取花瓣粉末若干份,每份0.200 g,按料液比 1∶50、1 ∶100、1 ∶150、1 ∶200、1∶250 的比例在上述最佳浸提劑濃度、浸提溫度條件下處理30 min,過濾后于波長530 nm處測其吸光度A530。圖4顯示,隨著提取溶劑體積的增加,色素提取率呈逐步下降的態(tài)勢,即隨著提取溶劑的量增加,色素相當(dāng)于被稀釋了[5]。從吸光值的變化可以看出,當(dāng)料液比為1∶50時,色素應(yīng)基本被完全浸出,因此,從經(jīng)濟角度考慮,選擇最佳料液比為 1∶50。
圖4 料液比對色素提取的影響Fig.4 Influence of the ratio between material and solution on extraction of pigment
2.1.4 浸提時間的影響
準確稱取花瓣粉末若干份,每份0.200 g,按上述最佳浸提劑濃度、浸提溫度和料液比,分別浸提不同時間后過濾,濾液在波長530 nm處測其吸光度A530。圖5表明,當(dāng)浸提時間為10 min時,提取率最高,超過10 min后,提取率反而有小幅度下降,可能由于浸提時間的延長色素遭到破壞或是雜質(zhì)增多的緣故,所以選擇最佳浸提時間為10 min。
圖5 浸提時間對色素提取的影響Fig.5 Effect of extraction time on extraction of pigment
2.2.1 正交試驗結(jié)果及極差分析
按表1正交試驗設(shè)計進行實驗,結(jié)果見表2。
表2 紅花羊蹄甲花色素提取的正交試驗結(jié)果與極差分析Table 2 Orthodoxy result and analysis of regression
由表2極差分析結(jié)果可以看出,在浸提劑濃度(A)、液料比﹙B﹚、浸提溫度﹙C﹚和浸提時間﹙D﹚4個影響因素中,對紅花羊蹄甲花色素提取率影響主次順序為:浸提劑濃度>料液比>浸提溫度>浸提時間,最佳提取工藝條件為:A1B1C1D2,即以濃度為20%的乙醇水溶液為浸提劑,采用料液比為1∶40(g/mL),在30℃恒溫條件下提取10 min,此時提取效果最好。在最優(yōu)條件下做平行實驗,經(jīng)驗證紅花羊蹄甲花色素的提取率為0.819(以吸光度表示),高于正交試驗中的最高組合第4號實驗結(jié)果0.794,這說明實驗所確定的最佳提取工藝條件是可靠的。
2.2.2 正交試驗結(jié)果的方差分析
運用SPSS 13.0對表2正交試驗結(jié)果進行方差分析,結(jié)果如表3。
表3 方差分析結(jié)果Table 3 Analysis of variance
方差分析可知,浸提劑濃度、液料比對紅花羊蹄甲花色素的提取效果有顯著性意義(P<0.05),其余為不顯著因素。方差分析結(jié)果與直觀分析結(jié)果相一致。
2.3.1 日光對色素穩(wěn)定性的影響
取8支具塞刻度試管,加入色素稀釋液各5 mL,置于太陽光下,每隔1 h取1管在波長530 nm下測其吸光度,結(jié)果如表4。
表4 日光對色素穩(wěn)定性的影響Table 4 Effects of sunlight on pigment stability
由表4可見,隨著光照時間的延長,色素吸光度緩慢下降,到7 h時色素殘存率為90%,色素溶液顏色基本無變化。說明紅花羊蹄甲花色素的耐光照性較好。
2.3.2 溫度對色素穩(wěn)定性的影響
取9支試管,加色素稀釋液各5 mL,用保鮮膜封口后分別置于30℃~100℃的恒溫水浴鍋中恒溫加熱1 h,然后在波長530 nm下測其吸光度,結(jié)果如表5。
由表可見,不同溫度下,色素的吸光值略有升降,但影響不明顯,溶液顏色均無明顯變化,說明其熱穩(wěn)定性良好。
表5 溫度對色素穩(wěn)定性的影響Table 5 Effects of temperature on pigment stability
2.3.3 氧化劑、還原劑對色素穩(wěn)定性的影響
取9支試管,加色素稀釋液各5 mL,再分別加入相同濃度但不同體積的H2O2、Na2SO3溶液,常溫(25℃)暗處靜置1 h后,在波長530 nm下測其吸光度,結(jié)果如表 6、表 7。
表6 H2O2對色素穩(wěn)定性的影響Table 6 Effects of H2O2on pigment stability
表7 Na2SO3對色素穩(wěn)定性的影響Table 7 Effects of Na2SO3on pigment stability
由表可知,H2O2、Na2SO3對色素的影響很大。隨著H2O2、Na2SO3濃度的增大,色素吸光度均明顯下降,H2O2使溶液顏色變淺,而Na2SO3則使溶液變成棕黃色。表明紅花羊蹄甲花色素具有較差的抗氧化性和抗還原性。應(yīng)用時要避免加強氧化劑和還原劑。
2.3.4 食品添加劑對色素穩(wěn)定性的影響
取10支試管,加色素稀釋液各5 mL,再分別加入苯甲酸鈉、檸檬酸、蔗糖溶液各2 mL,暗處放置0.5、1 h后,在波長530 nm下測其吸光度,結(jié)果如表8。
由表8可知,加入不同濃度的苯甲酸鈉、蔗糖后,色素溶液吸光值變化幅度很小,顏色基本無變化,表明苯甲酸鈉、蔗糖對色素穩(wěn)定性影響較小。檸檬酸對色素穩(wěn)定性影響較明顯,隨著濃度的增加及作用時間的增長,色素溶液吸光值明顯增大,表明檸檬酸有一定的增色作用。
表8 食品添加劑對色素穩(wěn)定性的影響Table 8 Effects of food additives on pigment stability
1)通過單因素試驗、正交試驗和方差分析,得出以乙醇為浸提劑提取紅花羊蹄甲花色素的最佳工藝參數(shù)為:乙醇溶液體積分數(shù)為20%,料液比為1∶40(g/mL),在30℃恒溫條件下提取10 min。
2)穩(wěn)定性研究結(jié)果表明:該色素耐光性和耐熱性較好,但對H2O2、Na2SO3敏感,不能保持穩(wěn)定。苯甲酸鈉、蔗糖對色素穩(wěn)定性無不良影響,檸檬酸對該色素起到一定的增色作用。
3)紅花羊蹄甲在華南地區(qū)的園林中已被廣泛應(yīng)用,該樹種花期長、花大色艷、色素含量高。此外,花色素還有較好的抗氧化活性[9],因此,紅花羊蹄甲花色素作為一種天然色素資源具有開發(fā)研究價值。
[1] 吳修仁.中國藥用植物簡編[M].廣州:廣東高等教育出版社,1994:413
[2] 盧海嘯,陳永紅.紅花羊蹄甲抑菌活性的研究[J].玉林師范學(xué)院學(xué)報:自然科學(xué),2008,29(03):87-90
[3] 焦淑清,徐晶瑩.微波萃取紅花羊蹄甲花紅色素的研究[J].食品研究與開發(fā),2009,30(4):190-192
[4] 楊希娟,黨斌,張國權(quán).黑小麥色素提取工藝優(yōu)化及其穩(wěn)定性研究[J].食品工業(yè)科技,2011,32(07):353-357
[5] 馬丹雅,趙晶,姚晶,等.仙人掌果紅色素提取工藝及其穩(wěn)定性研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(23):214-217
[6] 詹嘉紅,藍宗輝,魏小鳳.黑布林李子皮色素的提取及穩(wěn)定性[J].食品研究與開發(fā),2011,32(05):182-186
[7] 余凡,楊恒拓,葛亞龍,等.紫薯色素的微波提取及其穩(wěn)定性和抗氧化活性的研究[J].食品工業(yè)科技,2013,34(04):322-326
[8] 肖浩,鄭小江.千里光黃色素提取及穩(wěn)定性研究[J].食品工業(yè)科技,2011,32(04):317-320
[9] 李容,張德威,盧小雪,等.紅花羊蹄甲花色素成分的鑒定及抗氧化活性研究[J].廣東化工,2013,40(22):28-30