陳 泉,吳遠(yuǎn)征,扈進(jìn)冬,王貽蓮,趙曉燕,趙吉興,李 耀,李紀(jì)順
(1.山東省科學(xué)院中日友好生物技術(shù)研究中心,山東省應(yīng)用微生物重點實驗室,山東濟(jì)南250014;2.山東中惠生物科技股份有限公司,山東惠民251706)
高產(chǎn)Monacolin K紅曲霉菌種的篩選及液態(tài)發(fā)酵條件優(yōu)化
陳 泉1,吳遠(yuǎn)征1,扈進(jìn)冬1,王貽蓮1,趙曉燕1,趙吉興2,李 耀2,李紀(jì)順1*
(1.山東省科學(xué)院中日友好生物技術(shù)研究中心,山東省應(yīng)用微生物重點實驗室,山東濟(jì)南250014;2.山東中惠生物科技股份有限公司,山東惠民251706)
為了提高紅曲霉(Monascus)液態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)Monacolin K的能力,一種新型的常壓室溫等離子體(ARTP)誘變技術(shù)被應(yīng)用于產(chǎn)Monacolin K紅曲霉菌株的誘變選育工作;同時,通過構(gòu)巢曲霉(Aspergillus nidulans)平板對峙培養(yǎng)的篩選方法,選育獲得較初始紅曲霉菌Monacolin K產(chǎn)量提高60%以上的突變菌株MP60-6。確定發(fā)酵培養(yǎng)基組成為甘油5%,米粉50 g/L,蛋白胨15 g/L,NaNO32 g/L,MgSO41 g/L,ZnSO42 g/L,KH2PO41.5 g/L,并進(jìn)一步確定在發(fā)酵第3、第4天添加0.1%的乙酸和0.2%的檸檬酸,發(fā)酵第8天補加10%的甘油。在上述條件下發(fā)酵17 d后Monacolin K產(chǎn)量可以達(dá)到1 302 mg/L,為出發(fā)菌株產(chǎn)量的2.66倍。
Monacolin K;紅曲霉;誘變;液態(tài)發(fā)酵
Monacolin K是最早由日本學(xué)者遠(yuǎn)騰章在紅色紅曲霉中發(fā)現(xiàn)的一種膽固醇合成抑制劑[1],其商品名為洛伐他汀(Lovastatin),是一種新型的調(diào)整血脂藥,深受廣大患者的歡迎。Monacolin K具有酸型和內(nèi)酯型兩種存在形式,研究發(fā)現(xiàn),真正起降脂作用的是酸型Monacolin K。內(nèi)酯型的Monacolin K本身無活性,需要人體內(nèi)羥基水解酶水解后才能發(fā)揮降脂功效,從而增加肝腎負(fù)擔(dān)。天然發(fā)酵的紅曲霉產(chǎn)生的主要是酸型洛伐他汀,并且其發(fā)酵產(chǎn)物中除了含有Monacolin K之外,還有一系列Monacolin結(jié)構(gòu)類似物、不飽和脂肪酸等生理活性物質(zhì)存在,不僅具有協(xié)同調(diào)節(jié)血脂的功效,而且極大地降低了純品Monacolin K的副作用[2-3]。因此,以紅曲霉開發(fā)的保健食品、藥品在國內(nèi)、國際市場上都非常受歡迎。
目前紅曲霉生產(chǎn)洛伐他汀主要采用固態(tài)發(fā)酵的方式。固態(tài)發(fā)酵具有生產(chǎn)過程簡單、投資少、產(chǎn)量高、后處理簡單等優(yōu)點,但固態(tài)發(fā)酵周期較液態(tài)發(fā)酵長、條件不易控制、容易染菌等。在工業(yè)化固態(tài)發(fā)酵時,培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件對其產(chǎn)量和品質(zhì)的影響很大,獲得的產(chǎn)品品質(zhì)參差不齊,已逐漸失去市場競爭力。液態(tài)發(fā)酵法具有規(guī)模大,自動化程度高,人力成本低,生產(chǎn)過程易控制等顯著優(yōu)點[4-5]。但是,由于受到產(chǎn)量和生產(chǎn)成本的限制,液態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)Monacolin K的研究一直停留在實驗室水平,沒有形成產(chǎn)業(yè)化規(guī)模[6]。因此,提高紅曲霉液體發(fā)酵產(chǎn)生Monacolin K的產(chǎn)量成為目前亟待解決的問題。
優(yōu)良菌種的選育是提高紅曲霉中Monacolin K產(chǎn)量的一個較為切實可行的方法。在紅曲霉菌株誘變中常用的方法包括紫外誘變、氯化鋰誘變、超高壓誘變、亞硝酸和硫酸二乙酯(diethyl sulfate,DES)誘變以及多種方法聯(lián)用的復(fù)合誘變[7-10]。隨著誘變技術(shù)的進(jìn)步,很多新興的誘變方法也被逐漸用于紅曲霉菌株的選育,比如離子束誘變[11]、激光誘變和空間誘變等[12-13]。
另外,改良紅曲霉發(fā)酵培養(yǎng)基的成分,尤其是研究發(fā)酵工藝中作為添加劑的碳源、氮源、無機鹽等因素對紅曲霉發(fā)酵生產(chǎn)Monacolin K的影響,也是目前研究的重點和熱點。目前已報道的可有效促進(jìn)紅曲霉合成洛伐他汀的添加劑包括:碳源有甘油、可溶性淀粉、麥芽糖、蔗糖、乙醇、乙酸;氮源有蛋白胨、玉米漿、大豆粉、NaNO3;無機鹽有MgSO4、ZnSO4[14-17]。
篩選適用于液態(tài)發(fā)酵的紅曲霉Monacolin K高產(chǎn)菌株并優(yōu)化其發(fā)酵條件,是解決當(dāng)前Monacolin K液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)量不高的最直接也是最行之有效的方法,對于國內(nèi)紅曲產(chǎn)業(yè)的發(fā)展具有一定的推動作用。
1.1 材料與試劑
1.1.1 菌種
紫色紅曲霉(Monascus purpureus)ZH01:山東中惠食品有限公司。
1.1.2 培養(yǎng)基
種子培養(yǎng)基:米粉30 g,葡萄糖20 g,NaNO32 g,蛋白胨15g,MgSO4·7H2O 1g,KH2PO41.5g,加水至1000mL,pH自然。
發(fā)酵培養(yǎng)基:米粉50 g,甘油50 mL,NaNO32 g,蛋白胨15 g,MgSO4·7H2O 1 g,ZnSO42 g,KH2PO41.5 g,加水至1 000 mL,pH自然。
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂15 g,加水至1 000 mL,pH自然。
1.1.3 主要試劑
葡萄糖、乳糖、木糖、蔗糖、甘油、蛋白胨、NaNO3、MgSO4·7H2O、KH2PO4、ZnSO4、CaCl2、NH4Cl、(NH4)2SO4、NH4NO3等化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純,大豆蛋白粉、酵母粉、豆粕粉和牛肉膏等均為生化試劑。
1.2 儀器與設(shè)備
常壓室溫等離子體(atmospheric and room temperature plasma,ARTP)誘變育種系統(tǒng):無錫思源清生物科技有限公司;Agilent 1260 Infinity四元液相色譜儀:安捷倫科技有限公司;HZQ-Q全溫振蕩器、HPS-250生化培養(yǎng)箱:北京東聯(lián)哈爾有限公司;KQ-400KDE型超聲波清洗器:昆山市超聲儀器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 液體培養(yǎng)方法
從PDA平板上刮取紅曲霉菌落接種到種子培養(yǎng)基中,30℃條件下?lián)u床培養(yǎng)3 d,按照15%的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基,26℃條件下培養(yǎng)14~21 d。
1.3.2 紅曲霉誘變方法
(1)單孢子懸液的制備
以生理鹽水將孢子從平板或斜面上洗下,制得孢子懸液,接種到小米培養(yǎng)基(8 g小米+10 mL水)中,培養(yǎng)48 h左右,加入生理鹽水制得菌懸液以無菌紗布過濾,以玻璃珠振蕩打散至單孢子懸液,備用。
(2)ARTP等離子流誘變
以時間為可變參數(shù),功率和氣量為固定參數(shù)(功率為100 W,氣量為10 L/min)。首先,打開紫外燈對操作倉消毒30 min。同時,在超凈臺中取待誘變孢子懸液10 μL均勻涂于載片上,打開無菌風(fēng)吹干;將裝有樣品載片的平板移至ARTP操作倉,用無菌鑷子將載片放于對應(yīng)孔位,調(diào)節(jié)載臺下方旋鈕,使載片位于氣流出口2 mm處,并關(guān)閉倉門;設(shè)置處理時間,點擊“開始”按鈕處理樣品;樣品處理完畢,用無菌鑷子將載片放入裝有1 mL生理鹽水的離心管中,將離心管振蕩1 min洗脫載片上的菌液;對得到的菌懸液適當(dāng)稀釋后涂布PDA平板,28℃培養(yǎng)72 h。
1.3.3 洛伐他汀高產(chǎn)紅曲霉菌株的初篩
構(gòu)巢曲霉對峙培養(yǎng)法:使用平皿打孔器移取相同大小的待篩選紅曲霉菌落接種到PDA平板的一側(cè),28℃培養(yǎng)5 d后,在平板另一側(cè)對應(yīng)位置接種相同大小的構(gòu)巢曲霉菌落,將平板放于26℃培養(yǎng)箱中進(jìn)行靜置培養(yǎng)7 d后,測量構(gòu)巢曲霉的菌落直徑。
1.3.4 洛伐他汀的檢測方法
發(fā)酵液樣品處理:取250 μL發(fā)酵液與750 μL甲醇一起加到1.5mL的離心管中,超聲波振蕩處理60min,經(jīng)0.22μm的薄膜過濾后,樣品中的洛伐他汀含量進(jìn)行高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)測定。
HPLC檢測條件:色譜柱250 mm×4.6 mm C18柱;紫外檢測器;檢測波長238 nm;流動相:甲醇∶水∶磷酸=385∶115∶0.14(V/V);流速1 mL/min;進(jìn)樣量10 μL。
2.1 對峙培養(yǎng)實驗中構(gòu)巢曲霉菌落直徑與紅曲霉合成洛伐他汀能力的關(guān)系
紅曲霉產(chǎn)生的洛伐他汀對構(gòu)巢曲霉的生長具有一定的抑制作用。因此,將紅曲霉與構(gòu)巢曲霉進(jìn)行對峙培養(yǎng),從理論上來說,紅曲霉合成Monacolin K的能力越強,其對應(yīng)的構(gòu)巢曲霉的菌落直徑就越小。為了驗證這一推論,隨機挑取ARTP等離子體誘變得到的誘變株與構(gòu)巢曲霉進(jìn)行對峙培養(yǎng),同時將這些誘變株進(jìn)行液體搖瓶培養(yǎng)14 d,利用HPLC檢測其Monacolin K的產(chǎn)量,從而分析在對峙培養(yǎng)實驗中構(gòu)巢曲霉菌落直徑與紅曲霉合成Monacolin K能力的關(guān)系,結(jié)果如圖1所示。
由圖1可知,隨著構(gòu)巢曲霉菌落直徑的增大,其對應(yīng)紅曲霉Monacolin K的產(chǎn)量出現(xiàn)逐漸減少的趨勢。因此,構(gòu)巢曲霉的菌落直徑可以作為衡量對峙培養(yǎng)的紅曲霉合成Monacolin K能力的一個指標(biāo)。采用構(gòu)巢曲霉對峙培養(yǎng)實驗對產(chǎn)MonacolinK紅曲霉進(jìn)行初篩具有通量高,準(zhǔn)確性相對較高的優(yōu)點。
2.2 誘變菌株的遺傳穩(wěn)定性
通過構(gòu)巢曲霉對峙培養(yǎng)初篩以及液體搖瓶培養(yǎng)后HPLC檢測復(fù)篩,共得到4株(MP60-3、MP60-6、MP45-1、MP45-11)Monacolin K產(chǎn)量較出發(fā)菌株有明顯提高的誘變株。相對于出發(fā)菌株489.34 mg/L的Monacolin K產(chǎn)量,篩選得到的這4株菌Monacolin K的產(chǎn)量提高了1.4~1.7倍不等。為了驗證得到的4株菌產(chǎn)生Monacolin K的遺傳穩(wěn)定性,將這4株紅曲霉菌株傳代5代,分別檢測其洛伐他汀產(chǎn)量的變化,結(jié)果如表1所示。
由表1可知,MP60-3、MP45-1和MP45-11的Monacolin K產(chǎn)量從第3代開始迅速下降,經(jīng)五代培養(yǎng)后其產(chǎn)量都有大幅減低,不具有工業(yè)化大生產(chǎn)的優(yōu)越性。菌株MP60-6的Monacolin K產(chǎn)量較穩(wěn)定,說明其遺傳性狀穩(wěn)定,具有應(yīng)用于工業(yè)化大生產(chǎn)的潛力,成為進(jìn)一步的研究對象。
2.3 最佳碳源的選擇
碳源是發(fā)酵培養(yǎng)基中最重要的成分之一,對微生物生長代謝的作用主要為提供細(xì)胞的碳架,提供細(xì)胞生命活動所需的能量,提供合成產(chǎn)物的碳架。紅曲霉的液體發(fā)酵一般需要速效碳源和遲效碳源兩種。培養(yǎng)基中的速效碳源在發(fā)酵的前期,對紅曲霉的快速生長繁殖有最直接的影響。為確定紅曲霉MP60-6生產(chǎn)Monacolin K的最佳速效碳源,比較了其分別利用葡萄糖、乳糖、蔗糖、甘油和木糖,初始濃度均為5%發(fā)酵Monacolin K的產(chǎn)量,結(jié)果見圖2。由圖2可知,在選定的5種速效碳源中,甘油為速效碳源時發(fā)酵液Monacolin K最高可達(dá)1 011 mg/L,明顯優(yōu)于其他速效碳源。此外甘油來源豐富、組成簡單、價格便宜,故選定甘油為最佳速效碳源,而其遲效碳源通常都是使用大米粉,其有利于紅曲霉生長后期次級代謝產(chǎn)物的形成。故采用5%甘油+50 g/L米粉作為紅曲霉發(fā)酵的初始碳源。
2.4 最佳氮源的選擇
氮源是構(gòu)成菌體細(xì)胞中核酸、蛋白質(zhì)和細(xì)胞質(zhì)的主要成分,也是合成各種含氮代謝產(chǎn)物的重要原料,對微生物的生長和目標(biāo)產(chǎn)物的積累有重要的影響。培養(yǎng)基中使用的氮源可分為兩大類:有機氮源和無機氮源。在培養(yǎng)基中合理地加入不同氮源,有利于縮短紅曲霉生長時間,提高M(jìn)onacolin K的產(chǎn)量。實驗比較的有機氮源包括酵母粉、大豆蛋白粉、牛肉膏、蛋白胨和豆粕粉,其初始濃度均為15g/L,無機氮源包括NH4Cl、(NH4)2SO4、NH4NO3和NaNO3,其初始濃度均為2g/L。不同氮源對紅曲霉MP60-6產(chǎn)Monacolin K的影響結(jié)果見圖3。
由圖3可知,有機氮源中蛋白胨發(fā)酵Monacolin K產(chǎn)量最高,無機氮源中NaNO3發(fā)酵Monacolin K產(chǎn)量最高。故發(fā)酵培養(yǎng)基中分別選用15 g/L蛋白胨和2 g/L NaNO3分別作為有機和無機氮源。
2.5 無機鹽對紅曲霉產(chǎn)Monacolin K的影響
培養(yǎng)基中的無機鹽在微生物生長和代謝產(chǎn)物合成中也具有舉足輕重的作用。本實驗比較了不同質(zhì)量濃度(1 g/L、2 g/L、4 g/L)的MgSO4、ZnSO4和CaCl2對紅曲霉MP60-6產(chǎn)Monacolin K的影響,結(jié)果見圖4。
由圖4可知,MgSO4、ZnSO4在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)對于紅曲霉MP60-6產(chǎn)生Monacolin K都具有一定的促進(jìn)作用,其中以MgSO4的促進(jìn)作用更為明顯,而CaCl2的作用則微乎其微。結(jié)果表明,MgSO4質(zhì)量濃度在1 g/L時對Monacolin K的產(chǎn)量提高效果最顯著,MgSO4質(zhì)量濃度>1 g/L時Monacolin K的產(chǎn)量反而有所下降;同樣,ZnSO4質(zhì)量濃度在達(dá)到2 g/L時Monacolin K的產(chǎn)量達(dá)到最高。因此,選擇在發(fā)酵培養(yǎng)基中添加1 g/L MgSO4和2 g/L ZnSO4。
2.6 添加乙酸和檸檬酸對紅曲霉產(chǎn)生Monacolin K的影響
大量文獻(xiàn)報道,在紅曲霉發(fā)酵過程中添加乙酸或檸檬酸有利于提高M(jìn)onacolin K的產(chǎn)量[2,17-18]。在發(fā)酵開始的第3、第4天每天分兩次分別添加0.1%、0.2%和0.3%的乙酸或檸檬酸,然后比較其Monacolin K的產(chǎn)量,結(jié)果見圖5。
由圖5可知,添加乙酸和檸檬酸都能夠從不同程度上促進(jìn)Monacolin K的產(chǎn)生,并且乙酸對紅曲霉MP60-6的促進(jìn)作用比檸檬酸更顯著。每次添加0.1%的乙酸和0.2%的檸檬酸能夠達(dá)到提高M(jìn)onacolin K的最佳效果。這種促進(jìn)作用的原因可能是:乙酸和檸檬酸都是紅曲霉代謝中產(chǎn)生乙酰輔酶A(coenzyme A,CoA)的直接前體物質(zhì),而根據(jù)已知的Monacolin K的合成途徑,胞內(nèi)的乙酰CoA含量是決定Monacolin K產(chǎn)量的關(guān)鍵因素。因此,在發(fā)酵過程的第3、第4天每天兩次添加0.1%乙酸和0.2%檸檬酸有利于胞內(nèi)乙酰CoA的積累,從而提高M(jìn)onacolin K的產(chǎn)量。
2.7 甘油補加的時機對紅曲霉產(chǎn)生洛伐他汀的影響
按照1.3.1所述的培養(yǎng)條件,在初始碳源為50 g/L的米粉培養(yǎng)基中,在培養(yǎng)的第2、5、8、10天向不同的搖瓶中補加10%的甘油,并定時取樣,檢測其Monacolin K合成的情況,結(jié)果見圖6。
由圖6可知,第8天和第10天開始補加甘油的搖瓶中紅曲霉產(chǎn)生Monacolin K的產(chǎn)量明顯高于其他搖瓶的產(chǎn)量,并且以第8天補加的效果最佳。同時,第2天和第5天補加甘油Monacolin K的產(chǎn)量比不補加甘油的對照產(chǎn)量還要低。這說明作為次級代謝產(chǎn)物的Monacolin K是在菌體生長后期開始大量積累,前期生長過快反而不利于其產(chǎn)生;從Monacolin K的合成曲線上看,發(fā)酵中Monacolin K的大量積累集中在第12~17天,這一階段的積累速度呈指數(shù)增長。而從補加碳源上來看,在第8天補加甘油后,到了第12天Monacolin K才開始大量積累,這說明Monacolin K的積累需要一定的“準(zhǔn)備期”。因此,在發(fā)酵的第8天補加10%的甘油對于提高M(jìn)onacolin K產(chǎn)量效果最佳。
利用ARTP等離子流誘變技術(shù)對紅曲霉ZH01進(jìn)行誘變處理,并建立構(gòu)巢曲霉對峙培養(yǎng)快速篩選方法,獲得4株Monacolin K產(chǎn)量顯著提高的紅曲霉菌株。經(jīng)遺傳穩(wěn)定性實驗分析后,最終選擇MP60-6作為生產(chǎn)菌株,該菌Monacolin K產(chǎn)量較出發(fā)菌株提高了60%以上。
該文考察了紅曲霉MP60-6發(fā)酵中碳源、氮源、無機鹽以及添加乙酸、檸檬酸和甘油等對其Monacolin K產(chǎn)量的影響,確定甘油為最佳速效碳源;蛋白胨和NaNO3分別為最佳有機和無機氮源;MgSO4和ZnSO4有利于促進(jìn)Monacolin K的產(chǎn)生,而CaCl2的影響不明顯;添加乙酸和檸檬酸都能提高M(jìn)onacolin K產(chǎn)量,最佳濃度添加量分別為0.1%和0.2%;Monacolin K在發(fā)酵后期開始大量積累,在發(fā)酵的第8天補加甘油能顯著提高M(jìn)onacolin K的產(chǎn)量。經(jīng)過初步優(yōu)化培養(yǎng)基成分及發(fā)酵條件,紅曲霉MP60-6液態(tài)發(fā)酵Monacolin K的最終產(chǎn)量可達(dá)到1 302 mg/L,為出發(fā)菌株ZH01產(chǎn)量(489.3 mg/L)的2.66倍。
[1]ENDO A.Monacolin K.A new hypocholesterolemic agent produced by a Monascusspecies[J].J Antibiot,1979,32(8):852-854.
[2]孫偉,劉愛英,梁宗琦.紅曲中莫納可林K(Monacolin K)的研究進(jìn)展[J].西南農(nóng)業(yè)學(xué)報,2003,16(3):112-116.
[3]李永麗.高產(chǎn)Monacolin K功能紅曲的誘變篩選及應(yīng)用[D].武漢:武漢工業(yè)學(xué)院碩士論文,2010.
[4]陳曄,朱華,許贛榮.紅曲霉9901液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)莫納可林K的發(fā)酵條件[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2004,30(1):57-61.
[5]危勤濤,張慶慶,劉輝,等.紅曲霉液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)洛伐他汀條件的研究[J].安徽工程科技學(xué)院學(xué)報:自然科學(xué)版,2008,23(4):40-43.
[6]賈波.紅曲霉深層發(fā)酵生產(chǎn)Monacolin K的研究[D].杭州:浙江工業(yè)大學(xué)碩士論文,2003.
[7]游玟娟,溫?fù)碥?,李?高產(chǎn)洛伐他汀紅曲霉復(fù)合誘變育種[J].食品工業(yè)科技,2014,35(22):213-215.
[8]李滔滔.高產(chǎn)洛伐他汀紅曲霉菌誘變育種及其在醬油廢水中的應(yīng)用[D].株洲:湖南工業(yè)大學(xué)碩士論文,2013.
[9]李盡哲,王偉,黃雅琴.超高壓對洛伐他汀生產(chǎn)菌株的誘變研究[J].中國釀造,2011,30(4):58-61.
[10]鄒曉,蓋棟梁,孫嘉龍,等.紫紅曲霉的復(fù)合誘變及培養(yǎng)條件優(yōu)化[J].貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(6):78-82.
[11]宋紅平,李梅,馮琳,等.重離子束-紫外線復(fù)合誘變選育高產(chǎn)Lovastatin土曲霉菌株[J].食品科學(xué),2013,34(3):158-162.
[12]戴德慧,郭愛蓮,蔣家新.He-Ne激光對紅曲霉M9x的原生質(zhì)體誘變育種[J].食品科學(xué),2005,26(11):75-78.
[13]成劍峰,王勇亮,何于飛,等.一株紅曲霉菌種的誘變選育及其功能性產(chǎn)物測定[J].中國釀造,2009,28(9):150-155.
[14]李晶,馬貴民,馮曉明,等.紅曲霉固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)洛伐他汀工藝條件研究[J].安徽農(nóng)學(xué)通報,2014(17):29-30.
[15]魏巍.紅曲霉發(fā)酵合成洛伐他汀的研究[D].武漢:華中科技大學(xué)碩士論文,2013.
[16]王偉,黃雅琴,李盡哲.洛伐他汀菌種發(fā)酵配方的正交試驗[J].中國釀造,2012,31(3):39-41.
[17]李亞莉,黑利生,秘鳴,等.1株紫色紅曲菌(MPT13)產(chǎn)洛伐他汀發(fā)酵條件的優(yōu)化[J].食品工業(yè),2013(8):70-72.
[18]ZHANG J,WANG Y L,LU L P,et al.Enhanced production of Monacolin K by addition of precursors and surfactants in submerged fermentation ofMonascus purpureus9901[J].Biotechnol Appl Bioc,2014,61 (2):202-207.
Screening ofMonascuswith high Monacolin K yield and optimization of its liquid-state fermentation condition
CHEN Quan1,WU Yuanzheng1,HU Jindong1,WANG Yilian1,ZHAO Xiaoyan1,ZHAO Jixing2,LI Yao2,LI Jishun1*
(1.Shandong Provincial Key Laboratory for Applied Microorganism,Biotechnology Center of Shandong Academy of Sciences, Jinan 250014,China;2.Shandong Zhonghui Biotechnology Co.,Ltd.,Huimin 251706,China)
In order to improve the production of Monacolin K byMonascus,a novel method based on the Atmospheric and Room Temperature Plasma(ARTP)was applied to screen theMonascusstrain with higher Monacolin K yield.A mutant strain MP60-6 was obtained through the screening method of plate confrontation culture ofAspergillus nidulans,and the yield of Monacolin K by MP60-6 was 60%higher than that of the initial strain. The optimal medium compositions were obtained as follows:glycerol 5%,rice powder 50 g/L,peptone 15 g/L,NaNO32 g/L,MgSO4·7H2O 1 g/L, ZnSO42 g/L,KH2PO41.5 g/L.And 0.1%acetate and 0.2%citrate were added at the 3thand 4thdays,10%glycerol was added at the 8thday in the liquid-state fermentation of MP60-6.After cultivation for 17 d under the optimized condition,the Monacolin K yield was 1 302 mg/L,which was 2.66 times of the original strain.
Monacolin K;Monascus;mutation;liquid-state fermentation
Q939.9
A
0254-5071(2015)06-0043-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2015.06.010
2015-05-04
山東省科學(xué)院青年基金項目資助(2013QN018);山東省自主創(chuàng)新專項項目(2013CXC20605)
陳泉(1981-),男,助理研究員,博士,研究方向為微生物代謝。
*通訊作者:李紀(jì)順(1971-),男,高級工程師,本科,研究方向為應(yīng)用微生物。