孫宇,封瑞,楊磊,毛楠,胡慧媛,孫雪菲,郝麗英
(1.中國(guó)醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽(yáng) 110122;2.天津出入境檢驗(yàn)檢疫局工業(yè)品中心,天津 300300)
·論著·
二硫蘇糖醇提取純化Cavl.2鈣通道片段CT3蛋白
孫宇1,封瑞1,楊磊2,毛楠1,胡慧媛1,孫雪菲1,郝麗英1
(1.中國(guó)醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽(yáng) 110122;2.天津出入境檢驗(yàn)檢疫局工業(yè)品中心,天津 300300)
目的探討二硫蘇糖醇(DTT)有助于PreScission蛋白酶切除重組蛋白GST-CT3標(biāo)簽GST的方法。方法在大腸埃希菌BL21中轉(zhuǎn)化入pGEX-6P-3/CT3重組質(zhì)粒并誘導(dǎo)其表達(dá),用B-PER提取純化重組蛋白GST-CT3,在10 mmol/L DTT存在的情況下PreScission蛋白酶切除GST標(biāo)簽得到高濃度的CT3蛋白,進(jìn)行SDS-PAGE電泳鑒定CT3蛋白。結(jié)果不含DTT情況下,PreScission蛋白酶很難切除重組蛋白GST-CT3的標(biāo)簽蛋白GST,而在10 mmol/L DTT存在的情況下,PreScission蛋白酶能夠切除重組蛋白GST-CT3的標(biāo)簽蛋白GST,得到高濃度的CT3蛋白。結(jié)論10 mmol/L DTT有助于PreScission蛋白酶切除重組蛋白GST-CT3的標(biāo)簽蛋白GST,得到高濃度的CT3蛋白。
重組蛋白;心肌細(xì)胞;鈣通道
L型鈣離子通道是存在于心肌細(xì)胞上的主要鈣通道。L型鈣通道電流參與心肌動(dòng)作電位平臺(tái)期的形成與維持,鈣離子(Ca2+)通過(guò)L型鈣通道進(jìn)入心肌細(xì)胞,從而觸發(fā)鈣,誘發(fā)鈣釋放引起興奮收縮耦聯(lián),此過(guò)程對(duì)于心臟正常功能的發(fā)揮具有重要作用[1,2]。除此之外,L型鈣離子通道還可參與可興奮細(xì)胞神經(jīng)遞質(zhì)的分泌、釋放和自我調(diào)控轉(zhuǎn)錄[3,4]。心肌L型鈣離子通道即Cav1.2鈣通道的正常表達(dá)是心臟收縮的必要前提,Cav1.2鈣通道的缺乏導(dǎo)致血管肌源性收縮無(wú)法正常進(jìn)行,并且還可干擾激素對(duì)血壓的正常調(diào)節(jié)[5]。目前研究表明心肌Cav1.2鈣通道的表達(dá)與功能異常與多種疾病密切相關(guān),例如已知的與Cav1.2鈣通道相關(guān)的疾病,包括Timothy綜合征、Brugada綜合征、房顫、心律失常、心力衰竭等[6,7]。
心肌Cav1.2鈣通道可直接或間接受磷酸化和氧化還原作用所調(diào)節(jié)[8,9],也可被細(xì)胞內(nèi)激素、蛋白激酶、磷酸化蛋白酶、鈣調(diào)蛋白(calmodulin,CaM)、鈣調(diào)蛋白激酶Ⅱ(Ca2+/calmodulin-dependent kinaseⅡ,CaMKⅡ)等[8,10,11]多種細(xì)胞因子所調(diào)節(jié),從而引起通道活性的變化,進(jìn)而影響通道的功能改變。心肌Cav1.2鈣通道具有較長(zhǎng)的C末端片段,此部位是通道功能調(diào)節(jié)的重要部位,在或戰(zhàn)或逃反應(yīng)中發(fā)揮重要作用。而CT3(a.a.1942-2169)是位于Cav1.2鈣通道C末端遠(yuǎn)端的片段遠(yuǎn)端羧基末端(distal carboxy terminus,DCT)的一段片段,DCT在或戰(zhàn)或逃反應(yīng)中作用關(guān)鍵,對(duì)Cav1.2通道的調(diào)節(jié)發(fā)揮著重要作用。有研究報(bào)道稱DCT能夠抑制通道活性[12~14],然而,詳細(xì)的調(diào)節(jié)機(jī)制尚不完全清楚。因此,獲得DCT上的鈣通道片段CT3蛋白對(duì)于鈣通道相關(guān)調(diào)節(jié)機(jī)制的研究具有重要的意義。目前,實(shí)驗(yàn)室提取鈣通道片段CT3蛋白是通過(guò)GST標(biāo)簽再經(jīng)大腸埃希菌誘導(dǎo)大量表達(dá)而形成重組蛋白GST-CT3。然而與其他GST標(biāo)簽的蛋白相互作用時(shí),往往需要用酶切掉標(biāo)簽GST而得到純化的CT3蛋白。由于GST-CT3蛋白的特性,常規(guī)實(shí)驗(yàn)條件下酶無(wú)法切掉GST-CT3蛋白的標(biāo)簽GST。針對(duì)這一難題,本研究采用高濃度的還原劑二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)探尋酶切除GST-CT3蛋白的標(biāo)簽GST得到純化的CT3蛋白的方法,為Cav1.2通道調(diào)節(jié)機(jī)制的相關(guān)研究奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料
原核表達(dá)載體pGEX-6P-3和BL21菌種,購(gòu)自美國(guó)Amersham Pharmacia Biotech公司;DTT、異丙基硫代半乳糖苷、氨芐西林、溶菌酶,購(gòu)自日本W(wǎng)ako公司。絲氨酸蛋白酶、GST融合蛋白純化凝膠(Glutathione-4B beads)、DNA酶(Turbo nuclease),購(gòu)自英國(guó)GE Healthcare公司。
1.2 方法
1.2.1 重組質(zhì)粒pGEX-6P-3/CT3的誘導(dǎo)及表達(dá):將重組質(zhì)粒pGEX-6P-3/CT3化入BL21細(xì)菌中,在于含有0.1 mg/mL氨芐西林的LB培養(yǎng)液中培養(yǎng),37℃水浴、100 r/min震蕩過(guò)夜。將菌液用LB培養(yǎng)液稀釋至OD 0.6~0.8范圍內(nèi)[15],加入終濃度為1 mmol/L的異丙基硫代半乳糖苷,37℃水浴、100 r/min震蕩5 h,誘導(dǎo)表達(dá)重組蛋白GST-CT3。
1.2.2 DTT提取和純化無(wú)標(biāo)簽的CT3蛋白:將菌液按照6 000 r/min離心15 min,棄掉上清收集沉淀。將沉淀重懸,每克沉淀加入4 mL B-PER[16,17]、0.2 mg/mL溶菌酶、1 μL DNA酶(Turbo nuclease)和蛋白酶抑制劑,室溫震蕩30 min以促進(jìn)細(xì)菌破膜、DNA溶解及GST-CT3蛋白的釋放。16 000 r/min離心20 min,取上清置于2個(gè)15 mL EP管中,分別與PBS buffer洗過(guò)的300 μL GS-4B beeds在4℃孵育搖晃過(guò)夜。800 r/min離心棄上清,beeds分別用5 mL PBS buffer和Tris buffer各洗2次,留取少量的beeds(為GST-CT3蛋白)記為P1,取其中一管加990 μL Tris buffer和10 μL PreScission蛋白酶,標(biāo)記為Control;另一管加990 μL Tris buffer、10 μL PreScission蛋白酶和終濃度為10 mmol/L DTT標(biāo)記為DTT,分別4℃孵育搖晃6 h。
1.2.3 DTT提取和純化后CT3蛋白的鑒定:將上述PreScission蛋白酶酶切后的2管蛋白分別離心留取上清10 μL記為S,分別留取少許沉淀beeds記為P2,各留取的樣品經(jīng)1×loading緩沖液室溫處理20 min后,80℃加熱5 min,進(jìn)行12.5%聚丙烯酰胺凝膠電泳,根據(jù)Marker位置檢測(cè)CT3蛋白。
2.1 單純酶切方法無(wú)法提取和純化CT3蛋白
將單純PreScission蛋白酶酶切之前的GST-CT3蛋白,即P1、PreScission蛋白酶酶切之后的上清,即S、和沉淀,即P2,分別進(jìn)行12.5%聚丙烯酰胺凝膠電泳,經(jīng)考馬斯亮藍(lán)染色。如圖1所示,經(jīng)單純Pre-Scission蛋白酶酶切之后,上清無(wú)任何蛋白的存在,而沉淀蛋白仍以GST-CT3蛋白形式存在。該結(jié)果證實(shí)了GST-CT3蛋白的標(biāo)簽GST無(wú)法被PreScission蛋白酶酶切掉。
圖1 單純酶切法無(wú)法提取出CT3蛋白Fig.1 CT3 protein could not be obtained by using enzyme alone
2.2 DTT能夠提取純化出高濃度的CT3蛋白
將PreScission蛋白酶酶切之前的GST-CT3蛋白,即P1、在10 mmol/L DTT存在的情況下經(jīng)PreScission蛋白酶酶切之后的上清,即S、和沉淀,即P2,分別進(jìn)行12.5%SDS-PAGE電泳,經(jīng)考馬斯亮藍(lán)染色。如圖2所示,在10 mmol/L DTT存在的情況下經(jīng)PreScission蛋白酶酶切之后,上清存在較多的CT3蛋白,而沉淀則為較多的GST蛋白和極少量的CT3蛋白,幾乎不存在GST-CT3蛋白。以上結(jié)果說(shuō)明10 mmol/L DTT能夠有助于PreScission蛋白酶酶切GST -CT3蛋白的標(biāo)簽GST,且酶切效率較高。
圖2 高濃度DTT能夠提取出高純度、高濃度CT3Fig.2 The CT3 protein could be obtained with high concentration of DTT
越來(lái)越多的研究表明,Cav1.2鈣通道的DCT在通道功能調(diào)節(jié)過(guò)程中起到重要作用。有研究報(bào)道,A激酶錨定蛋白能夠通過(guò)一修飾的亮氨酸拉鏈結(jié)合于DCT,而參與β-腎上腺素對(duì)心肌細(xì)胞Cav1.2通道的調(diào)節(jié),從而抑制通道的活性[13]。亦有研究報(bào)道稱,DCT能夠與Cav1.2通道C末端近端上的CB/IQ區(qū)域直接結(jié)合從而掩蓋了CaM蛋白與通道的結(jié)合位點(diǎn),抑制了CaM蛋白與通道的結(jié)合因此抑制通道的活性[14]??梢?jiàn),DCT在Cav1.2通道的功能調(diào)節(jié)中具有關(guān)鍵的作用,因此獲得DCT上的鈣通道片段CT3蛋白對(duì)于鈣通道的研究具有重要的意義。大腸埃希菌由于其操作簡(jiǎn)單、成本低、生長(zhǎng)快、產(chǎn)量高等特性常常用于重組蛋白的表達(dá)。GST標(biāo)簽的CT3蛋白(GST-CT3)在經(jīng)大腸埃希菌誘導(dǎo)及表達(dá)是實(shí)驗(yàn)室提取純化重組蛋白的常用方法,但由于重組蛋白結(jié)構(gòu)的差異,GST-CT3蛋白的標(biāo)簽GST很難被PreScission蛋白酶所切掉,然而由于實(shí)驗(yàn)的需求,常常需要不含標(biāo)簽GST的單純CT3蛋白。目前針對(duì)這一難題,有研究者提出在PreScission蛋白酶酶切過(guò)程中加入高鹽、甘油等方法有助于酶切,但是效果均不理想,因此需要單純CT3蛋白的相關(guān)實(shí)驗(yàn)無(wú)法開(kāi)展。DTT被報(bào)道有助于重組人神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子3、重組牛乳鐵蛋白等多種重組蛋白的提取[18,19],而是否能夠有助于GST-CT3重組蛋白的提取目前尚無(wú)研究報(bào)道,因此本研究在重組蛋白GST-CT3應(yīng)用高濃度DTT,探討其是否能夠有助于提取純化單純CT3蛋白。
本研究在PreScission蛋白酶酶切過(guò)程中加入高濃度DTT(10 mmol/L)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與不加DTT相比,10 mmol/L DTT能夠有助于PreScission蛋白酶酶切掉GST-CT3蛋白的標(biāo)簽GST,酶切效率很高,幾乎不存在未經(jīng)酶切的GST-CT3蛋白,并且提取純化出的單純CT3蛋白的純度和產(chǎn)量均相對(duì)較高。GSTCT3重組蛋白結(jié)構(gòu)的差異使其不易被PreScission蛋白酶切除標(biāo)簽GST,其原因可能由于在GST-CT3重組蛋白提取純化的過(guò)程中,長(zhǎng)期暴露于空氣之中,使其被空氣中的氧氣氧化而引起蛋白結(jié)構(gòu)的改變,掩蓋或改變了PreScission蛋白酶在蛋白上的作用部位,因此PreScission蛋白酶無(wú)法發(fā)揮其正常功能。而DTT是一種可滲透過(guò)細(xì)胞膜的小分子還原劑,常常用于蛋白的提取,最近有研究報(bào)道稱DTT作為還原試劑可以調(diào)控不同組織中Ca2+、Na+、KATP通道。而本實(shí)驗(yàn)中加入了高濃度的DTT,可以還原被空氣氧化的GST-CT3重組蛋白,使其結(jié)構(gòu)趨于正常,暴露出PreScission蛋白酶的作用部位。因此可以獲得高濃度的單純CT3蛋白。
綜上所述,高濃度DTT方法能夠提取純化高產(chǎn)量、高純度的Cav1.2鈣通道片段CT3蛋白,可以廣泛應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)研究中,為Cav1.2通道的研究奠定了基礎(chǔ)。然而本實(shí)驗(yàn)仍存在不足,由于DTT(10 mmol/L)濃度較高,提取出的CT3蛋白含有較高含量的DTT,可能會(huì)對(duì)后續(xù)研究產(chǎn)生一定的影響,在有條件的情況下最好使用小分子滲透膜將小分子的DTT濾除,然后得到更為純凈的不含DTT的單純CT3蛋白。
[1]Bodi I,Mikala G,Koch SE,et al.The L-type calcium channel in the heart:the beat goes on[J].J Clin Invest,2005,115(12):3306-3317.
[2]Oz S,Benmocha A,Sasson Y,et al.Competitive and non-competitive regulation of calcium-dependent inactivation in Cav1.2 L-typeCa2+channels by calcium and Ca2+-binding protein 1[J].J Biol Chem,2013,288(18):12680-12691.
[3]Jiang C,Poole-Wilson PA,Sarrel PM,et al.Effect of 17 beta-oestradiol on contraction,Ca2+current and intracellular free Ca2+in guineapig isolated cardiac myocytes[J].Br J Pharmacol,1992,106(3):739-745.
[4]Jarkko J,Ronkainen,Sandra L,et al.Ca2+-calmodulin-dependent protein kinaseⅡrepresses cardiac transcription of the L-type calcium channel α1C-subunit gene(Cacna1c)by DREAM translocation[J].J Physiol,2011,589(Pt 11):2669-2686.
[5]Monosmang S,Schulla V,Welling A,et al.Dominant role of smooth muscle L-type calcium channel Cav1.2 for blood pressure regulation[J].EMBO J,2003,22(22):6027-6034.
[6]Schenkel PC,Tavares AM,F(xiàn)ernandes RO,et al.Time course of hydrogen peroxide-thioredoxin balance and its influence on the intracellular signaling in myocardial infarction[J].Exp Physiol,2012,97(6):741-749.
[7]Burgoyne JR,Mongue-Din H,Eaton P,et al.Redox signaling in cardiac physiology and pathology[J].Cirs Res,2012,111(8):1091-1106.
[8]Wang WY,Hao LY,Minobe E,et al.CaMKⅡphosphorylates a threonine residue in the C-terminal tail of Cav1.2 Ca2+channel and modulates the interaction of the channel with calmodulin[J].J Physiol Sci,2009,59(4):283-290.
[9]Yang L,Xu J,Minobe E,et al.Mechanisms underlying the modulation of L-type Ca2+channel by hydrogen peroxide in guinea pig ventricular myocytes[J].J Physiol Sci,2013,63(6):419-426.
[10]Catterall WA.Structure and regulation of voltage-gated Ca2+channels[J].Annu Rev Cell Dev Biol,2000,16:521-555.
[11]Asmara H,Minobe E,Saud ZA,et al.Interactions of calmodulin with the multiple binding sites of Cav1.2 Ca2+channel[J].J Pharmacol Sci,2010,112(4):397-404.
[12]Fuller MD,F(xiàn)u Y,Scheuer T,et al.Differential regulation of Cav1.2 channels by cAMP-dependent protein kinase bound to A-kinase anchoring proteins 15 and 79/150[J].J Gen Physiol,2014,143(3):315-324.
[13]Fu Y,Westenbroek RE,Yu FH,et al.Deletion of the distal C terminus of Cav1.2 channels leads to loss of β-adrenergic regulation and heart failure in vivo[J].J Biol Chem,2011,286(14):12617-12626.
[14]Crump SM,Andres DA,Sievert G,et al.The cardiac L-type calcium channel distal carboxy terminus autoinhibition is regulated by calcium[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2012,304(3):H455-H464.
[15]何桂林,邵冬雪,印丹丹,等.體外重組Cav1.2不同蛋白片段純化及其與CaM相互作用的研究[J].中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2013,42(9):773-776.
[16]封瑞,胡慧媛,郭鳳,等.Cav1.2鈣通道片段CT1融合蛋白的制備及生物活性鑒定[J].中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2013,42(11):970-973.
[17]孫宇,封瑞,孫威,等.變性再?gòu)?fù)性方法提取高純度Cav1.2片段GST-CT1及其生物活性的鑒定[J].中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2014,43(9):777-780.
[18]袁靜明,李卓玉,王雅梅,等.利用內(nèi)蛋白子剪切功能一步純化重組人生很靜營(yíng)養(yǎng)因子-3[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2000,16(3):335-339.
[19]林少華,羅紅霞,郭慧媛,等.重組牛乳鐵蛋白肽包含體的復(fù)性與純化[J].中國(guó)乳品工業(yè),2006,34(1):9-12.
(編輯 陳 姜)
Purification ofCT3 FragmentofCav1.2 with Dithiothreitol
SUN Yu1,F(xiàn)ENG Rui1,YANG Lei2,MAO Nan1,HU Hui-yuan1,SUN Xue-fei1,HAO Li-ying1
(1.DepartmentofPharmaceuticalToxicology,SchoolofPharmacy,China MedicalUniversity,Shenyang 110122,China;2.IndustrialGoods Center,Entry-exitInspection and Quarantine Bureau,Tianjin 300300,China)
Objective To explore whetherdithiothreitol(DTT)is helpfulfor PreScission Protease to cutoffthe GST from GST-CT3 protein.MethodsThe pGEX-6P-3/CT3 recombinant plasmid was transfected into Escherichia coli BL21,and the GST-CT3 fusion protein was purified by BPER method.PreScission Protease was applied with 10 mmol/L DTT to cut off the GST,then the SDS-PAGE was performed for identification of the CT3 protein.ResultsWithout DTT,it was very difficult for PreScission Protease to cut off the GST from GST-CT3 protein.However,in the presence of10 mmol/L DTT,PreScission Protease could cutoffthe GSTeasily as identified by SDS-PAGE.Conclusion10 mmol/L DTT can help Pre-Scission Protease to cutGSTfrom GST-CT3 protein,so as to achieve high concentration ofCT3.
fusion protein;cardiac myocytes;calcium channel
R96
A
0258-4646(2015)07-0588-04
國(guó)家自然科學(xué)基金(31471091,31400981)
孫宇(1989-),女,碩士研究生.
郝麗英,E-mail:lyhao@mail.cmu.edu.cn
2015-01-13
網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間: