金朝暉,陳 瓊,趙樹楠,林 凌*
(安徽師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,安徽 蕪湖 241000)
纖維素酶是指能水解纖維素β-1,4葡萄糖苷鍵使纖維素變成纖維二糖和葡萄糖的一組酶,為起協(xié)同作用的多組分酶系[1],其應(yīng)用范圍涉及醫(yī)藥、紡織、日用化工、造紙、食品發(fā)酵、工業(yè)洗滌、煙草、石油開采、廢水處理及飼料等各個(gè)領(lǐng)域。在釀造行業(yè)中,纖維素酶能夠起到提高酒類產(chǎn)品的出酒率,改善酒的品質(zhì),增加果酒口感的作用;同時(shí)也能夠提高醬油、食醋的產(chǎn)量,增加調(diào)味品的風(fēng)味[2]。此外,纖維素酶在廢棄生物質(zhì)能源利用開發(fā)方面,具有巨大的潛在價(jià)值。合理有效地利用與轉(zhuǎn)化地球上的纖維素原料,對(duì)于解決工農(nóng)業(yè)環(huán)境污染、當(dāng)今石油能源危機(jī)具有重要現(xiàn)實(shí)意義[3]。相對(duì)于最適催化溫度為50~60 ℃的中溫型纖維素酶,適冷型纖維素酶能夠在自然條件(10~30 ℃)維持較高的酶活力和催化效率,大大縮短處理過程的時(shí)間并節(jié)省昂貴的加熱或冷卻費(fèi)用[4]。因此研究與發(fā)掘適冷型纖維素酶,能夠有效地減少工藝流程并降低生產(chǎn)成本[5-7]。
實(shí)驗(yàn)樣品取自青海高寒地區(qū),利用其獨(dú)特的低溫環(huán)境篩選出所需要的具有適冷型纖維素酶的目的菌株[6],為纖維素酶的發(fā)掘與利用提供了一定的研究思路與基礎(chǔ)。
1.1.1 樣品來源
實(shí)驗(yàn)土壤樣品采集自青海茶卡鹽湖地區(qū),取樣坐標(biāo)為東經(jīng)99°02′,北緯36°45′。
1.1.2 試劑
剛果紅染色液:稱取剛果紅粉末溶解于蒸餾水中,終質(zhì)量濃度為1 g/L。
剛果紅脫色液:終濃度為1 mol/L 的NaCl 溶液。
3,5-二硝基水楊酸(dinitrosalicylic acid,DNS)顯色劑:分別稱取NaOH 104 g、3,5-二硝基水楊酸30 g、純酒石酸鉀鈉910 g、重蒸苯酚25 g和無水亞硫酸鈉25 g溶于2 500 mL蒸餾水,貯存于棕色瓶中避光保存,放置一星期后過濾使用。
5 g/L羧甲基纖維素鈉(carboxymethylated cellulose-Na,CMC-Na)溶液:準(zhǔn)確稱取0.50 g 羧甲基纖維素鈉用pH 8.0磷酸緩沖液溶解并定容至100 mL。
1.1.3 培養(yǎng)基
纖維素富集培養(yǎng)基(1 L):MgSO40.1 g,CaCl20.1 g,(NH4)2SO42.0 g,K2HPO42.0 g,KH2PO40.5 g,NaCl 6 g,瓊脂1.5%,CMC-Na 0.5%,pH值調(diào)節(jié)至7.0。
纖維素篩選培養(yǎng)基(1 L):在上述纖維素酶富集培養(yǎng)基中加入酵母粉1 g。
發(fā)酵液體培養(yǎng)基(1 L):酵母粉5 g,NaCl 10 g,蛋白胨10 g,纖維素0.1%,pH調(diào)節(jié)至7.4。
iCycler型PCR儀:美國(guó)伯樂公司;SKY2102C型恒溫?fù)u床:上海蘇坤實(shí)業(yè)有限公司;UV-1700型紫外分光光度儀:日本島津公司;SW-CJ-2FD型超凈工作臺(tái):蘇州凈化設(shè)備有限公司;5415D型臺(tái)式高速離心機(jī):德國(guó)Eppendorf公司。
1.3.1 產(chǎn)纖維素酶菌株初篩
稱取土壤樣品1 g,添加到100 mL無菌水中充分混勻,然后按10倍稀釋法依次添加無菌水稀釋成10-3、10-4、10-5、10-6的菌懸液。取10-4、10-5、10-63個(gè)稀釋度的菌懸液各0.1 mL涂布于纖維素富集培養(yǎng)基平板上,置入28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)。
1.3.2 產(chǎn)纖維素酶菌株復(fù)篩
挑取單一菌落接種于纖維素篩選培養(yǎng)基上,置入28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)。待長(zhǎng)出菌落后,向培養(yǎng)皿中加入剛果紅染液染色10 min,倒去染液,再加入脫色液浸泡5 min進(jìn)行脫色處理,依據(jù)透明圈直徑和菌落直徑比值的大小篩選高產(chǎn)纖維素酶菌株[8]。
1.3.3 粗酶液的制備
將分離得到的菌落接種于25 mL液體發(fā)酵培養(yǎng)基中,于28 ℃、180 r/min搖床中進(jìn)行搖瓶發(fā)酵90 h;將所得發(fā)酵液進(jìn)行4 ℃、5 000 r/min離心10 min,收集上清液作為粗酶液,用于測(cè)定纖維素酶的活力。
1.3.4 纖維素酶酶活力測(cè)定
參照穆春雷等[9]所述的方法,并加以適當(dāng)修改,測(cè)定樣品的纖維素酶酶活力。
以50 mL 5 g/L CMC-Na(pH 8.0的磷酸緩沖液配制)為底物,加入50 mL酶液,35 ℃水浴反應(yīng)30 min后,加入100 mL DNS顯色液,沸水浴煮5 min,取出后在流水下迅速冷卻后定容至1 mL搖勻,在波長(zhǎng)540 nm處測(cè)定吸光度值。在此實(shí)驗(yàn)條件下,1 mL酶液每分鐘產(chǎn)生1 μmol還原糖的酶量作為1個(gè)酶活單位,用U/mL表示。
1.3.5 細(xì)菌的分子鑒定
以TIANGEN基因組純化試劑盒提取待測(cè)菌株基因組DNA,用16S rDNA 通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)體系:1 μL模板DNA,引物27 F(5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3')和1492 R(5'-TAC GGY TAC CTT GTT ACG ACT T-3')各0.5 μL,4 μL dNTP、5 μL 10×PCR Buffer,3 μL Mg2+,0.5 μL rTaq,35.5 μL雙蒸水。
PCR反應(yīng)程序:94 ℃、3 min,94 ℃、30 s,65 ℃、30 s,72 ℃、1.5 min,32個(gè)循環(huán)后,72 ℃延伸7 min,4 ℃保存。產(chǎn)物送至南京金斯瑞生物技術(shù)公司進(jìn)行序列測(cè)定,并通過Genbank核酸數(shù)據(jù)庫進(jìn)行同源比對(duì)分析,確定待測(cè)菌株分類地位。
1.3.6 搖瓶產(chǎn)酶研究
將菌種接種于50 mL pH 8.0的產(chǎn)酶發(fā)酵培養(yǎng)基中,置于25 ℃、180 r/min 搖床培養(yǎng)4 d,按時(shí)測(cè)量液體培養(yǎng)基中菌株的OD600nm值并按DNS法[10-11]測(cè)定其酶活力。
1.3.7 酶學(xué)性質(zhì)研究
酶的最適溫度測(cè)定是按照酶活測(cè)定方法,取適當(dāng)稀釋的酶液分別在20 ℃、30 ℃、35 ℃、40 ℃、45 ℃、50 ℃條件下測(cè)定相對(duì)酶活(%)。酶的熱穩(wěn)定性測(cè)定是將酶液在以上不同溫度條件下保溫1 h,迅速冷卻后,參照1.3.4酶活測(cè)定方法測(cè)定殘余酶活力(%)。
酶的最適pH值測(cè)定是按照酶活測(cè)定方法,以不同緩沖液(pH值3.0~5.0的醋酸-醋酸鈉緩沖液,pH值5.5~8.0的磷酸鹽緩沖液,pH值8.5~11.0為甘氨酸-氫氧化鈉緩沖液)校準(zhǔn)發(fā)酵液的pH值,在酶反應(yīng)的最適溫度條件下測(cè)定酶活性,以最高酶活為100%,參照1.3.4酶活測(cè)定方法計(jì)算各反應(yīng)體系相對(duì)酶活。
酶促進(jìn)劑與抑制劑研究是在相同條件下,向酶液中分別加入不同的離子,包括Li2+、K+、Rb2+、Zn2+、Cu2+、Ca2+、Ni2+、Mn2+、Co2+、十二烷基磺酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、(NH4)Cl和乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA),使其終濃度為0.1 mmol/L,同時(shí)以未處理的酶液作為100%對(duì)照,在酶反應(yīng)的最適pH值和最適溫度的條件下測(cè)定各離子對(duì)酶活力的影響,以殘余酶活(%)表示。
從青海茶卡鹽湖地區(qū)土壤中所分離的菌株,其菌落形態(tài)如圖1所示,菌落呈淡黃色、圓形、凸起、表面光滑、邊緣整齊。菌株水解圈如圖2所示,菌株在纖維素篩選培養(yǎng)基上形成明顯的透明水解圈,說明其具有良好的降解纖維素能力。根據(jù)形態(tài)特征,結(jié)合16S rDNA序列分析數(shù)據(jù),將該菌株歸為青海瓊斯氏菌屬(Jonesia quinghaiensissp.)[12]。
圖1 菌株的菌落形態(tài)Fig.1 The colony morphology of strains
圖2 篩選菌株的水解圈大小Fig.2 The hydrolyzation circle of screened strains
對(duì)所分離菌種進(jìn)行生長(zhǎng)曲線繪制,并測(cè)定發(fā)酵過程中的纖維素酶活力,結(jié)果如圖3所示。
圖3 菌株的發(fā)酵產(chǎn)酶曲線Fig.3 Enzyme production curve of strain
由圖3可知,該菌的各個(gè)生長(zhǎng)階段比較明顯。菌體生長(zhǎng)的延滯時(shí)間較短,13 h后逐步進(jìn)入生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期;培養(yǎng)50 h后,菌體生長(zhǎng)達(dá)到穩(wěn)定期,并于70 h后開始進(jìn)入衰退期。相對(duì)酶活曲線顯示,產(chǎn)酶量與細(xì)菌生長(zhǎng)基本保持同步,二者的關(guān)系表現(xiàn)為耦聯(lián)型,即伴隨菌體快速生長(zhǎng)纖維素酶呈積累式增長(zhǎng),菌體生長(zhǎng)近穩(wěn)定期時(shí),纖維素酶酶活力達(dá)最大值,為0.3 U/mL。
2.3.1 酶的最適溫度與熱穩(wěn)定性
圖4 反應(yīng)溫度對(duì)相對(duì)酶活的影響Fig.4 Effect of temperature on relative enzyme activity
在不同反應(yīng)溫度中分別測(cè)定酶液的相對(duì)酶活,結(jié)果如圖4所示。
由圖4可知,當(dāng)反應(yīng)溫度處于25~45 ℃時(shí),酶活性表現(xiàn)出較高水平,能維持50%以上的酶活力,其最適反應(yīng)溫度為35 ℃,酶活力達(dá)到0.25 U/mL,具有常溫催化水解纖維素的能力。
將酶液置于在不同反應(yīng)溫度中保溫1 h,迅速冷卻后測(cè)定方法測(cè)定其殘余酶活,結(jié)果如圖5所示。
圖5 溫度對(duì)酶穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of temperature on enzyme stability
由圖5可知,該酶在45 ℃時(shí)具有一定的耐受性,保溫1 h仍具有60%以上的活力,而超過50 ℃酶活力迅速下降,僅維持原酶活的20%左右。
2.3.2 酶的最適pH值
在不同pH值緩沖溶液中分別測(cè)定酶液的相對(duì)酶活,結(jié)果如圖6所示。
圖6 pH值對(duì)相對(duì)酶活的影響Fig.6 Effect of pH on relative enzyme activity
由圖6所示,該酶的最適反應(yīng)pH值為8.0,在pH值6.0~10.0的范圍內(nèi)具有較高的活性,pH值范圍較廣泛。
2.3.3 酶促進(jìn)劑與抑制劑研究
在pH值8.0和最適溫度35 ℃的條件下測(cè)定各離子對(duì)酶活力的影響,結(jié)果見圖7。
由圖7可知,金屬離子Ca2+、Zn2+對(duì)該酶有較強(qiáng)的促進(jìn)作用,均在150%以上;Ni2+、K+、Li+、Rb2+對(duì)酶也有不同程度的促進(jìn)作用;而Mn2+、Cu2+、Co2+對(duì)酶活力有較強(qiáng)的抑制作用,其余離子對(duì)酶的影響不明顯。
圖7 不同離子對(duì)相對(duì)酶活的影響Fig.7 Effect of different ions on relative enzyme activity
本研究以纖維素為唯一碳源的選擇性培養(yǎng)基進(jìn)行富集,從青海省茶卡鹽湖湖灘土壤中分離得到一株產(chǎn)纖維素酶菌株。經(jīng)形態(tài)觀察結(jié)合16S rDNA序列測(cè)定發(fā)現(xiàn),該菌株歸屬于青海瓊斯氏菌屬(Jonesia quinghaiensissp.)[13-14]。
搖瓶產(chǎn)酶試驗(yàn)表明,該菌株在接種后45 h達(dá)到生長(zhǎng)穩(wěn)定期,酶活伴隨著菌體生長(zhǎng)不斷上升,在45 h時(shí)達(dá)到最高值,此時(shí)酶活力為0.3 U/mL。酶學(xué)性質(zhì)的初步研究顯示,該菌株產(chǎn)生纖維素酶的最適反應(yīng)pH為8.0,在pH 8.0~9.0之間都能保持較高的酶活;最適反應(yīng)溫度為35 ℃,對(duì)50 ℃以上的高溫較為敏感。二價(jià)金屬離子Ca2+、Zn2+對(duì)該酶有明顯的促進(jìn)作用,Mn2+、Cu2+、Co2+對(duì)酶活力有較強(qiáng)的抑制作用。
纖維素酶分解菌所產(chǎn)生的酶有很多重要的應(yīng)用價(jià)值,但酶促反應(yīng)溫度水平偏高,多處于50~60 ℃之間,在工業(yè)應(yīng)用中需要耗時(shí)、耗能進(jìn)行加熱或冷卻處理[4,15]。該酶具有較高的離子耐受性,催化反應(yīng)溫度接近于酵母生長(zhǎng)發(fā)酵溫度(30 ℃),適用于同步糖化發(fā)酵(simultaneous saccharification and fermentation,SSF)工藝的開發(fā)和利用研究。因而,該產(chǎn)酶菌株具有良好的開發(fā)應(yīng)用前景,對(duì)該酶進(jìn)行深入而細(xì)致的研究,是尋找和提升生物工業(yè)領(lǐng)域技術(shù)的重要手段,也將為研究開發(fā)節(jié)能、高效的工業(yè)用酶奠定理論基礎(chǔ)。
[1]ZHANG Y H P.Reviving the carbohydrate economy via multi-product lignocellulose biorefineries[J].J Ind Microbiol Biot,2008,35(5):367-375.
[2]鄧天福,杜開書,李廣領(lǐng).纖維素酶及其在釀造業(yè)中的應(yīng)用[J].中國(guó)釀造,2011,30(12):17-19.
[3]SERVICE R F.Cellulosic ethanol:biofuel researchers prepare to reap a new harvest[J].Science,2007,315(5818):1488-1491.
[4]GERDAY C.Fundamentals of cold-active enzymes[M].New York:Springer,2014.
[5]于 鵬,劉靜雯.微生物適冷酶及其應(yīng)用研究新進(jìn)展[J].微生物學(xué)雜志,2014,34(2):77-81.
[6]KUDDUS M,RAMTEKE P W.Recent developments in production and biotechnological applications of cold-active microbial proteases[J].Crit Rev Microbiol,2012,38(4):330-338.
[7]周寧一.青藏高原微生物多樣性研究[J].微生物學(xué)通報(bào),2014,41(11):2378.
[8]KIM J M,KONG I S,YU J H.Molecular cloning of an endoglucanase gene from an alkalophilicBacillussp.and its expression inEscherichia coli[J].Appl Environ Microbiol,1987,53(11):2656-2659.
[9]穆春雷,武曉森,李術(shù)娜.低溫產(chǎn)纖維素酶菌株的篩選、鑒定及纖維素酶學(xué)性質(zhì)[J].微生物學(xué)通報(bào),2013,40(7):1193-1201.
[10]謝夏陽.青霉纖維素酶液體發(fā)酵工藝條件的優(yōu)化[J].中國(guó)釀造,2013,32(1):104-106.
[11]陸文清,劉興海,邢建軍.飼料添加劑-纖維素酶活力的測(cè)定[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2005.
[12]SCHUMANN P,CUI X L,STACKEBRANDT E,et al.Jonesia quinghaiensissp.nov.,a new member of the suborder Micrococcineae[J].Int J Syst Evol Micr,2004,54(6):2181-2184.
[13]陳雅娟,董 園,蘆志龍,等.堿性纖維素酶產(chǎn)生菌株的篩選及其酶學(xué)性質(zhì)研究[J].廣西科學(xué),2014,21(1):28-33.
[14]李文鵬,向 蘭.瓊斯氏菌(Jonesiasp.)YNUCC0043 耐堿木聚糖酶的特性[J].生物技術(shù)通報(bào),2006(S1):459-463.
[15]CUNHA E,HATEM C L,BARRICK D.Natural and designed enzymes for cellulose degradation,advanced biofuels and bioproducts [M].New York:Springer 2013.