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牛Wif1基因印記及甲基化調(diào)控印記的分子機制研究

2015-09-17 07:35:32吳茜紅張明月楊文志吳國江李世杰
畜牧獸醫(yī)學(xué)報 2015年8期
關(guān)鍵詞:合子印記等位基因

吳茜紅,張明月,楊文志,吳國江,李世杰

(河北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,保定071000)

基因組印記(Genomic imprinting)是一種非孟德爾遺傳現(xiàn)象,是由于來自親本雙方的等位基因不對稱表觀遺傳修飾而造成的,基因表達具有親本特異性[1]。DNA甲基化是基因組印記的一種主要調(diào)控方式?;蚪M印記與生物進化、動物生長發(fā)育以及腫瘤發(fā)生都有密切關(guān)系。印記基因的研究主要集中在人類和鼠中,被鑒定的印記基因已經(jīng)超過220個(http://igc.otago.ac.nz/home.html);而在牛中,由于缺少序列及多態(tài)性信息,被鑒定的印記基因只有20個。

Wnt抑制因子1(Wnt inhibitory factor 1,Wif1)是無翼信號通路(Wingless-type,Wnt)的胞外抑制蛋白,可直接和 Wnt蛋白結(jié)合,從而抑制Wnt信號的傳導(dǎo)。Wnt信號通路具有傳遞生長刺激信號的作用,該通路的異常激活可引起細胞異常增殖、分化而導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生[2]。Wif1基因首先在人的視網(wǎng)膜組織中發(fā)現(xiàn),在人的胚胎滋養(yǎng)層中表現(xiàn)為一個父源表達的印記基因[3-4]。定位于人12號染色體。而在牛中,其印記狀態(tài)和調(diào)控的分子機理還沒有被研究。本研究在分析Wif1基因在牛不同組織中印記狀態(tài)的基礎(chǔ)上,對Wif1基因啟動子區(qū)等位基因特異的甲基化狀態(tài)進行了分析,以期為豐富?;蚪M印記及揭示W(wǎng)if1基因印記的調(diào)控分子機制提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

32頭成年的荷斯坦奶牛(Holstein)的組織樣本,包括心、肝、脾、肺、腎、骨骼肌、皮下脂肪等組織采自當(dāng)?shù)赝涝讏?,裝入編號的采樣袋中,立即投入液氮,-70℃冰箱保存,以備后續(xù)試驗用。

1.2 RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄

利用TRIzol試劑盒提取3頭牛的心、肝、脾、肺、腎、肌肉和脂肪組織的總RNA,用無RNA酶的DNase-Ⅰ去除可能的DNA污染,-70℃保存?zhèn)溆谩@肨ransGen反轉(zhuǎn)錄試劑盒(TransGen,China)進行cDNA的合成。20μL反應(yīng)體系中含有大約4μg的RNA,反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)程序按廠家提供的產(chǎn)品說明書進行,體系加好后輕輕混勻,65℃ 變性10min,打開RNA的二級結(jié)構(gòu),然后在每個反應(yīng)體系中加入1μL的 EasyScriptTM RT/RI Enzyme Mix,42℃孵育30min,70℃保溫15min,終止反應(yīng),cDNA于-20℃保存待用。

1.3 Wif1基因在不同組織中的表達譜分析

RT-PCR用來檢測Wif1基因在牛組織中的表達模式。依照Wif1基因序列(GenBank accession No.NM_001075996.1),設(shè)計牛Wif1基因的特異性引 物 Wif-1F (5′-CCAACAAATGCCAGTG-3′)和 Wif-1R (5′-TCAAGCCAATGCCAAC-3′)用 于擴增812bp跨內(nèi)含子的片段。利用GAPDH(GenBank accession No.BTU85042)跨內(nèi)含子的引物 Gapdh-F(5′-GCACAGTCAAGGCAGAGAAC-3′)和 Gapdh-R(5′-GCGTGGACAGTGGTCATAAG-3′)擴增367bp大小的片段作為內(nèi)參。反應(yīng)體系為25μL:上下游引物(10μmol·L-1)各1μL,0.5μL cDNA 模板,10μL 雙蒸水和12.5μL ES Tap MasterMix(CWBio,China)。擴增條件:94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,44℃退火30s,72℃延伸35s,35個循環(huán);72℃總延伸10min。擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳進行檢測,膠回收后送華大基因公司測序。

1.4 雜合子個體篩選

利用苯仿抽提法提取32頭荷斯坦奶牛肝組織的 DNA。 引 物 Wif-2F (5′-CCCACCTGAATCCAAT-3′)和 Wif-2R (5′-TCAAGCCAATGCCAAC-3′)擴增667bp DNA片段,通過PCR產(chǎn)物直接測序法尋找SNP,篩選雜合子。除0.5μL DNA作為模板外,其他PCR反應(yīng)體系同1.3RT-PCR。擴增條件:94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,44℃退火30s,72℃延伸30s,35個循環(huán);72℃總延伸10min。PCR產(chǎn)物純化后送華大基因公司測序。

1.5 Wif1基因的印記狀態(tài)分析

被鑒定為雜合子的動物用于等位基因特異的表達狀態(tài)分析。提取雜合子牛組織的RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA、RNA提取和反轉(zhuǎn)錄程序同1.2,用得到的cDNA為模板,引物 Wif-1F和 Wif-1R擴增目的片段,將PCR產(chǎn)物膠回收后直接進行測序。

1.6 Wif1基因啟動子區(qū)CpG島預(yù)測及雜合子篩選

通過 MethPrimer 在 線 軟 件 (http://www.urogene.org/methprimer),預(yù)測牛Wif1基因第一外顯子及上游1kb序列上的CpG島(Criteria used:Island size>100,GC Percent>50.0,Obs/Exp>0.6)。為了尋找啟動子區(qū)的雜合位點,設(shè)計引物 Wif1-3F(5′-AACCCTCTGACCGTTGTG-3′)和 Wif1-3R (5′-GGCATTTGGGAAGAAGTAG-3′)擴增32頭牛DNA。PCR反應(yīng)體系為25μL:0.5μL DNA模板,上下游引物(10μmol·L-1)各1 μL,10μL 雙蒸水和12.5μL ES Tap MasterMix(CWBio,China)。擴增條件:94℃預(yù)變性5min;94℃30s,52℃30s,72℃30s,共35個循環(huán);72℃延伸10min。膠回收PCR產(chǎn)物后直接進行測序。得到的雜合子用于等位基因特異的甲基化分析。

1.7 亞硫酸氫鹽處理、引物設(shè)計及PCR擴增

按照DNA甲基化試劑盒(Zymo,USA)說明書,將1.6中篩選到的雜合子牛的約500ng肺和肝組織DNA進行亞硫酸氫鹽處理。利用在線軟件(http://www.urogene.org/methprimer),針 對Wif1基因亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)換后的DNA序列設(shè)計甲基 化 特 異 性 引 物 (BSP)Wif1-MF(5′-TTGGTTAGAGGTAGCGTAAGT-3′)和 Wif1-MR (5′-AACCTCTTAACTCTAATACGAAT-3′)擴增Wif1基因啟動子區(qū)410bp片段。反應(yīng)體系為25μL:1μL亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)換后的DNA模板,上下游引物(10 μmol·L-1)各1μL,9.5μL雙蒸水和12.5μL ES Tap MasterMix(CWBio,China)。擴增條件:94℃預(yù)變性5min;94℃30s,52℃30s,72℃30s,共35個循環(huán);72℃延伸10min。第一輪PCR產(chǎn)物稀釋100倍后,取1μL作為第二輪模板。第二輪PCR的引物、體系和擴增條件與第一輪相同。將第二輪PCR產(chǎn)物在1.5%瓊脂糖凝膠中電泳檢測。

1.8 克隆、DNA測序和數(shù)據(jù)分析

利用DNA 回收試劑盒(Cwbio,China)對1.7中第二輪擴增產(chǎn)物進行膠回收,純化后的片段與pMD19-T載體連接,轉(zhuǎn)化后涂板培養(yǎng)。每一個體各挑取18~22個單一的陽性克隆送華大科技公司測序。計算每一個體中mCpG占全部CpG的百分比。SPSS軟件分析等位基因間甲基化水平的差異顯著性。

2 結(jié) 果

2.1 Wif1基因在不同組織中的表達

RT-PCR用于分析Wif1基因在牛7個組織中的表達,包括心、肝、脾、肺、腎、肌肉和脂肪。引物Wif-1F和 Wif-1R擴增來自3頭牛組織的RNA,GAPDH基因作為內(nèi)參。結(jié)果在7個被檢測的組織中,Wif1基因均擴增得到812bp大小的條帶(圖1),測序驗證為目的產(chǎn)物,表明Wif1基因在被檢測的組織中均表達。

圖1 牛Wif1基因各個組織中的RT-PCR結(jié)果Fig.1 RT-PCR results of Wif1gene from different tissues of cattle

2.2 Wif1基因雜合子個體篩選

用位于Wif1基因外顯子8上的引物 Wif-2F和Wif-2R擴增來自32頭牛肝組織的DNA,得到667bp的DNA片段,PCR產(chǎn)物回收后直接測序(圖2),發(fā)現(xiàn)一個A/C雜合位點,位于該基因的第1 759個核苷酸處(c.1759A>C),鑒定的雜合子牛用于印記狀態(tài)分析。

2.3 Wif1基因印記狀態(tài)分析

圖2 牛DNA測序法確定Wif1基因的雜合子個體Fig.2 Identification of an SNP (A/C)in the bovine Wif1gene by sequencing

通過比較雜合子動物中g(shù).1759A>C SNP位點在DNA PCR和RT-PCR產(chǎn)物直接測序的峰圖來確定印記基因的表達狀態(tài)。提取3頭g.1 7 5 9A>C SNP位點為雜合的動物的組織RNA,RT-PCR產(chǎn)物直接測序,SNP位點附近峰圖見圖3,發(fā)現(xiàn)Wif1基因只有在肺中為單等位基因表達(單峰),說明Wif1基因在肺中是印記的;而在心、肝、脾、腎、肌肉、脂肪中為雙等位基因表達(雙峰),說明Wif1基因在檢測的6個組織中是非印跡的。

圖3 測序法分析Wif1基因等位基因特異性的表達模式Fig.3 Allele-specific expression analysis of Wif1gene in cattle by sequencing directly

2.4 Wif1等位基因特異的甲基化狀態(tài)分析

為了確定DNA甲基化在Wif1基因組織特異性印記中的可能作用,分析了Wif1基因啟動子區(qū)在單等位基因表達的組織(肺)和雙等位基因表達的組織(肝)中的等位基因特異的甲基化狀態(tài)。用位于Wif1基因啟動子區(qū)的引物 Wif-3F和 Wif-3R擴增來自32頭牛肝組織的DNA,PCR產(chǎn)物回收后直接測序,發(fā)現(xiàn)一個A/G雜合位點,位于該基因的第115個核苷酸處(g.115A>G),g.115A>G SNP位點用于區(qū)分等位基因的兩條鏈。用甲基化特異引物(Wif1-MF和 Wif1-MR)擴增包括g.115A>G在內(nèi)的Wif1基因啟動子416bp的區(qū)域,包括了29個CpG位點,軟件預(yù)測每個CpG位點上可能存在的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合的位點,發(fā)現(xiàn)其中14個CpG位點(第1、2、3、4、5、6、7、8、10、11、15、18、24和25)上存在的7種轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合的位點(圖4),即ATF(TGACGT)、CREB(KWCGTCA)、GCF (SCGSSSC)、AP2(CCCMNSSS)、SP1 (GGCGGG)、HSV_IE_repeat(GCGGAA)、EIIaE-A(AAGGGCGC)。

分析3頭雜合子牛(7號、25號和32號)肝和肺組織中等位基因特異的甲基化狀態(tài)。根據(jù)在SNP位點的堿基命名來自親本等位基因的兩條鏈,分別為G-鏈和A-鏈(圖5)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在單等位基因表達的肺中,兩條親本鏈G-鏈和A-鏈的平均甲基化水平分別為38%和41%,差異不顯著(P>0.05);在雙等位基因表達的肝中,G-鏈(42%)和 A-鏈(38%)的平均甲基化水平也無顯著差異(P>0.05)。進一步對肺和肝中每個CpG位點兩條親本鏈G-鏈和A-鏈之間的平均甲基化率進行差異顯著性分析 (圖6),發(fā)現(xiàn)在肺中有10個CpG位點A鏈與G鏈甲基化率存在顯著差異,其中第2、7、13、17個CpG位點差異極顯著(P<0.01),第1、6、9、19、23、29個CpG位點的差異顯著(P<0.05);在雙等位基因表達的肝中,有4個CpG位點A鏈與G鏈甲基化率存在顯著差異,其中第7個CpG位點差異極顯著(P<0.01),第13、23、和29個CpG位點差異顯著(P<0.05)。與肝相比,肺中8個CpG位點(第1、2、6、9、17、19、23和29)兩條親本鏈甲基化率存在顯著差異,其中3個CpG位點(第1、2和6)位于轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點上,由于單個CpG位點的甲基化變化會影響轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合,推測這3個CpG位點的甲基化可能參與調(diào)控Wif1基因的組織特異性印記。

3 討 論

WIF1是近年來發(fā)現(xiàn)的腫瘤抑制因子,通過與Wnt蛋白直接結(jié)合抑制Wnt信號通路,從而抑制癌細胞的干性并且促使癌細胞老化。本研究分析了Wif1基因在牛7個組織中mRNA轉(zhuǎn)錄情況、印記狀態(tài)以及啟動子區(qū)DNA甲基化的狀態(tài)。

Wif1基因的表達因物種、發(fā)育階段而有差異。J.C.Hsieh等[3]在蟾蜍胚胎發(fā)育的神經(jīng)胚期檢測到了Wif1基因的mRNA,而在蟾蜍和斑馬魚的胚胎原腸胚期未能檢測到Wif1基因的表達。Wif1基因在成年小鼠的心臟和肺臟中強表達,而在腦和眼中表達水平較低。D.D.Hunter等[5]發(fā)現(xiàn)在人的視網(wǎng)膜、軟骨、肺和大腦內(nèi)Wif1顯著表達;Wif1分布在小鼠神經(jīng)系統(tǒng)的很多不同區(qū)域,其中丘腦和嗅球內(nèi)表達顯著。C.Wissmann等[6]使用多克隆抗體的免疫組織化學(xué)分析顯示,在前列腺、乳腺、肺和膀胱的正常上皮細胞核周細胞質(zhì)Wif1高表達。本研究以RT-PCR方法分析了牛中Wif1基因在心、肝、脾、肺、腎、肌肉和脂肪組織中mRNA的轉(zhuǎn)錄情況,發(fā)現(xiàn)Wif1基因在7個被測組織中均表達。研究結(jié)果表明,Wif1基因在多個物種中廣泛表達于多種組織中。

圖4 甲基化分析的Wif1基因啟動子區(qū)及預(yù)測的每個CpG位點上的轉(zhuǎn)錄因子Fig.4 The promoter region of Wif1gene analysed by bisulfite sequencing and the transcription factors predicted on each CpG sites

大部分印記基因在哺乳動物的胚胎和胎盤發(fā)育中起重要作用[7-10]。由于胎盤是最早印記的組織之一[11]。Wif1基因是在研究人胎盤腫瘤抑制基因時,被發(fā)現(xiàn)在人妊娠前3月胎盤滋養(yǎng)層細胞中表現(xiàn)為父源表達的印記基因[4]。關(guān)于Wif1基因在其他的物種和組織中的印記狀態(tài)尚未報道?;赟NP位點的RT-PCR產(chǎn)物直接測序法是一種分析印記基因的有效方法,前期研究中應(yīng)用此方法確定了Gtl2和Meg8在牛中的印記狀態(tài)[12-13]。本研究發(fā)現(xiàn)Wif1基因在牛中的印記具有組織特異性,在被分析的7個組織中,Wif1基因只在牛的肺中是印記的,表現(xiàn)為單等位基因表達;而在心、肝、脾、腎、肌肉、脂肪中表現(xiàn)為雙等位基因表達。表明Wif1基因的基因組印記具有物種特異性和組織特異性。

圖5 3頭雜合子牛(7、25和32號)肺和肝啟動子區(qū)甲基化狀態(tài)和甲基化水平Fig.5 Methylation level and status of promoter region in lung and liver tissues of 3heterozygous cattle(7,25,32)

DNA甲基化作為一種重要的表觀遺傳修飾方式,通過改變轉(zhuǎn)錄因子與DNA的結(jié)合,從而調(diào)控基因的組織特異表達、基因組印記和動物的正常發(fā)育[14-15]。Wif1基因啟動子區(qū)域的甲基化調(diào)控Wif1基因的表達,大量的研究證明Wif1基因的啟動子高甲基化與消化系統(tǒng)惡性腫瘤、鼻咽癌、膀胱癌、乳腺癌等惡性腫瘤有密切關(guān)系[16-22]。5-氮-2′-脫氧胞苷(5-aza-dC)是一種甲基化抑制劑,在 DNA 復(fù)制過程中,5-aza-dC與DNA甲基轉(zhuǎn)移酶形成一種共價復(fù)合物,抑制甲基轉(zhuǎn)移酶的甲基轉(zhuǎn)移活性,從而實現(xiàn)去甲基化功能。在膀胱癌等細胞系中加入5-aza-dC,可使Wif1 基因的 表 達恢復(fù)正常[23-26]。本研究中,為了探究甲基化在Wif1基因的組織特異性印記中可能發(fā)揮的作用,分析了啟動子區(qū)29個CpG位點的甲基化狀態(tài),發(fā)現(xiàn)肺中9個CpG位點的甲基化水平發(fā)生改變。對其轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點的預(yù)測發(fā)現(xiàn),該區(qū)域存在多種轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點,這些轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控著基因轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄表達水平的高低。如CREB是一種與細胞周期調(diào)控及記憶形成有關(guān)的核轉(zhuǎn)錄增強因子[27-28]。Sp1是廣泛和系統(tǒng)的生長調(diào)控因子之一,它參與了細胞生長和分化,對腫瘤的促進作用與其參與眾多癌基因、抑癌基因、細胞周期調(diào)控分子、生長相關(guān)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路分子的調(diào)節(jié)密切相關(guān)[29]。轉(zhuǎn)錄因子 AP-2家族是一類DNA 結(jié)合蛋白,以二聚體形式結(jié)合到DNA豐富GC的元件上,在基因表達調(diào)控、細胞分化、胚胎發(fā)育及腫瘤發(fā)生中起著極為重要的作用。由于單個CpG的甲基化可能會影響轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合,所以差異甲基化的CpG位點可能參與了Wif1基因的組織特異性印記。

圖6 肺和肝中每個CpG位點的甲基化率Fig.6 Methylation rate of each CpG site in lung and liver tissues

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