左恩俊,許 諾,胡書(shū)海
(1.大連醫(yī)科大學(xué) 口腔醫(yī)學(xué)院 修復(fù)工藝教研室, 遼寧 大連 116044;2.大連醫(yī)科大學(xué) 中山學(xué)院, 遼寧 大連 116085)
論 著
種植體周?chē)l溝液中TNF-α和MMP-8水平的研究
左恩俊1,許 諾2,胡書(shū)海1
(1.大連醫(yī)科大學(xué) 口腔醫(yī)學(xué)院 修復(fù)工藝教研室, 遼寧 大連 116044;2.大連醫(yī)科大學(xué) 中山學(xué)院, 遼寧 大連 116085)
目的 探討種植體周?chē)l溝液中腫瘤壞死因子-α(TNF-α)和基質(zhì)金屬蛋白酶-8(MMP-8)的水平與種植體周?chē)椎年P(guān)系。方法 選擇2012年5月至2014年5月在大連醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院行OSSTEM種植體種植修復(fù)的患者36例作為研究對(duì)象(種植體48顆),根據(jù)種植體周?chē)闆r將其分為健康種植體組(38顆)和炎癥種植體組(10顆),將對(duì)側(cè)同名健康天然牙作為對(duì)照組(48顆)。收集各組種植體和天然牙周?chē)l溝液,運(yùn)用ELISA法檢測(cè)其中TNF-α和MMP-8的濃度,同時(shí)檢測(cè)牙周探診深度(PD)和牙齦出血指數(shù)(SBI)。分析PD、SBI值與齦溝液中TNF-α、MMP-8水平的相關(guān)性。結(jié)果 炎癥種植體組PD、SBI以及齦溝液中TNF-α和MMP-8水平均高于健康種植體組和健康天然牙組,差異具有顯著性意義(P<0.05)。SBI、PD與TNF-α、MMP-8水平均呈正相關(guān)關(guān)系(P<0.01)。結(jié)論 種植體周?chē)l溝液中TNF-α和MMP-8水平和種植體周?chē)酌芮邢嚓P(guān),可在一定程度上反映種植體周?chē)M織的健康狀態(tài)。
種植體周?chē)? 腫瘤壞死因子-α; 基質(zhì)金屬蛋白酶-8
種植修復(fù)技術(shù)在過(guò)去的30年間取得了巨大的發(fā)展,已成為牙列缺損和牙列缺失患者重要的修復(fù)方式,其10年的成功率已達(dá)到95%以上[1]。然而種植修復(fù)后的生物學(xué)并發(fā)癥如:種植體周?chē)つぱ?、種植體周?chē)椎热跃哂休^高的普遍性[2-3]。種植體周?chē)资怯捎诩?xì)菌聚集和機(jī)體免疫反應(yīng)引起的種植體周?chē)洝⒂步M織的炎癥反應(yīng)[4],進(jìn)而破壞種植體周?chē)纳掀し忾],形成深牙周袋,最終導(dǎo)致進(jìn)行性骨吸收。這種由細(xì)菌感染導(dǎo)致的炎癥發(fā)展過(guò)程受到細(xì)胞因子如:腫瘤壞死因子-α(TNF-α)等的調(diào)控,這些細(xì)胞因子通過(guò)激活膠原酶如:基質(zhì)金屬蛋白酶-8(MMP-8)等通過(guò)骨保護(hù)素/核因子κB受體活化因子配體(OPG/RANKL)系統(tǒng)刺激破骨細(xì)胞分化來(lái)導(dǎo)致組織的破壞和骨質(zhì)的吸收[5]。但目前尚無(wú)足夠的證據(jù)表明TNF-α和MMP-8與種植體周?chē)椎陌l(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。本研究檢測(cè)TNF-α和MMP-8在健康種植體、炎癥種植體和健康天然牙齦溝液中的表達(dá),初步探討TNF-α和MMP-8與種植體周?chē)椎年P(guān)系,為種植體周?chē)椎念A(yù)防、診斷、治療和預(yù)后提供檢測(cè)依據(jù)。
1.1 病例選擇
選擇2012年5月至2014年5月在大連醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院行OSSTEM種植體種植的患者36例作為研究對(duì)象(種植體48顆)。其中男25例,女11例,年齡23~65歲。病例納入標(biāo)準(zhǔn):無(wú)全身系統(tǒng)性疾?。粺o(wú)吸煙嗜好;婦女未妊娠;至少1個(gè)月內(nèi)未使用抗生素、免疫制劑及非甾體類(lèi)藥物;種植義齒無(wú)咬合創(chuàng)傷;依從性好,種植后能自覺(jué)進(jìn)行口腔衛(wèi)生的維護(hù);種植義齒行使功能3個(gè)月以上;患者知情同意。
1.2 臨床分組
根據(jù)種植體周?chē)闆r將其分為健康種植體組(38顆)和炎癥種植體組(10顆),將對(duì)側(cè)同名健康天然牙作為對(duì)照組(48顆)。健康天然牙:牙周探診深度(PD)≤3 mm,牙齦出血指數(shù)(SBI)<2;健康種植體:PD≤4mm,SBI<2;炎癥種植體:PD>4mm,SBI≥2。
1.3 研究方法
1.3.1 牙周狀況記錄:使用牙周探針輕緩地插入齦溝內(nèi),探針與牙體/種植體長(zhǎng)軸平行,緊貼牙根,保持不超過(guò)20 g的探診壓力。記錄種植體和同名健康牙的近中頰側(cè)、遠(yuǎn)中頰側(cè)、近中舌側(cè)、遠(yuǎn)中舌側(cè)4個(gè)位點(diǎn)的PD值。根據(jù)SBI記分方法:0=探診無(wú)出血;1=僅在探診處呈點(diǎn)狀出血;2=出血在齦溝內(nèi)成線(xiàn)狀;3=出血沿齦緣擴(kuò)展或溢出齦緣。檢查并記錄種植體和同名健康牙的SBI。
1.3.2 齦溝液的采集:將 Whatman Ⅲ號(hào)濾紙裁成寬 2 mm、長(zhǎng) 20 mm的紙條,置于干凈的容器中待用。用無(wú)菌干棉球擦干牙面,隔濕,去除較大的菌斑,輕吹牙齦,將制備好的濾紙條插入牙體/種植體頰側(cè)近遠(yuǎn)中、舌(腭)側(cè)近遠(yuǎn)中齦溝中,直到遇到輕微阻力為止,1 min 后取出。采集動(dòng)作輕柔避免對(duì)牙周組織造成機(jī)械損傷,任何被唾液和血液污染的濾紙條被遺棄,重新采集。即刻放入裝有300 μL PBS緩沖液的EP管中,每管皆含一個(gè)樣本的4條濾紙,-70 ℃冷凍保存。
1.3.3 齦溝液樣本的生化分析:樣本在常溫下解凍后,在高速臺(tái)式冷凍離心機(jī)上以5000 r/min的速度運(yùn)行15min,使其懸浮于溶液中的雜質(zhì)通過(guò)離心作用沉淀于 Ep 管底,然后用微量移液器取上清液100 μL分別加入另兩個(gè) Ep 管中,采用雙抗體夾心ELISA法,根據(jù)試劑盒操作方法和步驟檢測(cè)標(biāo)本中TNF-α和MMP-8的濃度。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
炎癥種植體組PD、SBI值及齦溝液中TNF-α和MMP-8水平均高于健康種植體組和健康天然牙組,差異具有顯著性意義(P<0.05)。健康種植體組與健康天然牙組的PD、SBI值以及齦溝液中TNF-α和MMP-8水平的差異均無(wú)顯著性意義(P>0.05)。見(jiàn)表1。
經(jīng)Spearman秩相關(guān)檢驗(yàn),臨床牙周指標(biāo)SBI、PD值與齦溝液中TNF-α、MMP-8水平均呈正相關(guān)(P<0.01)。見(jiàn)表2。
表1 各組牙周指數(shù)和齦溝液中TNF-α、MMP-8水平比較
表2 牙周指數(shù)和齦溝液中TNF-α、MMP-8水平的相關(guān)性分析
種植體周?chē)资侵赣绊懸呀?jīng)形成骨結(jié)合并行使功能的種植體周?chē)M織的炎性過(guò)程,與種植體周?chē)つぱ紫啾?,種植體周?chē)撞粌H涉及到周?chē)浗M織的炎癥,還可以導(dǎo)致種植體周?chē)С止墙M織不可逆性吸收,破壞已經(jīng)形成的骨結(jié)合,造成種植體的松動(dòng)、脫落[6]。種植體周?chē)资嵌嘁蛩氐母腥拘约膊?,其原因包括菌斑、過(guò)載和吸煙等,其中菌斑被認(rèn)為是種植體周?chē)鬃钪饕牟≡砸蛩豙7]。已有研究證實(shí),細(xì)菌表面抗原、毒素以及代謝產(chǎn)物都可以刺激宿主的機(jī)體產(chǎn)生相應(yīng)細(xì)胞因子,尤其是促炎癥反應(yīng)性細(xì)胞因子,如白細(xì)胞介素、腫瘤壞死因子、前列腺素等均可以造成骨質(zhì)吸收,進(jìn)而造成天然牙周?chē)M織的水腫、滲出、化膿,探診出血、探診深度增加,牙齒松動(dòng)直至脫落[8]。種植體周?chē)淄乐苎椎牟±磉^(guò)程相類(lèi)似,其齦溝液中促炎因子的種類(lèi)和含量會(huì)根據(jù)種植體周?chē)M織狀態(tài)的不同而改變,臨床醫(yī)生可以通過(guò)評(píng)價(jià)齦溝液中相應(yīng)的炎癥介質(zhì)作為種植體周?chē)M織健康狀況的診斷和治療預(yù)后的監(jiān)測(cè)指標(biāo)。TNF-α一方面可以直接激活骨髓中的破骨細(xì)胞前體,另一方面間接作用于OPG/RANKL系統(tǒng),導(dǎo)致牙周組織的破壞[9-10]。本項(xiàng)研究表明種植體周?chē)l溝液中TNF-α水平高于牙周健康的種植體和天然牙,且TNF-α水平與牙周探診深度和牙齦出血指數(shù)呈正相關(guān)關(guān)系,提示TNF-α在種植體周?chē)椎陌l(fā)生發(fā)展過(guò)程中起著重要作用,與Machtei等[11]和Venza等[12]的研究結(jié)果相一致?;|(zhì)金屬蛋白酶主要分為膠原酶、明膠酶、溶基質(zhì)蛋白酶等5種酶類(lèi),被認(rèn)為無(wú)論是在病理還是生理修復(fù)的情況下,都具有破壞幾乎所有細(xì)胞外基質(zhì)和基底膜分子的作用[13],膠原酶主要由MMP-1, MMP-8, MMP-13組成,并與牙周組織降解密切相關(guān),能特異地作用于構(gòu)成牙周支持組織主要組成部分的I、II、III型膠原,并且在牙周附著喪失,牙槽骨吸收和牙周疾病進(jìn)展中起著中心作用。種植體周?chē)难例l組織,纖維結(jié)締組織和骨組織中,Ⅰ型和Ⅲ型膠原纖維的含量最豐富,構(gòu)成了種植體周?chē)M織的主要成分。牙周病學(xué)研究中發(fā)現(xiàn),在無(wú)炎癥和輕度炎癥牙齦組織的齦溝滲出液中,這些膠原酶的活性和水平及膠原裂解產(chǎn)物要低于重癥炎癥部位,而且牙周組織的炎癥程度愈嚴(yán)重,齦溝液中MMP-8的水平和活性就愈高。Arakawa等[14]采用蛋白質(zhì)免疫印跡法(Western Blot)檢測(cè)種植體周?chē)l溝液中MMP的表達(dá),結(jié)果僅在重度種植體周?chē)l溝液中檢測(cè)到MMP-8,而MMP-1, MMP-13在正常組和輕、重種植體周?chē)l溝液中均未檢查到。而本文采取更為敏感的ELISA法作為MMP-8的檢測(cè)手段,實(shí)驗(yàn)各組均能夠檢測(cè)到MMP-8的表達(dá),同時(shí)隨著探診深度的增加,種植體周?chē)浗M織炎癥逐漸加重,骨吸收增高,齦溝液中MMP-8的含量不斷升高。提示病理狀態(tài)下MMP-8對(duì)Ⅰ型和Ⅲ型膠原纖維的降解是種植體周?chē)装l(fā)生機(jī)制中的關(guān)鍵因素。但有不同觀(guān)點(diǎn),Kuula等[15]對(duì)比研究了MMP-8基因敲除鼠和正常鼠在細(xì)菌感染導(dǎo)致的牙槽骨吸收的嚴(yán)重程度,結(jié)果MMP-8基因敲除鼠骨吸收要更加廣泛。從而認(rèn)為MMP-8伴隨種植體周?chē)装Y和骨吸收加劇而升高,是機(jī)體的一種保護(hù)機(jī)制,MMP-8能夠抑制骨吸收。但無(wú)論MMP-8的作用是保護(hù)還是破壞,MMP-8都可以作為活動(dòng)性種植體周?chē)椎臉?biāo)記。
TNF-α和MMP-8在種植體周?chē)椎陌l(fā)生和發(fā)展過(guò)程中的作用機(jī)制有待進(jìn)一步研究,以期在種植體周?chē)椎念A(yù)防、診斷和治療方面有所突破。
[1] Ravald N, Dahlgren S, Teiwik A,et al.Long-term evaluation of Astra Tech and Br?nemark implants in patients treated with full-arch bridges. Results after 12-15years[J]. Clin Oral Implants Res,2013,24(10):1144-1151.
[2] Koldsland OC, Scheie AA, Aass AM. Prevalence of peri-implantitis related to severity of the disease with different degrees of bone loss[J]. J Periodontol, 2010, 81(2):231-238.
[3] Mir-Mari J, Mir-Orfila P, Figueiredo R, et al. Prevalence of peri-implant diseases. A cross-sectional study based on a private practice environment[J]. J Clin Periodontol, 2012,39(5):490-494.
[4] 李德超,周彥鵬,王澤.種植體周?chē)谆颊啐l溝液中IL-18和MMP-13表達(dá)研究[J]. 中國(guó)實(shí)用口腔科雜志,2014,7(4):213-216.
[5] Boyce BF, Li P, Yao Z, et al. TNF-alpha and pathologic bone resorption[J]. Keio J Med,2005,54(3):127-131.
[6] Fonseca FJ, Moraes Junior M, Louren?o EJ, et al. Cytokines expression in saliva and peri-implant crevicular fluid of patients with peri-implant disease[J]. Clin Oral Implants Res,2014,25(2):68-72.
[7] Lamster IB. Evaluation of components of gingival crevicular fluid as diagnostic tests[J]. Ann Periodontol,1997,2(1):123-137.
[8] Dosseva-Panova VT, Popova CL, Panov VE. Subgingival microbial profile and production of proinflammatory cytokines in chronic periodontitis[J]. Folia Med (Plovdiv), 2014,56(3):152-160.
[9] Lachmann S, Kimmerle-Müller E, Axmann D, et al. Associations between peri-implant crevicular fluid volume, concentrations of crevicular inflammatory mediators, and composite IL-1A -889 and IL-1B +3954genotype. A cross-sectional study onimplant recalls patients with and without clinical signs of peri-implantitis[J].Clin Oral Implants Res,2007,18(2):212-223.
[10] Bostanci N, Ilgenli T, Emingil G, et al. Gingival crevicular fluid levels of RANKL and OPG in periodontal diseases: Implications of their relative ratio [J].J Clin Periodontol,2007,34(5):370-376.
[11] Machtei EE,Oved-Peleg E, Peled M.Comparison of clinical, radiographic and immunological parameters of teeth and different dental implant platforms[J].Clin Oral Implants Res,2006,17(6):658-665.
[12] Venza I, Visalli M, Cucinotta M, et al. Proinflammatory gene expression at chronic periodontitis and peri-implantitis sites in patients with or without type 2 diabetes[J]. J Periodontol, 2010,81(1):99-108.
[13] Giannobile WV. Host-response therapeutics for periodontal diseases[J]. J Periodontol,2008,79(8):1592-1600.
[14] Arakawa H, Uehara J, Hara ES, et al. Matrix metalloproteinase-8 is the major potential collagenase in active peri-implantitis[J]. J Prosthodont Res, 2012,56(4):249-255.
[15] Kuula H, Salo T, Pirila E, et al.Local and systemic responses in matrix metalloproteinase 8-deficient mice during Porphyromonas gingivalis-induced periodontitis[J]. Infect Immun,2009,77(2):850-859.
Levels of TNF-α and MMP-8 in peri-implant sulcular fluid
ZUO En-jun1,XU Nuo2,HU Shu-hai1
(1.CollegeofStomatology,DalianMedicalUniversity,Dalian116044,China;2.ZhongshanCollege,DalianMedicalUniversity,Dalian116085,China)
Objective To investigate the relation of TNF-α and MMP-8 levels in peri-implant sulcular fluid with peri-implantitis. Methods 36 patients were enrolled who received oral implant treatment at the College of Stomatology of Dalian Medical University. All the implants (n=48) were divided into health implant group(n=38)and inflammation implant group(n=10),and 48 healthy natural teeth were collected as the control group. Gingival crevicular fluid was sampled and levels of TNF-α and MMP-8,PD and SBI were measured and analyzed. Results PD, SBI and the levels of TNF-α and MMP-8 of inflammation implant group were higher than healthy natural teeth group and healthy implant group(P<0.05). PD and SBI had positive correlation with the levels of TNF-α and MMP-8(P<0.01). Conclusion The levels of TNF-α and MMP-8 in gingival crevicular fluid have close relationship with peri-implantitis,which can reflect the health condition of peri-implant tissues to some extent.
peri-implantitis; TNF-α;MMP-8
10.11724/jdmu.2015.06.04
遼寧省科技廳科學(xué)事業(yè)公益研究基金項(xiàng)目(2013001007)
左恩俊(1981-),男,黑龍江鶴崗人,副教授。E-mail:zuoej@163.com
胡書(shū)海,教授。E-mail: shuhaihu4141@aliyun.com
R782.2
A
1671-7295(2015)06-0533-04
左恩俊,許諾,胡書(shū)海. 種植體周?chē)l溝液中TNF-α和MMP-8水平的研究[J].大連醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2015,37(6):533-536.
2015-06-04;
2015-11-09)