李喜悅，高　哲，王榮芳，崔　璨，安小楠，崔　同（河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院，河北保定071000）

HPLC法同時(shí)測(cè)定棗葉中5種黃酮的含量

李喜悅，高哲，王榮芳，崔璨，安小楠，崔同*
（河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院，河北保定071000）

建立了一種棗葉中黃酮類成分定量分析的HPLC方法，并對(duì)14個(gè)品種的大棗及酸棗葉中這5種黃酮的含量進(jìn)行了分析。結(jié)果得到采用Hypersil BDS C18色譜柱，以乙腈與0.1%甲酸水溶液為流動(dòng)相梯度洗脫，流速1 mL/min，柱溫30℃，檢測(cè)波長(zhǎng)360 nm，實(shí)現(xiàn)了槲皮素-3-O-洋槐糖苷、蘆丁、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、山奈酚-3-O-蕓香糖苷、槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷5種黃酮苷的同時(shí)檢測(cè)，最低檢出限為1.44～2.59 μg/mL，加標(biāo)回收率在93.8%～105.9%之間。5種黃酮苷的含量測(cè)定結(jié)果表明不同品種的棗葉中黃酮類成分的組成和含量差異較大，其中蘆丁和槲皮素-3-O-洋槐糖苷的含量較高，平均為7.83 mg/g D.W和4.61 mg/g D.W；8個(gè)品種棗葉中檢測(cè)到槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷，平均5.32 mg/g D.W；而槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷和山奈酚-3-O-蕓香糖苷的含量較低，分別為0.14 mg/g D.W和0.41 mg/g D.W。

HPLC，棗葉，黃酮，蘆丁，槲皮素-3-O-洋槐糖苷

棗葉是鼠李科（Rhamnaceae）棗屬植物棗（Ziziphus Jujuba Mill.）和酸棗［Ziziphus jujuba Mill.var.spinosa（Bunge）Hu ex H.F.Chow］的葉子。據(jù)《日華子本草》記載，棗葉性味“溫，無毒”。而據(jù)《本草綱目》記載，酸棗葉可“斂瘡解毒，治脛臁瘡”。

據(jù)報(bào)道，黃酮類成分是棗葉中含量較高的活性成分［1-3］，然而目前對(duì)棗葉中黃酮類成分定量分析方面的研究并不多見。李蘭芳等［4］采用薄層掃描法測(cè)定了不同采收期酸棗葉中蘆丁的含量。裴香萍等［5］利用HPLC法測(cè)定了不同產(chǎn)地、不同采收期酸棗葉中蘆丁的含量，但其采用的色譜條件沒有將蘆丁與其前面的色譜峰有效分離。張倩倩等［6］經(jīng)DAD檢測(cè)發(fā)現(xiàn)蘆丁與其色譜峰前面的組分不是同一種化學(xué)成分，但并沒有進(jìn)一步確證其化學(xué)結(jié)構(gòu)。Guo Sheng等［1］建立了同時(shí)測(cè)定3種黃酮（蘆丁、槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷、槲皮素-3-O-β-D-木糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷）以及2種皂苷和9種三萜的HPLC-ELSD分析方法，但是需要使用特殊的檢測(cè)器。最近本實(shí)驗(yàn)室研究結(jié)果表明，大棗和酸棗的葉中有多種黃酮苷類成分，對(duì)其中5種含量較高的黃酮苷進(jìn)行了分離純化和結(jié)構(gòu)鑒定［7］。本研究擬在前期研究基礎(chǔ)上，建立一種同時(shí)測(cè)定棗葉中這5種黃酮含量的HPLC方法，并對(duì)不同品種的大棗及酸棗葉中的這5種黃酮的含量進(jìn)行測(cè)定，為棗葉資源開發(fā)利用及相關(guān)產(chǎn)品質(zhì)量控制提供新的檢測(cè)手段。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

棗葉樣品共計(jì)14個(gè)品種（大酸棗、冬棗、贊皇大棗、敦煌大棗、大木棗、金絲小棗、串鈴、茶壺棗、無核棗、梨棗、晉棗、宣城圓棗、板棗、連縣木棗），均采自河北省滄縣國(guó)家棗樹良種繁育基地，采樣時(shí)間為2013年10月7日，采回后經(jīng)真空冷凍干燥，放置在真空干燥器中備用；對(duì)照品：槲皮素-3-O-洋槐糖苷、蘆丁（槲皮素-3-O-蕓香糖苷）、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、山奈酚-3-O-蕓香糖苷、槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷均由本實(shí)驗(yàn)室從棗葉中分離提純，經(jīng)HPLC-ESI-MS、1H-NMR和13C-NMR法鑒定［7］并與相關(guān)文獻(xiàn)［8-11］對(duì)比得到確證，通過HPLC峰面積歸一化法測(cè)得其純度≥95%；乙腈Honeywell Burdick&Jackson公司，色譜純，高效液相色譜（HPLC）流動(dòng)相用；純凈水杭州娃哈哈集團(tuán)有限公司；其余試劑為分析純。

Agilent 1200型HPLC由在線脫氣機(jī)，四元輸液泵，光電二極管陣列檢測(cè)器以及Agilent Chemstation色譜工作站組成，Agilent公司；配用CO-3010柱恒溫控制箱天津美瑞泰克科技有限公司；Hypersil BDS C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）、Thermo Hypersil BDS C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）、Lab Alliance Kromasil C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）色譜柱大連依利特公司；TB-215D型微量分析天平德國(guó)賽多利斯股份有限公司；SK5200H型超聲振動(dòng)儀上海波龍電子設(shè)備有限公司；FD-1B-50型冷凍干燥機(jī)北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司；Anke TDL-5型離心機(jī)上海安亭科學(xué)儀器廠。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1樣品前處理考察不同的提取溶劑：80%甲醇、50%甲醇、70%乙醇、95%乙醇的提取效果。準(zhǔn)確稱取凍干的棗葉樣品1.000 g，放入研缽中，加入20 mL上述四種提取溶劑，研磨均勻后轉(zhuǎn)移至25 mL容量瓶中，超聲波（80 W）提取30 min，用提取溶劑定容，靜置3 min，取部分上清液于離心機(jī)上4000 r/min離心5 min，經(jīng)0.45 μm濾膜過濾，用于HPLC測(cè)定。

1.2.2HPLC分析條件的選擇比較Hypersil BDS C18（4.6 mm×250 mm，5 μm），Thermo Hypersil BDS C18（4.6 mm×250 mm，5 μm），Lab Alliance Kromasil C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）三種不同色譜柱的分離效果；比較甲醇-0.05%甲酸、甲醇-0.1%甲酸、乙腈-0.05%甲酸、乙腈-0.1%甲酸等不同流動(dòng)相及不同的梯度洗脫程序；分析5種黃酮的檢測(cè)波長(zhǎng)（掃描范圍210～400 nm），確定最合適的檢測(cè)波長(zhǎng)。

1.2.3HPLC分析條件色譜柱Hypersil BDS C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）；流動(dòng)相：A：1 mL/L甲酸水溶液；B：乙腈含1 mL/L的甲酸；梯度洗脫程序：0～16 min，15%B；16～20 min，15%～17%B；20～28 min，17%B；28～30 min，17%～22%B；30～35 min，22%～100%B；35～40 min，100%B；40～42 min，100%～15%B；42～52 min，15%B；流速為1 mL/min；柱溫30℃；DAD檢測(cè)器，檢測(cè)波長(zhǎng)360 nm；進(jìn)樣量：10 μL。

1.2.4標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制與曲線的繪制精確稱取槲皮素-3-O-洋槐糖苷、蘆丁、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、山奈酚-3-O-蕓香糖苷、槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷對(duì)照品溶于甲醇中，配制成1000 μg/mL的混合對(duì)照品貯備液。精密吸取貯備液，分別稀釋成500、250、100、50、10 μg/mL的混標(biāo)溶液，置于樣品瓶中，4℃保存待用。按照1.2.3的色譜條件進(jìn)行HPLC測(cè)定，以進(jìn)樣濃度（X，μg/mL）為橫坐標(biāo)，峰面積（Y，mv·s）為縱坐標(biāo)，求出直線回歸方程，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.3數(shù)據(jù)處理

數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)及處理軟件為Origin 6.0。

2　結(jié)果與分析

2.1提取溶劑的選擇

結(jié)果表明，采用70%乙醇作為提取溶劑時(shí)，5種黃酮類成分的峰面積均達(dá)到最大值，因此，確定70%乙醇水溶液為棗葉黃酮的提取溶劑。

2.2色譜柱及填料的比較

結(jié)果表明，盡管3種色譜柱的裝填尺寸相同，但使用Lab Alliance Kromasil C18色譜柱時(shí)槲皮素-3-O-洋槐糖苷與蘆丁會(huì)重合為一個(gè)峰，而使用Thermo Hypersil BDS C18色譜柱時(shí)，山奈酚-3-O-蕓香糖苷與槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷不能實(shí)現(xiàn)基線分離，而Hypersil BDS C18（4.6 mm× 250 mm，5 μm）色譜柱對(duì)5種黃酮均能實(shí)現(xiàn)很好的分離。

2.3檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇

鑒于實(shí)驗(yàn)中5種黃酮苷成分母核骨架為槲皮素或山奈酚，在此僅列出槲皮素-3-O-洋槐糖苷和山奈酚-3-O-蕓香糖苷的紫外吸收光譜圖，見圖1，由圖1可以看出，紫外吸收光譜接近一致，分別在255～265 nm和355～360 nm有2個(gè)強(qiáng)吸收帶，且360 nm吸收帶更強(qiáng)，為提高方法的靈敏度，減少干擾，本實(shí)驗(yàn)選擇波長(zhǎng)更長(zhǎng)的360 nm為檢測(cè)波長(zhǎng)，使各組分均能得到較高的響應(yīng)值。

2.4流動(dòng)相的選擇

結(jié)果顯示，當(dāng)用甲醇-水作為流動(dòng)相梯度洗脫時(shí)，槲皮素-3-O-洋槐糖苷與蘆丁會(huì)重合為一個(gè)峰，不能實(shí)現(xiàn)分離。樣品用乙腈和水并按照上述1.2.3的梯度程序洗脫時(shí)，目標(biāo)峰之間分離效果以及靈敏度均較好，所得色譜圖基線平穩(wěn)。由于黃酮苷屬于多酚類成分，流動(dòng)相中加入適量的酸可抑制拖尾，改善峰形，從而提高組分的分離度，因此實(shí)驗(yàn)采用含0.1%甲酸的乙腈水溶液為流動(dòng)相，采用15%乙腈的洗脫強(qiáng)度，16 min的等度洗脫，使難分離組分槲皮素-3-O-洋槐糖苷和蘆丁實(shí)現(xiàn)了分離，而在隨后的梯度洗脫條件下，樣品中的其他3種黃酮也都實(shí)現(xiàn)了基線分離。5種對(duì)照品和晉棗棗葉樣品的色譜圖見圖2。由圖2可以看到，在選定的分析條件下，樣品中的5種黃酮的色譜峰與其他雜峰在30 min內(nèi)實(shí)現(xiàn)了良好分離，峰形對(duì)稱不拖尾。

圖1　槲皮素-3-O-洋槐糖苷（A）和山奈酚-3-O-蕓香糖苷（B）的紫外吸收光譜圖Fig.1　UV absorption spectra of quercetin 3-O-robinobioside（A）and kaempferol-3-O-rutinoside（B）

圖2　5種黃酮混合對(duì)照品（A）和晉棗棗葉樣品（B）的HPLC圖Fig.2　HPLC profile of flavonoid references（A）and jujube leaves sample（B）

2.5HPLC分析方法的評(píng)價(jià)

2.5.1精密度實(shí)驗(yàn)取混合對(duì)照品溶液（槲皮素-3-O-洋槐糖苷、蘆丁、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、山奈酚-3-O-蕓香糖苷、槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷的質(zhì)量濃度均為0.25 μg/mL），按1.2.3中的色譜條件重復(fù)進(jìn)樣分析，平行進(jìn)樣5次，統(tǒng)計(jì)色譜峰的面積，計(jì)算相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差以評(píng)價(jià)方法的精密度，結(jié)果見表1，相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD）在0.59%～1.14%之間，表明儀器精密度良好。

表1　方法精密度的評(píng)價(jià)結(jié)果Table 1　Evaluation of the precision

2.5.2方法的回歸方程、線性范圍和最低檢出限按1.2.4步驟配制混合對(duì)照品系列標(biāo)準(zhǔn)溶液，按1.2.3色譜條件在10～1000 μg/mL濃度范圍進(jìn)樣分析，評(píng)價(jià)方法的線性回歸方程、相關(guān)系數(shù)和線性范圍，并以3倍信噪比所對(duì)應(yīng)的進(jìn)樣濃度求得最低檢出限，結(jié)果列于表2。結(jié)果表明，響應(yīng)值與進(jìn)樣量之間具有良好線性相關(guān)性，相關(guān)系數(shù)介于0.9996～0.9999之間，最低檢出限較低（1.44～2.59 μg/mL），可以滿足常規(guī)樣品的定量分析。

表2　回歸方程、相關(guān)系數(shù)、線性范圍和最低檢出限Table 2　The regression equation，correlation coefficient，linear range and minimum detection limit

2.5.3方法的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)分別準(zhǔn)確稱取已知質(zhì)量的對(duì)照品，按其在棗葉中常規(guī)含量確定相應(yīng)的加標(biāo)水平，并以棗葉（冬棗）為樣品按1.2.1所述方法進(jìn)行處理，平行做5份加標(biāo)實(shí)驗(yàn)，并按1.2.3中的色譜條件分別測(cè)定未加標(biāo)樣品和加標(biāo)樣品，進(jìn)行分析。統(tǒng)計(jì)計(jì)算各成分的加標(biāo)回收率，結(jié)果見表3。結(jié)果表明，5種黃酮的回收率介于93.8%～105.9%之間，RSD為0.84%～2.42%，回收率均較高，可滿足常規(guī)定量分析需要。

表3　5種黃酮的加標(biāo)回收率Table 3　Recoveries of 5 flavonoids

2.6不同品種棗葉中5種黃酮的含量測(cè)定

按照1.2所述的方法，對(duì)秋季采集的14個(gè)品種棗葉中5種黃酮的含量進(jìn)行分析，結(jié)果見表4。

表4　不同品種棗葉中5種黃酮的含量測(cè)定結(jié)果（±SD，mg/g D.W）Table 4　Determination results of 5 flavonoids content in jujube leaves among different cultivars（±SD，mg/g D.W）

表4　不同品種棗葉中5種黃酮的含量測(cè)定結(jié)果（±SD，mg/g D.W）Table 4　Determination results of 5 flavonoids content in jujube leaves among different cultivars（±SD，mg/g D.W）

注：-表示未檢出。

品種　　槲皮素-3-O-洋槐糖苷　　蘆丁　　槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷山奈酚-3-O-蕓香糖苷槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷大酸棗　5.39±0.10　8.89±0.12　0.17±0.01　0.41±0.01　6.96±0.14冬棗　3.82±0.10　3.84±0.08　0.07±0.01　0.66±0.03　3.59±0.03贊皇大棗　1.26±0.03　1.68±0.03　0.07±0.01　0.07±0.01　3.27±0.08敦煌大棗　2.68±0.09　4.80±0.17　0.08±0.01　0.08±0.01　-大木棗　3.06±0.14　5.23±0.06　0.11±0.01　0.40±0.01　5.23±0.16金絲小棗　4.33±0.11　6.35±0.16　0.18±0.01　0.41±0.01　6.86±0.11串鈴　8.21±0.22　16.07±0.48　0.18±0.02　0.50±0.02　-茶壺棗　8.24±0.20　12.12±0.23　0.18±0.01　0.35±0.01　-無核棗　2.82±0.13　3.00±0.18　0.15±0.02　0.28±0.03　4.49±0.35梨棗　9.16±0.28　15.13±0.38　0.34±0.02　0.17±0.02　-晉棗　2.64±0.12　3.67±0.16　0.10±0.01　0.43±0.03　4.12±0.12宣城圓棗　1.98±0.15　4.86±0.13　0.13±0.01　0.26±0.02　-板棗　5.74±0.07　15.81±0.08　0.10±0.01　1.08±0.03　-連縣木棗　5.17±0.10　8.16±0.20　0.10±0.01　0.65±0.04　8.05±0.10平均值　4.61±0.13　7.83±0.18　0.14±0.01　0.41±0.02　5.32±0.14

由表4可以看出，在14個(gè)不同品種的棗葉中均檢測(cè)出槲皮素-3-O-洋槐糖苷、蘆丁、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、山奈酚-3-O-蕓香糖苷4種黃酮，但其含量存在較大差異。14個(gè)品種棗葉中蘆丁的含量最高，平均7.83 mg/g，其中串鈴、梨棗和板棗中的含量高達(dá)15～16mg/g；在本研究中由于實(shí)現(xiàn)了槲皮素-3-O-洋槐糖苷與蘆丁的分離，使得前者的含量可以單獨(dú)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)，其在14個(gè)品種中的含量?jī)H次于蘆丁，平均4.61 mg/g，在串鈴、茶壺棗和梨棗中其含量均超過8 mg/g，是棗葉中的重要黃酮成分。槲皮素-3-O-α-L-阿拉伯糖-（1→2）-α-L-鼠李糖苷是一種特殊的黃酮成分，僅在8個(gè)品種中檢出，平均含量為5.32 mg/g。其余2種黃酮，槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷和山奈酚-3-O-蕓香糖苷，在14個(gè)品種棗葉中含量較低，平均值分別為0.14和0.41 mg/g。

3　結(jié)論

本文建立了一種同時(shí)測(cè)定棗葉中5種黃酮的反相高效液相色譜法，通過對(duì)色譜條件的優(yōu)化，在選定的分析條件下，5種黃酮在30 min內(nèi)實(shí)現(xiàn)了良好的分離，且該方法最低檢出限較低（1.44～2.59 μg/mL），加標(biāo)回收率均在93%以上。該方法簡(jiǎn)單準(zhǔn)確、靈敏、重復(fù)性好，可用于棗葉中黃酮成分的定量分析。采用建立的方法對(duì)14個(gè)不同品種棗葉5種黃酮的含量進(jìn)行了分析，結(jié)果表明，不同品種棗葉中這些黃酮類成分的組成和含量有較大差異，蘆丁和槲皮素-3-O-洋槐糖苷是棗葉中含量最高的兩種黃酮。

［1］Guo S，Duan J A，Tang Y P，et al.Simultaneous qualitative and quantitative analysis of triterpenic acids，saponins and flavonoids in the leaves of two Ziziphus species by HPLC-PDAMS/ELSD［J］.J Pharm Biomed Anal，2011，56（2）：264-270.

［2］Zhang R，Chen J，Shi Q，et al.Quality control method for commercially available wild jujube leaf tea based on HPLC characteristic fingerprint analysis of flavonoid compounds［J］.J Sep Sci，2014，37（1-2）：45-52.

［3］Zhang R，Chen J，Shi Q，et al.Phytochemical analysis of Chinese commercial available Ziziphus jujube leaf tea using high performance liquid chromatography-electrospray ionization-time［4］李蘭芳，趙淑云.不同生長(zhǎng)期酸棗葉中總黃酮和蘆丁的含量測(cè)定［J］．中國(guó)中藥雜志，1992，17（2）：81．

of flight mass spectrometry［J］.Food Res Int，2014，56：47-54.

［5］裴香萍，杜晨暉，閆艷，等．HPLC-UV測(cè)定不同產(chǎn)地及不同采收期酸棗葉中蘆丁的含量［J］．中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志，2011，17（21）：94-96．

［6］張倩倩，崔慶玲，劉曉秋，等.HPLC法同時(shí)測(cè)定酸棗葉中蘆丁等4種黃酮苷的含量［J］.沈陽(yáng)藥科大學(xué)學(xué)報(bào)，2014，1：7.

［7］李喜悅，高哲，崔璨，等.棗葉黃酮類成分的分離鑒定及其抗氧化活性研究［J］.食品工業(yè)科技，2015，36，（10）：135-138.

［8］郝福玲，方訪，凌鐵軍，等.夾竹桃葉化學(xué)成分的研究［J］.安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，2013，40（5）：795-801.

［9］Deng S，Deng Z，F(xiàn)an Y，et al.Isolation and purification of three flavonoid glycosides from the leaves of Nelumbo nucifera（Lotus）by high-speed counter-current chromatography［J］.J Chromatogr B，2009，877（24）：2487-2492.

［10］Juan-Badaturuge M，Habtemariam S，Thomas M J K. Antioxidant compounds from a South Asian beverage and medicinal plant，Cassia auriculata［J］.Food Chem，2011，125（1）：221-225.

［11］石心紅，王宇行，孔令義.準(zhǔn)噶爾大戟根中黃酮類成分的研究［J］.中國(guó)藥學(xué)雜志，2006，41（20）：1538-1540.

Determination of five flavonoids in jujube leaves by HPLC

LI Xi-yue，GAO Zhe，WANG Rong-fang，CUI Can，AN Xiao-nan，CUI Tong*
（College of Food Science and Technology，Agricultural University of Hebei，Baoding 071000，China）

The purpose was to establish a method for determining flavonoids in jujube leaves using HPLC，and analyze flavonoids contents in jujube leaves from 14 different cultivars by this method.The samples were separated on a Hypersil BDS C18column，the mobile phase consisted acetonitrile and water with 0.1%formic acid，separations were achieved by a gradient elution program，the flow rate was 1 mL/min，the column temperature was 30℃ and the detection wavelength was at 360 nm.Under these conditions，five flavonoids including quercetin-3-O-robinobioside，rutin，quercetin-3-O-β-D-glucoside，kaempferol-3-O-rutinoside and quercetin-3-O-α-L-arabinosyl-（1→2）-α-L-rhamnoside were detected by one injection.The minimum detection limit was 1.44～2.59 μg/mL.The average recovery rate was 93.8%～105.8%.The results revealed that in terms of flavonoids，the difference of the composition and contents among the different cultivars was siginificant.The average contents of rutin and quercetin-3-O-robinobioside were 7.83 and 4.61 mg/g D.W，respectively，which were higher compared with other flavonoids.Only 8 cultivars detected the existence of quercetin-3-O-α-L-arabinosyl-（1→2）-α-L-rhamnoside，whose average contents was 5.32 mg/g D.W. However，the contents of quercetin-3-O-β-D-glucoside and kaempferol-3-O-rutinoside were lower，they were 0.14 and 0.41 mg/g D.W，respectively.

HPLC；jujube leaves；flavonoids；rutin；quercetin-3-O-robinobioside

TS201.1

A

1002-0306（2015）18-0049-05

10.13386/j.issn1002-0306.2015.18.001

2015－01－16

李喜悅（1990-），女，在讀碩士研究生，研究方向：功能食品化學(xué)，E-mail：lixiyue123456@163.com。

崔同（1956-），男，教授，研究方向：天然產(chǎn)物活性成分分析，E-mail：cuitong98@aliyun.com。

國(guó)家林業(yè)公益性行業(yè)科研專項(xiàng)（201304708）。