儲 俐 鄭燕林 李 妍 馬素紅
水蛭滲濾液對猴RF/6A細胞表達TNF-α的影響
儲 俐1鄭燕林2李 妍3馬素紅4
目的觀察水蛭滲濾液對凝血酶誘導下猴脈絡膜-視網(wǎng)膜(內(nèi)皮)細胞(RF/6A)表達促血管生成因子TNF-α的影響。方法采用消化培養(yǎng)法,對猴RF/6A細胞進行體外傳代培養(yǎng),選擇20 μ/ml的凝血酶作為誘導濃度,分別作用于RF/6A細胞2、4、6、8、10、12及24 h,用ELISA法觀察凝血酶對視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞表達TNF-α的誘導情況。觀察在有或無凝血酶誘導下水蛭滲濾液(64 mg/ml)對視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞表達TNF-α的影響。結果(1)凝血酶作用2 h,TNF-α的表達開始增加,作用4 h,TNF-α的表達達到最大,持續(xù)至10 h;4、6、8 h與空白組比較差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);當凝血酶作用時間達12 h,TNF-α的表達開始下降,凝血酶組與空白組12 h和24 h比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(2)水蛭滲濾液對有或無凝血酶誘導組都能下調(diào)TNF-α的表達(P<0.05)。結論水蛭滲濾液能下調(diào)凝血酶誘導下猴RF/6A細胞表達TNF-α。
水蛭滲濾液;凝血酶;視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞;TNF-α
視網(wǎng)膜新生血管(retinal neovascularization)病變,能導致嚴重的中心視力損害,目前臨床治療方法有手術切除、黃斑轉位、激光光凝、光動力療法等,但是一旦視力受損,大多數(shù)治療對于視力的恢復是有限的,還有可能加速新生血管的生成或是損傷正常視網(wǎng)膜組織;另外,視網(wǎng)膜新生血管仍有復發(fā)的可能,而且這些治療的費用不菲。
我們前期的實驗發(fā)現(xiàn),64 g/L水蛭滲濾液可以抑制血管內(nèi)皮細胞的增殖,將細胞阻滯在G1期〔1〕,同時,水蛭滲濾液可使內(nèi)皮細胞跨膜受體VEGF R2表達明顯減少〔2〕,從一定層次說明水蛭對視網(wǎng)膜新生血管有抑制作用。但是水蛭是如何防治視網(wǎng)膜新生血管性疾病的機制目前尚不清楚。本研究通過觀察水蛭滲濾液對凝血酶誘導下的視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞表達TNF-α的情況,力圖從另一角度初步探討水蛭防治視網(wǎng)膜新生血管性疾病的機制。
1.1 材料
1.1.1 細胞及主要試劑:恒河猴視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞(rhesus retinal endothelial cell,RF/6A,上海中國科學院細胞庫)。水蛭(四川新荷花中藥飲片有限股份公司,產(chǎn)地:山東,批號:070301)。RPMI 1640培養(yǎng)基(Gibco BRL,美國),特級胎牛血清(北京元亨公司,中國),胰蛋白酶(Gibco BRL,美國),PBS平衡鹽溶液(北京中杉生物技術有限公司,中國),凝血酶(Sigma公司,美國),中藥水蛭滲濾液(成都中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院制劑科,批號:2007030201),TNF-α酶聯(lián)免疫試劑盒(Sigma公司)等。
1.1.2 主要實驗器材:M-Q型超凈工作臺(Heraeus公司,德國),CO2培養(yǎng)箱(Sanyo公司,日本),Herzeus varifuge 3.0RS型低速離心機(Kendro公司,美國),1-13型高速離心機(Sigma公司,美國),Mili-Q型超純水系統(tǒng)(Milipore公司,美國),550型酶標儀(Biorad公司,美國),MO-18型倒置像差顯微鏡(Olympus,日本)等。
1.1.3 實驗用水蛭滲濾液的制備:取水蛭,60~65℃干燥3小時,粉碎成粗粉,照2005年版《中國藥典》一部流浸膏劑與浸膏劑項下的滲濾法,用60%乙醇作溶劑,浸漬48 h后,收集滲濾液,回收乙醇至無醇味,定容,調(diào)整pH值至6.5~7.5,靜置,取上清液,濾過(0.45微孔濾膜),即得。本品每1 ml含抗凝血酶活性為24.0 μ。取1 ml水蛭提取原液(5 g/ml)加入38 ml DMEM液中,保存濃度為128 mg/ml,調(diào)pH值為7.4。過濾除菌,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2 方法
1.2.1 細胞的傳代培養(yǎng)及鑒定:恒河猴視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞的傳代培養(yǎng)及鑒定:0.25%胰蛋白酶消化后,用完全1640培養(yǎng)液制成內(nèi)皮細胞懸液,調(diào)整細胞濃度接種到培養(yǎng)瓶內(nèi),每2~3 d換液1次。恒河猴視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞80%融合后,消化傳代培養(yǎng),取傳2代細胞,采用Ⅷ因子相關抗原免疫組化染色法在光鏡和電鏡下觀察細胞形態(tài)并進行細胞鑒定。1.2.2凝血酶誘導RF/6A細胞表達TNF-α的測定:選取指數(shù)生長的RF/6A細胞,按3×104個/ml的單細胞懸液,每孔200 μl接種于96孔培養(yǎng)板,加入20 NIHU/ml凝血酶溶液,空白組只加入RPMI1640,分別培養(yǎng)2、4、6、8、10、12及24 h。取上清液,離心后分裝于EP管中。建立標準曲線后,取分裝于EP管中的細胞培養(yǎng)上清液,以每孔100 μl注入經(jīng)Ⅰ抗包被的96孔酶標板中。置孵箱中反應90 min。按每孔100 μl依次加入親和素——過氧化物酶復合物(ABC)液,置孵箱中反應60 min。洗板5次后,按每孔90 μl加入TMB顯色液,置于孵箱中反應10 min。按每孔100 μl依次加入TMB終止液。用酶標儀在450 nm測定光密度D(450 nm)。
1.2.3 水蛭對凝血酶誘導下RF/6A細胞表達TNF-α的影響:取指數(shù)生長的RF/6A細胞,按3×104個/ ml的單細胞懸液,每孔200 μl接種于96孔培養(yǎng)板,培養(yǎng)24 h,細胞貼壁生長。棄原培養(yǎng)液,加入無血清的RPMI1640培養(yǎng)液200 μl,培養(yǎng)24 h,使細胞相對同步化。棄原培養(yǎng)液,隨機分成空白對照組(只加入RPMI1640培養(yǎng)液),凝血酶組(加入以RPMI1640培養(yǎng)液配制的20 NIHU/ml凝血酶溶液),水蛭滲濾液組(加入以RPMI1640培養(yǎng)液配制的水蛭滲濾液64 mg/ml)和合藥組(同時加入凝血酶溶液以及水蛭滲濾液),同時孵育10 h。取上清液,離心后分裝于EP管內(nèi)。建立標準曲線后,吸取分裝于EP管中的細胞培養(yǎng)上清液,以每孔100 μl注入經(jīng)Ⅰ抗包被的96孔酶標板中。棄酶標板內(nèi)液體,按每孔100 μl依次加入生物素抗TNF-α抗體,置孵箱反應60 min。洗板3次后按每孔100 μl依次加入親和素——過氧化物酶復合物(ABC)液,置于孵箱反應60 min。再洗板5次,按每孔90 μl依次加入已經(jīng)平衡30 min的TMB顯色液,加蓋,置孵箱避光反應10 min。按每孔100 μl依次加入TMB終止液。用酶標儀在450 nm測定光密度D(450 nm)。
1.3 統(tǒng)計學方法
所有數(shù)據(jù)資料采用SPSS 11.5統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學處理。計量資料用x±s表示,組間差異性比較用單因素方差分析。多組間兩兩比較用S-N-K檢驗,不同時間點兩組組間及組內(nèi)比較采用重復測量資料的方差分析。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
2.1 血管內(nèi)皮細胞鑒定
細胞膜表面見棕黃色陽性顆粒(第Ⅷ因子相關抗原),即免疫組化染色為陽性反應,證實細胞類型為血管內(nèi)皮細胞(圖1)。
2.2 凝血酶對體外培養(yǎng)的RF/6A細胞表達TNF-α的影響
兩組RF/6A細胞不同時間點的TNF-α表達量不同(重復測量方差分析,同組內(nèi)不同時間點比較:空白組TNF-α的含量間差異無統(tǒng)計學意義(F=0.483,P=0.666)。凝血酶組TNF-α的含量間差異有統(tǒng)計學意義(F=12.98,P=0.00);時間與組別之間存在交互效應,說明凝血酶組和空白對照組的TNF-α含量隨時間變化趨勢有所不同,交互效應F=4.283,P=0.008);交互效應F=4.283,P=0.008),凝血酶組TNF-α表達在2、4、6、8、10 h時高于空白對照組(P<0.05),在12、24 h時與空白對照組接近(P>0.05)。從時間變化上看,空白對照組的TNF-α表達較為平穩(wěn),凝血酶組的TNF-α表達則表現(xiàn)為先升高后下降的趨勢(表1)。
2.3 蛭滲濾液對凝血酶誘導RF/6A細胞TNF-α表達的影響
凝血酶組、空白對照組、水蛭組以及合藥組TNF-α表達的光密度值分別為0.075±0.002,0.061± 0.003,0.039±0.003,0.045±0.002,四組差異有統(tǒng)計學意義(單因素方差分析,F(xiàn)=53.42,P<0.05)。水蛭組及合藥組的TNF-α表達均低于凝血酶組及空白對照組,合藥組的TNF-α表達為最低(S-N-K法,P<0.05)。
圖1 細胞膜表面見棕黃色陽性顆粒(第Ⅷ因子相關抗原),證明是血管內(nèi)皮細胞光鏡100×
視網(wǎng)膜新生血管的形成是一個復雜的過程,其中,血管內(nèi)皮細胞是關鍵靶細胞〔3〕,同時,促血管生成因子,如TNF-α、VEGF等的過度表達是視網(wǎng)膜新生血管形成的重要環(huán)節(jié)。平時在外周血液循環(huán)中,血管內(nèi)皮細胞處于血管生成因子和抑制因子的復雜精細平衡穩(wěn)態(tài)下,因此局部的血管生長處于靜止狀態(tài)〔4-6〕。凝血酶則是視網(wǎng)膜新生血管性疾病中打破這一平衡最為常見和關鍵的誘因。視網(wǎng)膜新生血管性疾病是一種以視網(wǎng)膜反復出血為主要特征的疾病,一旦出血則導致局部凝血酶表達的極度上調(diào),這也將誘導大批的促血管生成因子如TNF-α的分泌增加,從而打破血管生成微環(huán)境的平衡,誘導視網(wǎng)膜新生血管的生成〔7-8〕。
視網(wǎng)膜新生血管性疾病屬中醫(yī)“眼底血癥”范疇,中醫(yī)藥在阻止視網(wǎng)膜新生血管性疾病病情進展方面有較好的療效。唐容川在《血證論》中明確指出“血癥當以祛瘀為要”,臨床眼科醫(yī)家對視網(wǎng)膜出血性疾病也始終以祛瘀為基本治法,取得了很好的療效〔9-12〕。在這一理論的指導下,成都中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院眼科研制的以水蛭為主藥的“化瘀散結片”已經(jīng)在臨床運用和研究多年,臨床療效良好〔13-14〕。
3.1 凝血酶對視網(wǎng)膜內(nèi)皮細胞表達TNF-α的誘導
凝血酶與細胞表面的凝血酶受體即蛋白酶活化受體(protease-activated receptor,PAR)結合,引起受體活化〔15〕,受體活化后進一步激活蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)〔16〕,使IkB磷酸化降解,與NF-κB解離,暴露NF-κB的核識別位點,使NF-κB進入核內(nèi),促進TNF-α基因的轉錄。本研究發(fā)現(xiàn),凝血酶能夠在2、4、6、8、10 h誘導TNF-α表達的增加,并且在10 h達高峰,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),凝血酶能夠上調(diào)視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞對促血管生成因子TNF-α的表達,從一定程度上誘導視網(wǎng)膜新生血管的形成,這與國外的研究報道有相似之處〔17-18〕。
有研究發(fā)現(xiàn)〔19〕,在體內(nèi)NF-κB的激活過程受精細的反饋調(diào)節(jié)調(diào)控。正反饋調(diào)節(jié):NF-κB激活后,可增強TNF-α和白細胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)等的基因轉錄,促使TNF-α和IL-1β產(chǎn)生和釋放增多,后者又導致NF-κB的進一步激活。負反饋調(diào)節(jié):當細胞內(nèi)NF-κB激活時,胞質內(nèi)IkB的mRNA表達和蛋白合成增強。本研究發(fā)現(xiàn),凝血酶作用2 h,TNF-α的表達開始增加,作用4 h,TNF-α的表達達到最大,持續(xù)至10 h;當凝血酶作用時間達12 h,TNF-α的表達開始下降,經(jīng)統(tǒng)計學分析,凝血酶組與空白組12 h和24 h,TNF-α的表達間差異無統(tǒng)計學意義。因此推測12 h可能是負反饋調(diào)節(jié)的節(jié)點,這還有待進一步深入研究證實。
3.2 水蛭滲濾液對凝血酶誘導下視網(wǎng)膜內(nèi)皮細胞表達TNF-α的影響
過去20年的廣泛深入研究發(fā)現(xiàn),水蛭素含有與凝血酶受體相似的結構——K51YEPF55,它能與凝血酶結合從而阻止凝血酶與其活性受體PAR-1的結合〔20-21〕,使凝血酶無法進一步發(fā)揮其生物學反應。本研究發(fā)現(xiàn),水蛭滲濾液能夠抑制凝血酶誘導下的TNF-α表達,合藥組TNF-α表達低于凝血酶誘導組(P<0.05),推測水蛭滲濾液對視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞TNF-α表達的下調(diào),是通過對凝血酶的阻斷來實現(xiàn)的。
同時,本研究也發(fā)現(xiàn),水蛭滲濾液單獨作用組的TNF-α表達也低于空白組。這是否與TNF-α表達相關的PKC、PKA的激活有關呢?還是與其他途徑有關。這還有待于今后更進一步的深入研究。
[1]鄭燕林,劉聰慧,譚笑彥.水蛭滲濾液對恒河猴視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞增殖和細胞周期的影響[J].眼科新進展,2010,30(5):413-417.
[2]熊欣,彭琦,鄭燕林.水蛭提取物對血管內(nèi)皮細胞VEGF受體-2表達的影響[J].國際眼科雜志,2009,9(1):41-43.
[3]鐘一聲.新生血管性眼?。跰].北京:人民軍醫(yī)出版社,2006:32-33.
[4]Pober JS,Cotran RS.Cytokines and endothelial cell biology[J].Physiological Reviews,1990,70(2):427-451.
[5]Kociok N,Radetzky S,Krohne TU,et al.Pathological but not physiological retinal neovascularization is altered in TNF-Rp55-receptordeficient mice[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2006,47(11):5057-5065.
[6]IIg RC,Davies MH,Powers MR.Altered retinal neovascularization in TNF receptor-deficient mice[J].Curr Eye Res,2005,30(11):1003-1013.
[7]Vergnolle N,Wallace J.L,Bunnett N.W,et al.Protease-activated receptors in inflammation neuronal signaling and pain[J].Trends Pharmacol Sci,2001,22(3):146-152.
[8]Minami T,Aird WC.Thrombin stimulation of the vascular cell adhesion molecule-1 promoter in endothelial cells is mediated by tandem nuclear factor-κB and GATA motifs[J].Biol Chem,2001,276(50):47632-47641.
[9]鄧棋.生蒲黃湯治療眼底出血的臨床觀察[J].深圳中西醫(yī)結合雜志,2014,5(24):100-101.
[10]郝曉琳,戴維智,劉樺.和血明目片治療視網(wǎng)膜靜脈阻塞性眼底出血的臨床觀察[J].國際眼科雜志,2011,11(5):872-874.
[11]修巍威,張耀光,邵靜.銀杏達莫注射液治療糖尿病視網(wǎng)膜病變臨床效果分析[J].中國實用醫(yī)藥,2014,9(31):150-151.
[12]T.J.Rydel,K.G.Ravichandran,A.Tulinski,et al.The structure of a complex of recombinant hirudin and human α-thrombin[J].Science,1990,249(4966):277-280.
[13]汪輝,武文忠,王明芳,等.化瘀散結片對增生性玻璃體視網(wǎng)膜病變肝細胞生長因子表達的影響[J].中國中醫(yī)眼科雜志,2007,17(3):151-153.
[14]黃映紅,曾潔萍,王明芳,等.化瘀散結片對兔增生性玻璃體視網(wǎng)膜病變增生膜的形成及玻璃體內(nèi)血小板源性生長因子濃度的影響[J].中國中醫(yī)眼科雜志,200 7,17(5):270-273.
[15]Kenakin T.Functional,selectivity and biased receptor signaling[J].J Pharmacol Exp Ther,2011,336(2):296-302.
[16]Park CW,Kim JH,Lee JW,et al.High glucose-induced intercellular adhesionmolecule-1(ICAM-1)expression through anosmotic effect in ratmesangial cells is PKC-NF-κ B-dependent[J].Diabetologia,2000,43(12):1544-1553.
[17]Alison S.Orozco,Xiang Zhou,Scott G.Filler.Mechanisms of the Proinflammatory Response of Endothelial Cells to Candida albicans Infection[J].Infection and Immunity,2000,68(3):1134-1141.
[18]Geoffrey M Thiele,Gary E Hill,Jacqueline A Pavlik,et al.Halothane potentiates the alcohol-adduct induced TNF-αlpha release in heart endothelial cells[J].BMC Anesthesiol,2005,5(1):3-4.
[19]Jacobs MD,Harrison SC.Structure of an I kappa Balpha/NF-kappa B complex[J].Cell,1998,95(6):749-758.
[20]T.J.Rydel,K.G.Ravichandran,A.Tulinski,et al.The structure of a complex of recombinant hirudin and human α-thrombin[J].Science,1990,249(4966):277-280.
[21]F.Wirsching,C.Luge,A.Schwienhorst.Modular design of a novel chimeric protein with combined thrombin inhibitory activity and plasminogen activating potential[J].Mol Genet Metab,2002,75(3):250-259.
Effect of leech extract on thrombin induced monkey RF/6A cell in expressing angiogenesis-promotingfactor TNF-α
CHU Li,ZHENG Yanlin,LI Yan,et al.Chengdu University of Traditional Chinese Medicine,Chengdu 610072,China
OBJECTIVE To observe the affection of Leech extract to RF/6A cell by thrombin-induced and to investigate the mechanism of preventive affection of retinal choroidal neovascularization.METHODS RF/6A cell cultured in vitro by digestion culture,and induced by thrombin(20 μ/ml,2,4,6,8,10,12,24 hour)to observe the express of TNF-α cytokine.Simultaneously,we observed the express of TNF-α by leech extract(64 mg/ml)to RF/6A cell,with or without thrombin-induced.RESULTS The leech extract could decline the TNF-α express of RF/6A cell,with or without thrombin-induced.CONCLUSIONS Leech extract could prevent the retinal vascular disease,from a certain extent,by blocking thrombin activation to reduce retinal angiogenesis factor TNF-α expression to achieve.
leech extract;thrombin;retinal endothelial cell;TNF-α
R285
A
1002-4379(2015)05-0314-04
10.13444/j.cnki.zgzyykzz.2015.05.002
中國國家博士點基金資助課題(編號:20050633003)
1成都中醫(yī)藥大學,成都610072
2成都中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院眼科
3四川省瀘州醫(yī)學院附屬中醫(yī)醫(yī)院眼科
4云南省中醫(yī)學院附屬醫(yī)院眼科
鄭燕林,E-mail:zyl3327@163.com