呂 倩,王顏顏,劉濤華,牟麗麗,陳 燕,康穎倩
(貴州醫(yī)科大學(xué)微生物學(xué)教研室,貴州貴陽 550004)
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念珠菌RPB1基因片段PCR擴(kuò)增條件的優(yōu)化**?
呂倩,王顏顏,劉濤華,牟麗麗,陳燕,康穎倩**
(貴州醫(yī)科大學(xué)微生物學(xué)教研室,貴州貴陽550004)
[摘要]目的:優(yōu)化念珠菌RNA聚合酶Ⅱ大亞基(RPB1)基因片段的PCR擴(kuò)增條件,篩選適宜念珠菌RPB1 的PCR擴(kuò)增體系。方法:使用改良CTAB法提取念珠菌基因組DNA,分別調(diào)整念珠菌RPB1基因片段PCR擴(kuò)增過程中ddH2O含量、DNA模板含量、退火溫度或循環(huán)次數(shù),比較不同反應(yīng)體系的PCR擴(kuò)增效果。結(jié)果:在26 μL 的PCR反應(yīng)體系中,DNA模板含量2 μL、退火溫度為56℃、循環(huán)40次時(shí)是念珠菌RPB1基因片段最穩(wěn)定的PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系,擴(kuò)增得到24條皺褶念珠菌RPB1基因片段序列,上傳至GenBank。結(jié)論:優(yōu)化PCR擴(kuò)增條件后,念珠菌RPB1基因片段的目的條帶更明亮、清晰,為基因測(cè)序及深入研究念珠菌的工作奠定了基礎(chǔ)。
[關(guān)鍵詞]念珠菌屬; RPB1基因片段; CTAB;基因擴(kuò)增
**通信作者E-mail: joycekangtokyo@ qq.com
網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間: 2016-02-23網(wǎng)絡(luò)出版地址: http: / /www.cnki.net/kcms/detail/52.5012.R.20160223.2106.062.html
近年來,由于免疫抑制劑和廣譜抗生素的濫用,以及艾滋病患者的增多,人群感染念珠菌呈明顯上升趨勢(shì)[1]。目前,除了間隔區(qū)和核糖體大亞基序列被廣泛應(yīng)用于念珠菌菌屬的分類鑒定之外,RPB1基因片段與其他基因片段(如ITS、ACT1)相結(jié)合也廣泛地應(yīng)用于真菌研究中[2]。RPB1基因片段是負(fù)責(zé)編碼RNA聚合酶Ⅱ最主要的功能亞基,具有單拷貝和進(jìn)化速率慢的特點(diǎn)[3],Ku等[4-5]認(rèn)為以RPB1基因作為物種之間鑒定的標(biāo)準(zhǔn)比核糖體基因有優(yōu)勢(shì)。本課題前期研究發(fā)現(xiàn),多位點(diǎn)序列分型方法對(duì)皺褶念珠菌RPB1基因擴(kuò)增后往往會(huì)出現(xiàn)目的條帶不清晰、擴(kuò)增特異性差等情況,不利于測(cè)序及序列分析,因此,此次研究通過探索RPB1基因片段擴(kuò)增的條件,以找到最佳PCR反應(yīng)體系,為今后對(duì)念珠菌RPB1基因片段的研究提供可靠的試驗(yàn)數(shù)據(jù)。
1.1菌種與試劑
24株經(jīng)間隔區(qū)和核糖體大亞基序列鑒定過的皺褶念珠菌,由荷蘭真菌多樣性研究中心惠贈(zèng),見表1。CTAB緩沖液: 1 mol/L Tris-HCl (pH8.0) 50 mL + NaCl 40.91 g + 0.5 mol/L EDTA(pH8.0) 20 mL + CTAB10 g,ddH2O定容至500 mL; SEVAG(氯仿∶異丙醇= 24∶1),異丙醇,6Xloading Buffer (0.25%溴酚藍(lán))。TE(pH8.0) : 10 mmol/L Tris-HCl (pH8.0) +1 mmol/L EDTA(pH8.0)。PDA培養(yǎng)基購自日本Ltd公司,PCR Mix及DNA marker購自永博鑫生物技術(shù)公司。
表1 24株試驗(yàn)皺褶念珠菌種Tab.1 24 isolates of C.rugosa species included in the study
1.2提取念珠菌DNA
采用CTAB法[6]提取念珠菌基因組DNA:取菌體約60 mg于1.5 mLEP管中,加入CTAB-buffer-2X 490 μL及10%聚乙烯吡咯烷酮100 μL,Mo-Bio漩渦器充分混勻10 min,60℃水浴箱60 min,冰箱片刻使其快速降到室溫,待菌落溶解后,加入SEVAG 500 μL,震蕩2 min,形成乳濁液,14 000 r/ min離心10 min,收集上清液于1 mL EP管中,加入冰預(yù)冷異丙醇(體積為上清液的2/3),混勻,上下顛倒離心管,-20℃過夜培養(yǎng),14 000 r/min離心10 min,棄上清,加入冰預(yù)冷70%乙醇1 mL,輕輕混勻,14 000 r/min離心2 min,棄乙醇,重復(fù)兩次,室溫干燥后加入1×TE 50 μL,于-20℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3調(diào)整C.pseudorugosa擴(kuò)增條件
根據(jù)參考文獻(xiàn)[7]RPB1基因片段擴(kuò)增條件,對(duì)可能影響擴(kuò)增效果的因素DNA模板量、ddH2O、退火溫度及循環(huán)次數(shù)進(jìn)行單因素調(diào)整試驗(yàn)。以念珠菌(CBS12857)基因組DNA為模板,以Chaves[7]擴(kuò)增引物(GenBank編號(hào)EF599409) rbp1F-5'CATGTGAGCTGGTGTGTATGC和rbp1R-5' CGAGCTTGAACGTCAAATCA分別為前后引物,用PCR beads (Ready-To-Go; Amersham Pharmacia Co.Ltd.,Piscataway,NJ,USA)在26 μL反應(yīng)體系中擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系含Mix 13 μL,ddH2O 10 μL,前后引物各1 μL,DNA模板濃度分別為1、1.5、2、2.5及3 μL,梯度PCR(7個(gè)不同退火溫度: 53、54、55、56、57、58 及59℃) 45 s;循環(huán)次數(shù)分別為35、36、37、38、39、40次。擴(kuò)增結(jié)束將產(chǎn)物于1.0%瓊脂糖凝膠電泳(電壓100 V),紫外燈下觀察,并將PCR產(chǎn)物送測(cè)序公司測(cè)序。
PCR產(chǎn)物電泳結(jié)果顯示,擴(kuò)增的目的條帶在400 bp左右。當(dāng)反應(yīng)體系為Mix 13 μL、前后引物各1 μL、ddH2O 9 μL、DNA模板量2 μL、退火溫度56℃、循環(huán)次數(shù)為40次時(shí),PCR產(chǎn)物條帶最清晰明亮,且大小完整,無明顯拖帶,見圖1-C6;當(dāng)DNA模板量為1 μL、ddH2O 10 μL時(shí),擴(kuò)增目的條帶相對(duì)較淡,稍有雜帶,見圖1-A2;當(dāng)退火溫度為56℃時(shí),雖然目的條帶清晰明亮,但有明顯雜帶,見圖1-B4,不能用于念珠菌RPB1的直接測(cè)序分析。本研究成功擴(kuò)增出24株念珠菌RPB1基因片段,測(cè)序結(jié)果峰圖效果理想,沒有出現(xiàn)套峰現(xiàn)象。序列長(zhǎng)度約為460 bp,GenBank登錄號(hào)見表2。
表2 24株念珠菌RPB1基因擴(kuò)增片段在GenBank中的菌株及序列登錄號(hào)Tab.2 Strains and sequence registration number of 24 strains of Candida RPB1 gene amplification fragment in GenBank
本課題前期研究發(fā)現(xiàn),RPB1基因在PCR擴(kuò)增過程中,會(huì)出現(xiàn)目的條帶不清晰、擴(kuò)增特異性差等情況。推測(cè)RPB1基因末端的CTD結(jié)構(gòu)域(C-terminal domain)在酵母菌中拷貝時(shí),由于拷貝數(shù)量的改變引起細(xì)胞生長(zhǎng)缺陷或死亡。因此,為保證在提取基因組DNA之前的菌株活性,選用營(yíng)養(yǎng)條件稍高的馬鈴薯瓊脂培養(yǎng)基對(duì)其進(jìn)行培養(yǎng),在37℃條件下活化兩次。本次研究采用改良CTAB方法提取菌株DNA,通過利用冰凍試劑快速析出DNA,-20℃過夜,冰預(yù)冷2次,除去雜質(zhì),吹干后利用TE進(jìn)行稀釋,提高了DNA純度。
注: 1、3、5為DNA marker; 2為DNA模板量1 μL; 4為DNA模板量2 μL,退火溫度55℃; 6為DNA模板量2 μL,退火溫度56℃圖1 念珠菌RPB1基因擴(kuò)增產(chǎn)物凝膠電泳結(jié)果Fig.1 Result of PCR gel electrophoresis of Candida RPB1 gene
PCR反應(yīng)是對(duì)皺褶念珠菌進(jìn)行測(cè)序分析中的一個(gè)重要環(huán)節(jié),它的擴(kuò)增效果是反應(yīng)體系和反應(yīng)程序綜合作用的結(jié)果[8]。本研究通過在其他因素不變的情況下,變化其中的一個(gè)因素,得到最適宜的RPB1基因片段的PCR擴(kuò)增條件。首先通過改變反應(yīng)體系中模板DNA的體積以找到最適的模板DNA量,試驗(yàn)結(jié)果表明通常加入的模板DNA體積為2μL時(shí),擴(kuò)增出的目的條帶清晰。由此可見,模板DNA含量的高低會(huì)影響PCR反應(yīng)的結(jié)果。模板DNA量過低,會(huì)導(dǎo)致PCR產(chǎn)物的濃度也過低,目的條帶暗淡;模板DNA量過高時(shí)會(huì)導(dǎo)致模板與引物競(jìng)爭(zhēng),模板與模板之間互相結(jié)合,雜帶增多。PCR反應(yīng)程序中變性溫度與DNA模板中G-C含量有關(guān),G-C間由三個(gè)氫鍵相連,而A-T間只有兩個(gè)氫鍵相連,相比較來說,G-C結(jié)構(gòu)更加穩(wěn)定。所以當(dāng)模板G-C含量較高時(shí),往往需要較高的解鏈溫度或添加一定量的二甲基亞砜(DMSO)。試驗(yàn)中的引物長(zhǎng)度為21 bp,G-C含量約為52%,不需要加入DMSO,采用常用變性溫度94℃。退火溫度是影響PCR特異性的較重要因素,退火溫度太低,會(huì)導(dǎo)致目的條帶不出現(xiàn)、不清晰或出現(xiàn)非目的條帶;退火溫度太高,擴(kuò)增量會(huì)減少,有可能導(dǎo)致目的條帶的缺失。因此適宜的退火溫度能夠提高擴(kuò)增的特異性,在理想狀態(tài)下,退火溫度足夠低,以保證引物同目的序列有效退火,同時(shí)還要足夠高,以減少非特異性結(jié)合[9]。循環(huán)次數(shù)決定PCR擴(kuò)增程度,一般選在30~40次之間,循環(huán)次數(shù)越多,非特異性產(chǎn)物的量亦隨之增多。Mg2 +、Taq DNA酶、dNTP濃度對(duì)PCR反應(yīng)體系的影響也很大。Taq DNA酶濃度過高可引起非特異性擴(kuò)增,濃度過低則合成產(chǎn)物量減少; dNTP濃度過低會(huì)降低PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量、影響擴(kuò)增效率,濃度過高時(shí)又能與Mg2 +結(jié)合,使游離的Mg2 +濃度降低。本試驗(yàn)直接使用的是PCR Mix(由試劑公司將Mg2 +、Taq DNA酶、dNTP等成分混合在一起合成),降低了配制試劑過程中出現(xiàn)誤差的幾率,減少試驗(yàn)時(shí)間,提高實(shí)驗(yàn)效率。
綜上,在26 μL的PCR反應(yīng)體系中,DNA模板含量為2 μL、退火溫度為56℃、循環(huán)40次,所得PCR產(chǎn)物條帶最清晰明亮。在此擴(kuò)增條件下,本研究成功得到了24株念珠菌的RPB1基因序列。
[1]Pemán J,Zaragoza R,Salavert M.Prevention and control of nosocomial and health-care facilities associated infections caused by species of Candida and other yeasts[J].Rev Esp Quimioter,2013(4) : 298-311.
[2]Reeb V,Lutzoni F,Roux C.Contribution of RPB2 to multilocus phylogenetic studies of the euascomycetes (Pezizomycotina,fungi) with special emphasis on the lichenforming Acarosporaceae and evolution of polyspory[J].Molecular Phylogenetics and Evolution,2004(3) : 1036-1060.
[3]Murakami S.Hepatitis B virus X protein: structure,function and biology[J].Intervirology,1999(2/3) : 81-99.
[4]燕薇,沈中元,唐旭東,等.藍(lán)葉蟲微孢子蟲RPB1基因片段序列的測(cè)定及其系統(tǒng)發(fā)育分析[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2014(23) : 4736-4744.
[5]Ku CT,Wang CY,Tsai YC,et al.Phylogenetic analysis of two putative Nosema isolates from Cruciferous Lepidopteran pests in Taiwan[J].Journal of Invertebrate Pathology,2007(1) : 71-76.
[6]吳則東,王茂芊,胡珅,等.一種適用于PCR擴(kuò)增的甜菜干種子DNA快速提取方法的研究[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2013(30) : 69-72.
[7]Guilherme MC,Giselar RT,Ana Carolina BP,et al.Candida mesorugosa sp.Nov.,a novel yeast species similar to Candida rugosa isolated from a tertiary hospital in Brazil[J].Medical Mycology,2012(1) : 1-12.
[8]李立群,王小利,鄭錦娟,等.影響聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)實(shí)驗(yàn)效果的基本因素[J].實(shí)驗(yàn)室研究與索,2011(7) :38-40.
[9]金方,陳玉如,王顏顏,等.放線菌16S rDNA片段擴(kuò)增方法的優(yōu)化[J].貴州醫(yī)藥,2014(6) : 483-486.
(2015-10-27收稿,2015-12-30修回)
中文編輯:戚璐;英文編輯:趙毅
Optimization of PCR Amplification Condition of Candida RPB1
LV Qian,WANG Yanyan,LIU Taohua,MOU Lili,CHEN Yan,KANG Yingqian
(Department of Micro-biology,Guizhou Medical University,Guiyang 550004,Guizhou,China)
[Abstract]Objective: To optimize PCR amplification condition of Candida RNA polymeraseⅡrbcl (RPB1) gene fragment,screening appropriate PCR amplification system of Candida RPB1.Methods: Adopting modified CTAB method to extract Candida genome DNA,adjusting ddH2O content of Candida RPB1 gene fragment PCR amplification process,DNA mould content,annealing or number of cycles respectively; comparing PCR amplification effect of different response system.Results: In 26 μL PCR response system,Candida RPB1 gene fragment was in the most stable PCR amplification amplification when DNA mould content was 2 μL,annealing was 56℃and number of cycles was 40; amplification yielded 24 strains of Candida rugosa RPB1 gene fragment sequence and uploaded to GenBank.Conclusion: After optimizing PCR amplification conditions,target band of Candida RPB1 gene fragment was obvious and clear,which laid the foundation of gene sequencing and in-depth research of Candida.
[Key words]Candida; RPB1 gene fragment; CTAB; gene amplification
*[基金項(xiàng)目]國(guó)家自然科學(xué)基金(31060006,31260029) ;貴州省社會(huì)發(fā)展科技攻關(guān)項(xiàng)目[黔科合SY字(2011) 3017號(hào)];貴陽市科技局社會(huì)發(fā)展與民生計(jì)劃[筑科合同(201103) 16號(hào)]
[中圖分類號(hào)]R34-33
[文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A
[文章編號(hào)]1000-2707(2016) 02-0135-04