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酶法制備南瓜籽殼纖維低聚糖

2016-12-14 05:24張珍林
皖西學院學報 2016年5期
關鍵詞:南瓜籽低聚糖葡聚糖

張珍林

(皖西學院 生物與制藥工程學院,安徽 六安 237012)

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酶法制備南瓜籽殼纖維低聚糖

張珍林

(皖西學院 生物與制藥工程學院,安徽 六安 237012)

以南瓜籽殼纖維為原料,采用酶法制備纖維低聚糖,并結(jié)合高效液相色譜法(HPLC)進行定量測定。結(jié)果表明:利用β-葡聚糖酶在酶解溫度50 ℃、酶解時間2.5 h、酶用量4 U/g的情況下酶解,可以得到較高比例的葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和纖維四糖,最終計算纖維低聚糖得率為12.2 g/100 g。

南瓜籽殼纖維;纖維低聚糖;β-葡聚糖酶

南瓜一種葫蘆科植物的果實,具有全面而又豐富的營養(yǎng);南瓜的種籽同樣是國內(nèi)外醫(yī)藥界公認的功能性食品[1],這種功能性食物目前的利用形式往往都是取籽棄殼。查文獻知道,正常狀態(tài)下,殼占整個南瓜籽的重量的60%,假若某地一年產(chǎn)南瓜籽5萬噸,那就相當于約3萬噸的殼可能被遺棄,據(jù)醫(yī)學研究報告,南瓜籽殼能作為某些特殊功能藥劑的原料,使糖尿病患者和高血壓患者有明顯的醫(yī)療康復作用和緩解作用[2-4],這塊巨大的資源能盡快地開發(fā)和利用,不僅可以避免環(huán)境污染,又可以增加種植者的收益。

纖維低聚糖亦稱纖維寡糖(cello-oligosaccharide),文字描述指具有2~10個葡萄糖單體通過β-1,4糖苷鍵鏈接而成的線性低聚糖,具有一定功能性的低聚糖;這種寡糖能促進人和動物體腸道雙歧桿菌增殖,利于腸道蠕動,同時腸道也不會吸收[5-7]。另外,由于纖維低聚糖帶有甜味,甜度約為蔗糖的30%~40%,可以作為食品的甜味添加劑,代替蔗糖用于糖尿病患者的食品(如纖維二糖、纖維三糖)。β-1,4糖苷鍵的鏈接使得纖維低聚糖產(chǎn)生了如下的特性:結(jié)構(gòu)剛性強、分子質(zhì)量小、穩(wěn)定性好等[8-10],加大了應用范圍,提高了應用前景。

現(xiàn)在測定纖維低聚糖的方法有很多,考慮本實驗測定物料的要求,選用高效液相色譜法(HPLC)是最簡單、最快速、最精確;運用HPLC法,以紫外檢測器對南瓜籽殼粉中的纖維低聚糖組分進行測定。結(jié)合酶法制備纖維低聚糖,為南瓜籽殼纖維低聚糖的定向制備提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

南瓜籽殼粉,自制;β-葡聚糖酶,武漢宏信康精細化工有限恭喜;葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖、纖維四糖標準品,美國AccuStandard公司;氫氧化鈉與乙酸鈉為優(yōu)級純;其他藥品及試劑均為市售分析純。

1.2 儀器與設備

Waters Breeze高效液相色譜系統(tǒng)(配有可變波長紫外檢測器和Rev.A.06.03色譜工作站);HMBTO1型超微粉碎機;DZF-6050型真空干燥箱;UV-2102C型紫外-可見分光光度計。

1.3 方法

1.3.1 原料預處理

選擇外表光滑、無病蟲害南瓜籽殼洗滌數(shù)次,去除雜質(zhì),80 ℃烘干后超微粉碎過220目篩備用。采用硝酸-乙醇法[11]測定南瓜籽殼粉的纖維素含量為 44.83%。

1.3.2 纖維低聚糖的制備

1.3.2.1 工藝流程

預處理的南瓜籽殼粉→一定濃度的南瓜籽殼粉懸濁液(加入pH 5.0 檸檬酸緩沖溶液)→酶解(β-葡聚糖酶)→滅酶(100 ℃ 12 min)→抽濾,濾液即為纖維低聚糖溶液。

1.3.2.2 單因素實驗

選擇對酶解南瓜籽殼粉纖維低聚糖影響較大的三個因素,酶解溫度、酶解時間、酶用量,進行單因素實驗。選取不同的單因素條件,酶解溫度(35 ℃、40 ℃、45 ℃、50 ℃、55 ℃、60 ℃、65 ℃),酶解時間(1 h、2 h、3 h、4 h、5 h、6 h、7 h)和酶用量(3 U/g、4 U/g、5 U/g、6 U/g、7 U/g、8 U/g、9 U/g),進行酶解,得到的酶解產(chǎn)物通過HPLC法定量顯示,觀察圖譜發(fā)現(xiàn)不同的單因素條件下,纖維低聚糖各組分的質(zhì)量濃度和比例都不一樣,讀取峰值帶入公式,從而確定最佳的各單因素條件。

1.3.3 纖維低聚糖的HPLC檢測

1.3.3.1 色譜條件

色譜柱:CarboPac 18-100分析柱(4.6 mm×250 mm),檢測器:紫外檢測器,流動相:3.0 mmol/L 甲醇水溶液,柱溫:40 ℃,進樣量:10 μL,流速:0.8 mL/min。

1.3.3.2 標準溶液的配制及檢測

精確稱取1 mg葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和纖維四糖標準品,溶于10 mL去離子水中,配制成濃度為100 μg/mL的標準品溶液,冷藏保存待測。

1.3.3.3 南瓜籽殼粉樣品檢測

精確稱取0.1 mg經(jīng)過酶解的南瓜籽殼粉樣液,用200 mL去離子水稀釋,得到0.5 μg/mL的稀釋樣液,進樣前需經(jīng)0.45 μm水系濾膜過濾后,用微孔進樣器注入儀器。

1.3.4 纖維低聚糖得率計算

纖維低聚糖得率/%=

×100

2 結(jié)果與分析

2.1 處理樣品的酶制劑選擇

樣品南瓜籽殼粉經(jīng)過一系列的前處理后,組分也就很簡單,基本都是大分子的纖維素,由于纖維素酶的酶系復雜性,酶解時斷開糖苷鍵比較凌亂,得到的酶解產(chǎn)物也不只是低聚糖,增加檢測的復雜性,從根本出發(fā)考慮纖維素是由β-1,4-糖苷鍵連接一系列葡萄糖分子構(gòu)成[12-14],因此本實驗決定利用β-葡聚糖酶進行酶解,結(jié)合HPLC的定量分析發(fā)現(xiàn)β-葡聚糖酶,能準確地切斷鏈接葡萄糖的β-1,4糖苷鍵,簡便有效地分解出纖維低聚糖的各組分,使得定量更加準確。

2.2 測纖維低聚糖的色譜條件

HPLC法測定含有極性基團的大分子時一般選用水作為流動相,實驗過程發(fā)現(xiàn),簡單的水流動相不能很好分離纖維低聚糖各組分;通過使用混合流動相甲醇水溶液不僅可以使分離度提高,而且還可以明顯降低分離時間,加入3.0 mmol/L 的甲醇效果最佳??紤]實驗樣品的本身性質(zhì),在進行流速設定時,分別為0.5 mL/min、0.8 mL/min、1 mL/min進行預實驗,結(jié)果發(fā)現(xiàn),流速為0.8 mL/min時,峰形保留時間恰當,分離效果最佳。

2.3 纖維低聚糖色譜分析

圖1 標準品HPLC圖(注:1纖維四糖;2纖維三糖;3纖維二糖;4葡萄糖)

圖2 樣品HPLC圖(注:1纖維四糖;2纖維三糖;3纖維二糖;4葡萄糖)

標準品及南瓜籽殼粉樣品圖譜如圖1和圖2。通過分析樣品測定圖譜發(fā)現(xiàn),在色譜圖中通過與標準品單糖保留時間比較后判斷該樣品用β-葡聚糖酶可以酶解出葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和纖維四糖,在樣品圖中除了和單糖圖譜相對應的峰形,距離纖維四糖附近保留6 min處有一明顯色譜峰,通過查資料初步判斷可能是纖維五糖[15]。因此,對進一步分離南瓜籽殼粉中的纖維低聚糖組分提供了一定的基礎。

2.4 標準回歸方程

稀釋標準品溶液按照10、20、40、60、80、100 μg/mL的梯度,經(jīng)0.45 μm水系濾膜過濾后,用微量進樣器分別進樣分析,根據(jù)結(jié)果計算以質(zhì)量濃度為橫坐標,峰面積為縱坐標得標準曲線回歸方程見表1。讀取表1數(shù)據(jù)可以明顯看出,四種糖的線性相關系數(shù)R2均大于0.99,這是四個線性特征非常明顯的實驗模型,可以作為定量的依據(jù)。

表1 標準回歸方程

2.5 最佳酶解溫度

觀察圖3發(fā)現(xiàn),最佳的酶解溫度應為50 ℃,在50 ℃之前,隨著溫度的升高,產(chǎn)物的質(zhì)量濃度是逐漸增加,達到50 ℃葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和纖維四糖的質(zhì)量濃度最大,繼續(xù)升溫,產(chǎn)物的質(zhì)量濃度又開始下降,說明溫度升高影響了酶的活力,降低了酶的酶解質(zhì)量。因此,本實驗最佳的酶解溫度為50 ℃,通過峰面積計算各組分所占比例,纖維二糖(31.8%)、葡萄糖(26.8%)、纖維三糖(9.45%)、纖維四糖(4.12%)。

圖3 酶解溫度對酶解南瓜籽殼粉纖維低聚糖的影響

2.6 最佳酶解時間

觀察圖4發(fā)現(xiàn),最佳的酶解時間應為2.5 h,在2.5 h之前,酶解產(chǎn)物各組分的質(zhì)量濃度都是增加狀態(tài),在2.5 h之后,聚合度小的葡萄糖、纖維二糖濃度繼續(xù)增加,但很慢,聚合度稍大的纖維三糖、纖維四糖濃度則呈現(xiàn)下降的趨勢。分析此原因主要是由于隨著時間的增加β-葡聚糖酶也會隨機切斷聚合度稍大的纖維三糖和纖維四糖,成為聚合度小的纖維二糖和葡萄糖[16]。因此本實驗最佳的酶解時間為2.5 h,通過峰面積計算各組分所占比例,纖維二糖(40.9%)、葡萄糖(32.3%)、纖維三糖(6.21%)、纖維四糖(3.33%)。

圖4 酶解時間對酶解南瓜籽殼粉纖維低聚糖的影響

2.7 最佳酶用量

觀察圖5發(fā)現(xiàn),最佳的酶用量應為4 U/g,在4 U/g之前,增加酶量,各組分質(zhì)量濃度都是大幅度的增加狀態(tài),在4 U/g之后,葡萄糖和纖維二糖繼續(xù)增加,纖維三糖稍有下降趨勢,但纖維四糖的量卻在5 U/g時達到最大,此后隨著酶量的加大,纖維三糖和纖維四糖開始減少;分析是由于酶量的加大,體系中游離酶增加,一方面積極酶解大分子低聚糖,另一方面在反應中又進一步酶解了聚合度大的纖維三糖和纖維四糖。因此,綜合考慮本實驗最佳的酶用量4 U/g,通過峰面積計算各組分所占比例,纖維二糖(31.25%)、葡萄糖(22.8%)、纖維三糖(7.75%)、纖維四糖(4.23%)。

圖5 酶用量對酶解南瓜籽殼粉纖維低聚糖的影響

3 結(jié)論

選用β-葡聚糖酶酶解,通過單因素確定了酶解溫度、酶解時間、酶用量三個主要實驗因素的取值范圍,配合HPLC法定量分析,以CarboPac 18-100分析柱(4.6 mm×250 mm),3.0 mmol/L甲醇水溶液流動相,0.8 mL/min流速檢測南瓜籽殼粉中的纖維低聚糖,同時以標準品的外標法進一步確定了定量的準確性,線性相關系數(shù)R2>0.99,說明該實驗模型很好。質(zhì)量濃度的最大值確定了最佳酶解條件:酶解溫度50 ℃、酶解時間2.5 h、酶用量4 U/g,在此最佳條件上計算纖維低聚糖為12.2 g/100 g。 實驗結(jié)果顯示此法簡便、準確,為后續(xù)開發(fā)南瓜籽殼粉深加工食品提供了一定的基礎資料。

通過HPLC樣品圖譜發(fā)現(xiàn)酶解產(chǎn)物中除了存在葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和纖維四糖外,還可能存在豐富的纖維五糖,但由于標準品的不具備,沒有進一步進行認證實驗,這樣的一個實驗結(jié)果也為繼續(xù)研發(fā)南瓜籽殼的功能特性提供了依據(jù)。

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Preparation of Cello-oligosaccharides from Pumpkin Seeds Shell Fiber by Enzymatic Method

ZHANG Zhenlin

(CollegeofBiologicalandpharmaceuticalEngineering,WestAnhuiUniversity,Lu’an237012,China)

An enzymatic method for the preparation of cello-oligosaccharides from pumpkin seeds shell fiber was developed, and HPLC was used for quantitative determination. The results showed that the hydrolysis obtained after 50 ℃ of hydrolysis with 2.5 h of hydrolysis with 4 U/g β-glucanase contained a high proportion of glucose, cellobiose, cellotriose and cellotetrose, and the yield of cello-oligosaccharides was 12.2 g/100 g under these conditions.

pumpkin seeds shell fiber; cello-oligosaccharides; β-glucanase

2016-05-06

六安市定向委托皖西學院市級研究項目(2013LW020)。

張珍林(1985-),女,安徽霍邱人,助教,碩士,研究方向:食品研究與開發(fā)。

TS241

A

1009-9735(2016)05-0075-04

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