吳殿磊,徐光華,劉娜(1西藏民族大學附屬醫(yī)院,陜西咸陽7108;延安大學附屬醫(yī)院)
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HBV DNA整合與乙型肝炎、PHC關(guān)系的研究進展
吳殿磊1,2,徐光華2,劉娜2
(1西藏民族大學附屬醫(yī)院,陜西咸陽712082;2延安大學附屬醫(yī)院)
乙型肝炎病毒(HBV)是導致慢性肝炎的主要病因,同時亦是原發(fā)性肝細胞癌(PHC)的主要危險因素之一,研究證實HBV可通過整合自身基因進入到宿主基因組中或通過其結(jié)構(gòu)蛋白、分泌蛋白,或通過表觀遺傳導致宿主基因突變,突變主要包括肝細胞部分DNA缺失和染色體重排等。HBV DNA整合對病毒本身和宿主肝細胞可產(chǎn)生影響,系列研究表明,乙型肝炎慢性化和PHC的發(fā)生發(fā)展與HBV DNA選擇性整合可能存在關(guān)聯(lián),與乙型肝炎慢性化和PHC相關(guān)聯(lián)整合位點的鑒定,將為乙型肝炎慢性化機制研究提供新的思路和線索,對未來臨床基因診斷和治療CHB及PHC有指導意義。
乙型肝炎;原發(fā)性肝細胞癌;乙型肝炎病毒DNA;整合位點鑒定
HBV是迄今發(fā)現(xiàn)最小的不完全環(huán)狀嗜肝DNA病毒,HBV感染可致急慢性乙肝,亦是誘發(fā)原發(fā)性肝細胞癌(PHC)的重要危險因素之一。HBV DNA可通過整合進入到宿主基因組中或通過其編碼的結(jié)構(gòu)蛋白、分泌蛋白,或通過表觀遺傳導致宿主基因突變和染色體重排[1],突變主要包括病毒基因、宿主基因和染色體的變化,HBV DNA整合對病毒本身和宿主肝細胞可產(chǎn)生影響,部分突變與乙肝慢性化和終末期肝病(肝硬化、PHC)有關(guān)?,F(xiàn)就HBV DNA整合與慢性乙肝、隱匿性HBV感染(OHBI)、PHC的關(guān)系綜述如下,以期為乙肝慢性化機制研究及PHC基因診斷和治療提供新的思路和線索。
雖然HBV是DNA病毒,但因其在復制過程中存在獨特的前基因組反轉(zhuǎn)錄過程,所以其基因組有機會整合至人基因組中。與逆轉(zhuǎn)錄病毒的感染不同,HBV DNA整合不是病毒復制所必須,所以HBV基因整合在其自然史中并非常規(guī)事件[2,3]。1980年首次在乙肝相關(guān)性肝細胞癌中檢測到HBV DNA整合[4],以后相繼在急、慢性乙肝、肝癌組織中檢測到多種不同形式的HBV DNA整合[3,5~8]。HBV基因整合至宿主基因組中有利于其持久感染,長期的慢性炎癥可致肝細胞生命周期改變和增殖,這就增加了宿主基因組DNA終端的數(shù)量,從而有利于HBV DNA整合到宿主基因組中,這一過程拓撲異構(gòu)酶I是關(guān)鍵性因子[9,10]。宿主基因組最常見的改變是倒立重復和缺失[4]。研究表明,HBV基因整合方式分為起始于順向重復序列(DR)1,DR1向負鏈3'端延伸;起始于DR1向負鏈5'端延伸;起始于DR2向負鏈3'端延伸;起始于DR2向負鏈5'端延伸[2,11]。
慢性炎癥或病毒重疊感染可使肝細胞暴露于氧化應激或誘變環(huán)境,喪失DNA修復能力,這可能是HBV DNA能整合至宿主基因組的重要原因[9]。HBV整合可誘導宿主基因組相應位置重排或部分缺失[12]。近期研究表明HBV DNA整合并非完全隨機,存在優(yōu)先選擇性。基因轉(zhuǎn)位、融合、缺失和廣泛的基因組不穩(wěn)定性可能是HBV DNA整合的原因,整合后宿主基因組的改變有機會產(chǎn)生選擇性肝細胞克隆,HBV從而獲益[4]。HBV基因整合一方面有利于其生存,另一方面可致宿主基因組某些位點突變,部分突變與乙肝慢性化有關(guān),亦與PHC的發(fā)生發(fā)展相關(guān)。
HBV感染是PHC的重要危險因素之一,文獻報道,80%以上的肝癌組織中可檢測到HBV DNA整合[13,14]。肝癌發(fā)生可能是HBV整合的結(jié)果[15],HBV整合可致肝細胞凋亡和抗癌基因信號通路異常[4]。研究[12]發(fā)現(xiàn),應用逆轉(zhuǎn)錄PCR、Alu PCR和限制性核酸酶切位點PCR技術(shù),HBV感染者甚至急性自限性乙肝患者HBV DNA能插入到機體基因組中。在85%~90%與HBV感染相關(guān)性PHC患者中能檢測到整合的HBV DNA[9]。
據(jù)報道大部分整合發(fā)生在常見的基因脆弱部位附近或其中,如易于被刪除、斷裂、重排和擴增的基因[4],控制基因增殖、細胞信號級聯(lián)轉(zhuǎn)導的序列變異或不穩(wěn)定Alu序列和微衛(wèi)星序列變化可致癌基因的發(fā)生發(fā)展。整合到基因組中編碼區(qū)或基因調(diào)節(jié)區(qū)的HBV DNA可改變宿主基因的表達或改變該基因所表達蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)和功能,這有可能導致惡變[9]。整合的HBV DNA表達合成成熟的preS/S和X蛋白觸發(fā)級聯(lián)信號轉(zhuǎn)導亦可使肝細胞發(fā)生惡變[9]。HBV基因組的增強子原件能按照一定方向或與位置無關(guān)的方式激活異源性啟動子,HBV基因增強子能反式激活距離整合處100 kb的宿主細胞基因[4]。
PHC患者HBV DNA整合靶基因區(qū)在早期研究中未明確,最近10年才有部分研究關(guān)注在PHC中HBV DNA整合位點和插入性突變。Paterlini-Bréchot等[5]采用HBV-Alu PCR技術(shù)從肝細胞癌患者標本中分離出9個HBV DNA整合區(qū),這表明病毒導致的突變與PHC有關(guān)。位于HBV DNA整合區(qū)不同的基因具有特定關(guān)鍵性功能,這些功能與細胞信號級聯(lián)轉(zhuǎn)導或許有關(guān)。另外他們發(fā)現(xiàn)HBV DNA整合的靶基因:hTERT和IP3R基因在2例患者腫瘤組織中均出現(xiàn),尤其人端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶基因[5]。Kimbi等[16]擴增5例急性乙肝患者和1例爆發(fā)性肝炎患者血HBV DNA和宿主基因組相應染色體DNA。在1例急性乙肝患者中,HBV DNA整合到宿主染色體7q11.23的位置,這是威廉姆斯-博伊倫綜合征關(guān)鍵區(qū)域1基因所在位置,這個基因包含大量Alu重復序列、重復原件,這些位點是HBV DNA容易插入和重組的位點,且整合子在威廉姆斯-博伊倫綜合征患者通常被刪除基因序列的區(qū)域內(nèi),引起雜合性缺失。該研究組亦提到整合子克隆擴增與腫瘤形成有關(guān),而早期HBV DNA整合可能誘發(fā)肝癌發(fā)生。
Murakami 等[6]以Alu-PCR法分別檢測了19例急性乙肝患者、12例HBV相關(guān)慢性活動性肝炎患者、19例急性乙肝患者中3例肝臟標本中發(fā)現(xiàn)HBV DNA整合、全部12例HBV相關(guān)慢性活動性肝炎患者肝臟標本中均發(fā)現(xiàn)存在病毒整合,表明慢性乙肝HBV DNA整合率顯著高于急性乙肝,推測乙肝慢性化與HBV DNA整合有關(guān)。Shi等[17]報道HBV DNA特定位點整合可致T細胞缺陷,而乙肝慢性化與T細胞缺陷有關(guān)。
Minami等[18]研究慢性HBV感染HBV DNA在肝細胞的整合,在6例患者肝臟組織中他們檢測到42個獨立的HBV DNA和肝細胞基因的結(jié)合部位,其中20個完成染色體定位。表明HBV DNA與宿主基因的每個整合,受到宿主6個基因克隆體中1個的影響。在這6個基因中,AXIN 1 (Axis)是抑制肝癌的基因;EYA3 、bobby sox和odd Oz 2基因?qū)τ谄鞴俚纳L發(fā)育有重要作用,但他們的功能尚未明確。該研究提示HBV DNA優(yōu)先整合到3號染色體?;旌舷蛋籽?MLL)2和4基因亦被認為是HBV DNA優(yōu)先整合的靶基因[19,20]。MLL4基因位于19號染色體19q13.1,該處基因在實體瘤中研究顯示存在擴增和重排。整合后特定位點表達的HBV X (HBx)或MLL4轉(zhuǎn)錄初級產(chǎn)物和蛋白與肝癌的發(fā)生有關(guān)[20]。乙肝慢性化與HBV DNA整合及優(yōu)先的選擇性整合可能存在關(guān)聯(lián)。
早期,人們主要應用印記雜交、克隆測序和各種PCR的方法[20]來確定HBV整合。如今已開發(fā)應用新一代高通量測序(NGS)技術(shù)來鑒定HBV DNA特定的整合位點[21]。NGS亦稱深度測序,與第一代Sanger測序法相比,NGS 技術(shù)具有通量大、時間短、精確度高和信息量豐富等優(yōu)點。NGS技術(shù)已大規(guī)模用于轉(zhuǎn)錄組測序、染色體免疫共沉淀測序、基因組甲基化測序、宏基因組測序、基因組從頭測序和全基因組的重新測序等方面。目前,主要的高通量測序平臺較多,以Hiseq和Miseq應用最為廣泛。
考慮到全基因組測序費用過高,Ding等[22]開發(fā)了另外一種可選的方法,用于鑒定HBV DNA整合位點,這一價廉而有效的方法稱為MAPS法[22]。通過這種方法,除了兩個熟悉的FN1和TERT1靶基因,他們還鑒定出2個新的HBV DNA整合位點基因,即肌動蛋白調(diào)節(jié)4和SMAD5基因。他們發(fā)現(xiàn)HBV DNA優(yōu)先選擇17號染色體,且更多地整合到人基因轉(zhuǎn)錄位點。
OHBI可檢測到HBV DNA,但血清中HBsAg等檢測不到。HBV DNA整合與OHBI關(guān)系尚不清楚,Bhargava等[23]研究發(fā)現(xiàn),OHBI可致外周血淋巴細胞損害,OHBI與氧化應激有關(guān)。Pollicino等[24]報道了1例43歲PLC患者血清HBV和HCV檢測陰性,但HBV-Alu PCR顯示存在HBV DNA整合體,這個整合體位于PARD6G 基因上游,該基因在肝腫瘤組織中過表達。這兩項研究表明OHBI導致基因表達異常可能與癌基因致癌途徑有關(guān)。
HBV DNA有效整合到宿主基因組可增加OHBI幾率,同時亦增加了癌變機會。最常見的HBV整合位點發(fā)生在MLL和hTERT基因,另外,60S核糖體蛋白基因、血小板衍生的生長因子受體基因和鈣信號相關(guān)基因突變亦可能與癌變有關(guān)[3]。
綜上所述,我們可通過PCR、基因測序、基因克隆、芯片和免疫組化等方法來研究HBV DNA對宿主基因組的影響,主要包括與乙肝慢性化和PHC發(fā)生發(fā)展有關(guān)的研究。初步的研究表明乙肝慢性化與HBV DNA整合及優(yōu)先的選擇性整合可能有關(guān),但有待進一步研究證實。由HBV DNA整合引起的宿主基因突變鑒定及如何致PHC成為最近該領(lǐng)域的研究熱點。機體癌基因產(chǎn)生和激活是多因素共同作用的結(jié)果,其中HBV DNA整合到宿主基因組是直接機制之一,其他還可通過其結(jié)構(gòu)蛋白、分泌蛋白,或通過表觀遺傳致宿主基因突變,部分突變與PHC的發(fā)生發(fā)展有關(guān)。但這些因素致癌機制及各因素之間的關(guān)系有待進一步研究。
[1] Tarocchi M, Polvani S, Marroncini G, et al. Molecular mechanism of hepatitis B virus-induced hepatocarcinogenesis[J]. World J Gastroenterol, 2014,20(33):11630-11640.
[2] 哈明昊,魏來.乙型肝炎病毒基因的整合機制及對宿主的影響[J].世界華人消化雜志,2006,14(8):743-746.
[3] Murakami Y, Saigo K, Takashima H, et al. Large scaled analysis of hepatitis B virus (HBV) DNA integration in HBV related hepatocellular carcinomas[J]. Gut, 2005,54(8):1162-1168.
[4] Bonilla GR, Roberts LR. The role of hepatitis B virus integrations in the pathogenesis of human hepatocellular carcinoma[J]. J Hepatol, 2005,42(5):760-767.
[5] Paterlini-Brechot P, Saigo K, Murakami Y, et al. Hepatitis B virus-related insertional mutagenesis occurs frequently in human liver cancers and recurrently targets human telomerase gene[J]. Oncogene, 2003,22(25):3911-3916.
[6] Murakami Y, Minami M, Daimon Y, et al. Hepatitis B virus DNA in liver, serum, and peripheral blood mononuclear cells after the clearance of serum hepatitis B virus surface antigen[J]. J Med Virol, 2004,72:203-214.
[7] Toyoda H, Kumada T, Kaneoka Y, et al. Impact of hepatitis B virus (HBV) X gene integration in liver tissue on hepatocellular carcinoma development in serologically HBV-negative chronic hepatitis C patients[J]. J Hepatol, 2008,48(1):43-50.
[8] Feitelson MA, Lee J. Hepatitis B virus integration, fragile sites, and hepatocarcinogenesis[J]. Cancer Lett, 2007,252(2):157-170.
[9] Pollicino T, Saitta C, Raimondo G. Hepatocellular carcinoma: the point of view of the hepatitis B virus[J]. Carcinogenesis, 2011,32(8):1122-1132.
[10] Schirmacher P, Wang H, Stahnke G, et al. Sequences and structures at hepadnaviral integration: recombination sites implicate topoisomerase I in hepadnaviral DNA rearrangements and integration[J]. J Hepatol, 1995,22(1 Suppl):21-33.
[11] Shih C, Burke K, Chou MJ, et al. Tight clustering of human hepatitis B virus integration sites in hepatomas near a triple-stranded region[J]. J Virol, 1987,61(11):3491-3498.
[12] Lupberger J, Hildt E. Hepatitis B virus-induced oncogenesis[J]. World J Gastroenterol, 2007,13(1):74-81.
[13] Lugassy C, Bernuau J, Thiers V, et al. Sequences of hepatitis B virus DNA in the serum and liver of patients with acute benign and fulminant hepatitis[J]. J Infect Dis, 1987,155(1):64-71.
[14] Sung WK, Zheng H, Li S, et al. Genome-wide survey of recurrent HBV integration in hepatocellular carcinoma[J]. Nat Genet, 2012,44(7):765-769.
[15] Amaddeo G, Cao Q, Ladeiro Y, et al. Integration of tumour and viral genomic characterizations in HBV-related hepatocellular carcinomas[J]. Gut, 2015,64(5):820-829.
[16] Kimbi GC, Kramvis A, Kew MC. Integration of hepatitis B virus DNA into chromosomal DNA during acute hepatitis B[J]. World J Gastroenterol, 2005,11(41):6416-6421.
[17] Shi Y, Lan Y, Cao F, et al. Infected hematopoietic stem cells and with integrated HBV DNA generate defective T cells in chronic HBV infection patients[J]. J Viral Hepat, 2014,21(7):e39-47.
[18] Minami M, Daimon Y, Mori K, et al. Hepatitis B virus-related insertional mutagenesis in chronic hepatitis B patients as an early drastic genetic change leading to hepatocarcinogenesis[J]. Oncogene, 2005,24(27):4340-4348.
[19] Tamori A, Yamanishi Y, Kawashima S, et al. Alteration of gene expression in human hepatocellular carcinoma with integrated hepatitis B virus DNA[J]. Clin Cancer Res, 2005,11(16):5821-5826.
[20] Saigo K, Yoshida K, Ikeda R, et al. Integration of hepatitis B virus DNA into the myeloid/lymphoid or mixed-lineage leukemia (MLL4) gene and rearrangements of MLL4 in human hepatocellular carcinoma[J]. Hum Mutat, 2008,29(5):703-708.
[21] Li S, Mao M. Next generation sequencing reveals genetic landscape of hepatocellular carcinomas[J]. Cancer Lett, 2013,340(2):247-253.
[22] Ding D, Lou X, Hua D, et al. Recurrent targeted genes of hepatitis B virus in the liver cancer genomes identified by a next-generation sequencing-based approach[J]. PLoS Genet, 2012,8(12):e1003065.
[23] Bhargava A, Khan S, Panwar H, et al. Occult hepatitis B virus infection with low viremia induces DNA damage, apoptosis and oxidative stress in peripheral blood lymphocytes[J]. Virus Res, 2010,153(1):143-150.
[24] Pollicino T, Vegetti A, Saitta C, et al. Hepatitis B virus DNA integration in tumour tissue of a non-cirrhotic HFE-haemochromatosis patient with hepatocellular carcinoma[J]. J Hepatol, 2013,58(1):190-193.
國家自然科學基金資助項目(81560102)。
徐光華(E-mail:wdianlei@163.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.25.037
R512.6;R735.7
A
1002-266X(2017)25-0107-03
2017-02-15)