張清平梅鑫柯超陳銀生陳芙蓉陳建良陳忠平
·論 著·
Notch1 通路與膠質(zhì)瘤細胞管道形成能力相關性研究☆
張清平*梅鑫△柯超△陳銀生△陳芙蓉△陳建良※陳忠平△
目的 探索膠質(zhì)瘤細胞來源的管道(glioma clls derived vessels,GCDV)的形成機制。方法 將膠質(zhì)瘤細胞株U87、U251、U373、SF295、T98G、SKMG-4和C6進行體外三維培養(yǎng),觀察其管道形成能力。Western blot檢測各個膠質(zhì)瘤細胞株Notch1、Dll4蛋白的表達情況。結(jié)果 三維培養(yǎng)C6細胞單個視野下(100×)的平均管道數(shù)(25.2±5.0)個,U373為(36.4±3.20)個,U87為(19.0±2.2)個,T98G為(12.6±2.4)個,SF295為(4.0±2.)個,U251為(0.2± 0.4)個,SKMG-4為0。Notch1在U87、U251、T98G、SF295、SKMG-4、C6、U373表達相關密度分別為0.34、0.21、0.79、0.04、0.28、1.75、1.19,與管道形成能力顯著相關(r=0.778,P=0.019);Dll4表達相關密度與管道形成能力不相關(r=0.635,P=0.062)。結(jié)論 Notch1蛋白表達與細胞株管道形成能力密切相關,而Dll4蛋白的表達與細胞株管道形成能力有待進一步探索。
Notch1 膠質(zhì)瘤 三維培養(yǎng) 管道形成
血管擬態(tài)(vasculogenic mimicry,VM)是靶向血管新生治療的重要靶點[1],腫瘤細胞體外培養(yǎng)時管道形成能力是其體內(nèi)發(fā)生血管擬態(tài)能力的反映。目前對于管道形成能力的機制研究提示血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)[2]、血管內(nèi)皮生長因子受體(VEGFR)[3]、CD31[4]、VE鈣粘蛋白[5]、基質(zhì)金屬蛋白2(MMP-2)[6]、層粘連蛋白(laminin)[7]是重要影響因素。我們已經(jīng)發(fā)現(xiàn)膠質(zhì)瘤標本中有明顯的血管擬態(tài)現(xiàn)象發(fā)生,并在膠質(zhì)瘤細胞體外培養(yǎng)時證實了其管道形成能力[8],但影響管道形成能力的因素尚不明了。經(jīng)典的Notch1通路在調(diào)控血管新生上有重要作用[11],而關于其在擬態(tài)管道形成的作用尚未有報道。本研究檢測不同膠質(zhì)瘤細胞株管道形成能力的不同,以及Notch1、以及Notch1的配體Dll4的表達水平之間的差異,并分析膠質(zhì)瘤細胞株管道形成能力與Notch1、Dll4的表達相關性。
1.1 研究對象 實驗所用膠質(zhì)瘤細胞株 U87、U251、T98G、SF295、SKMG-4、C6、U373都由中山大學腫瘤防治中心實驗研究部保存并提供。
1.2 細胞三維培養(yǎng) 細胞均培養(yǎng)于添加10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液(美國Gbico公司)中,培養(yǎng)條件為37℃和5%CO2。取細胞對數(shù)生長期時段進行實驗。將20μL matrigel膠(美國BD公司)平鋪在35mm培養(yǎng)皿中。取狀態(tài)良好的細胞消化成單個細胞后 DMEM培養(yǎng)基重懸并添加 10ng/ mLVEGF和10%胎牛血清。按1×105/mL的細胞濃度接種于matrigel膠;接種后在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)6h后觀察。
1.3 Western blot檢測Notch1、Dll4蛋白的表達情況 常規(guī)方法提取各個細胞株的蛋白,行SDSPAGE電泳,轉(zhuǎn)膜,用50 g/L脫脂奶粉封閉1 h后。一抗為Anti-Notch1、Anti-Dll4(美國Abcam)兔來源單克隆抗體(1:1000)及β-actin(1:10000)兔來源單克隆抗體,二抗(美國Abcam)為辣根過氧化物標記的山羊抗兔抗體 (1:10000),浸泡于發(fā)光液1min后在暗房中將PVDF膜平鋪于壓片盒,取X光片5張鋪于其上,扣緊壓片盒。曝光時間5min,取出壓片盒中X光片投入自動洗片機中沖洗。進行半定量比較分析,并且均采用自身灰度值校正,以目的基因的條帶灰度與管家基因β-actin的灰度比值表示蛋白的表達水平。
1.4 統(tǒng)計學方法 在100×的放大倍數(shù)下隨機選取5個視野進行管道計數(shù),并取平均值。數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標準差表示,應用SPSS 17.0分析,Notch1和Dll4表達水平與細胞系管道形成能力采用Pearson相關性分析,檢測水準α=0.05。
2.1 膠質(zhì)瘤細胞株管道形成能力觀察 按照管道形成形態(tài)以及數(shù)量共分為三類(表1)。第一類為強管道形成細胞株組,為C6和U373細胞株。C6單個視野下(100×)的平均管道數(shù)(25.2±5.0)個,U373為(36.4±3.2)個。C6和U373細胞株形成的管道管壁光滑。這兩株細胞圍成的管道形狀相對規(guī)則,大部分為圓形、橢圓形。每個閉合環(huán)狀的連接處不僅僅只有偽足,更有細胞互相連接形成管道。細胞伸出的偽足數(shù)量明顯減少,C6細胞株幾乎不見有偽足伸出,而U373閉合環(huán)的連接處既有纖細偽足的連接,也有多個細胞相互連接構(gòu)成(圖1)。第二類為弱管道形成能力組,為U87、T98G細胞株。U87單個視野下(100×)的平均管道數(shù)(19.0±2.2)個,T98G為(12.6±2.4)個。U87、T98G細胞株形成的管道大小極不規(guī)則。這兩株細胞在生長過程不斷相互聚集,而且每個細胞伸出較多分支,形成毛刺樣結(jié)構(gòu)。U87細胞之間的連接似乎更為緊密,每個閉合環(huán)狀的連接處的偽足更為粗壯。相比之下T98G的連接更為纖細,而且可以看到除了連接在一處的偽足,每個細胞還有其他未連接在一起的偽足伸出,形態(tài)極似神經(jīng)元細胞的樹突(圖2)。第三類為無管道形成能力組,為SF295、U251和SKMG-4細胞株。SF295單個視野下(100×)的平均管道數(shù)(4.0±2.2)個,U251為(0.2±0.4) 個,SKMG-4為 0。SF295、U251和SKMG-4幾乎沒有管道形成。SF295的管道密度大大減少,幾乎沒有互相連接的閉合環(huán),偶爾見到的少細胞生長的空洞區(qū)域也較小,中間能夠見到多個細胞在空洞區(qū)域穿過,很難找到閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu)。而U251和SKMG-4只能看到細胞平鋪生長,隨著細胞密度的增加而逐漸鋪滿培養(yǎng)皿,完全無典型的環(huán)狀結(jié)構(gòu)(圖3)。
表1 膠質(zhì)瘤細胞株形成管道能力
表2 不同細胞株管道形成數(shù)量以及Notch1 和Dll4蛋白表達相關密度
2.2 Notch1和Dll4的表達情況與膠質(zhì)瘤細胞株管道形成能力的相關性分析 細胞株管道形成數(shù)量、Notch1和Dll4蛋白相對密度見表2。經(jīng)Pearson相關性分析發(fā)現(xiàn)管道形成數(shù)量與Notch1表達的相關性較顯著(r=0.778,P=0.019)。而管道形成數(shù)量與Dll4表達相關性不顯著(r=0.635,P=0.062)。
圖1 C6和U373細胞株形成的管道管壁光滑。這兩株細胞圍成的管道形狀相對更加規(guī)則,大部分為圓形、橢圓形。每個閉合環(huán)狀的連接處不僅僅只有偽足,更有細胞互相連接形成管道。放大倍數(shù)×100,標尺50μm。
圖2 U87、T98G細胞株形成的管道大小極不規(guī)則。這兩株細胞在生長過程不斷相互聚集,而且每個細胞伸出較多分支,形成毛刺樣結(jié)構(gòu)。放大倍數(shù)×100,標尺50μm。
圖3 SF295、U251和SKM G-4幾乎沒有管道形成。SF295的管道密度大大減少,幾乎沒有互相連接的閉合環(huán)。而U251和SKM G-4只能看到細胞平鋪生長,隨著細胞密度的增加而逐漸鋪滿培養(yǎng)皿,完全無典型的環(huán)狀結(jié)構(gòu)。放大倍數(shù)×100,標尺50μm。
抗膠質(zhì)瘤血管新生治療療效一直不理想。有學者研究發(fā)現(xiàn)抗VEGF-A治療時黑色素瘤細胞通過分泌HIF1α募集更多的腫瘤細胞來參與管道形成[9]。然而腫瘤細胞形成管道能力卻大不相同。ZHU等[10]通過研究發(fā)現(xiàn)在肝癌細胞株中BEL-7402和HCCLM6具有管道形成能力,而HepG2卻沒有。BENEDITE等[11]提出Notch1調(diào)控的雙重作用源于結(jié)合的配體不同。現(xiàn)在已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的主要Notch1的配體有:Delta-like 1 (Dll1),Dll3,Dll4, Jagged1和Jagged2。膠質(zhì)瘤中主要表達Notch1,GBM、少突膠質(zhì)細胞瘤和髓母細胞瘤也有Notch2表達。Dll4在Notch1的雙重調(diào)控作用起了關鍵作用。Dll4能阻滯腫瘤血管成熟但在腫瘤血管新生過程中卻表達上調(diào)。Notch1等通路如果作為抗血管治療的靶點將會影響許多正常體細胞的功能,因為這些通路不僅在腫瘤細胞,在很多體細胞都是高表達狀態(tài)。因此相對特異性的靶點才是靶向血管新生的治療研究方向。
目前鮮有關于Dll4-Notch1通路與血管擬態(tài)之間關系的研究。本研究發(fā)現(xiàn)Notch1與血管擬態(tài)之間存在密切的關系。Notch1能促進腫瘤細胞表達內(nèi)皮細胞標記物,同時形成管道樣結(jié)構(gòu)[12]。近來有學者的臨床研究表明Dll4同樣在膠質(zhì)母細胞瘤中高表達。高表達的Dll4也促進了擬態(tài)血管的形成[13]。這與我們在體外實驗得到的結(jié)論一致。
我們的研究初步發(fā)現(xiàn)能夠形成平滑的環(huán)形管道的細胞株Notch1的表達水平相對也高。同樣Dll4的表達也大致與Notch1的表達程度相同,這值得我們進一步研究Dll4-Notch1通路對GBM腫瘤細胞來源管道形成調(diào)控的深層機制。我們希望在拮抗腫瘤血管新生上找到特異性靶點,彌補現(xiàn)有對avastin治療膠質(zhì)瘤的不足。
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The study on Notch1 pathway-related tubular formation of glioma cell lines.
ZHANG Qingping,MEI Xin,KE Chao,CHEN Yingsheng,CHEN Furong,CHEN Zhongping,CHEN Zhongping.Department of Neurosurgery/Neuro-oncology,Sun Yat-sen University Cancer Center,Guangzhou 510060,China.Tel:86-20-87343310.
Objective To explore the mechanism of the formation of glioma cells derived vessels(GCDV). Methods The tubular formation assay was performed on 3D cell cultures of U87,U251,U373,SF295,T98G,SKMG-4 and C6 glioma cell lines.The expression of Notch1、Dll4 were examined by western blot analysis.Result The mean number of vasculogenic channels of cell lines C6,U373,U87,T98G,SF295,U251 and SKMG-4 per area (100×)were 25.2±5.0,36.4±3.2,19.0±2.2,12.6±2.4,4±2.2,0.2±0.4 and 0,respectively.The relative protein densities of Notch1 in U87,U251,T98G,SF295,SKMG-4,C6 and U373 were 0.34,0.21,0.79,0.04,0.28,1.75 and 1.19,which were significantly related with the tubular formation ability (P<0.05).However,the expression of Dll4 was not associated with tubular formation ability (P>0.05).Conclusion Notch1 may play a key role in tubular formation of glioma cells while the role of Dll4 in the process needs further study.
Notch1 Glioma 3D cell culture Tubular formation
R331
A
2016-08-21)
(責任編輯:甘章平)
10.3969/j.issn.1002-0152.2017.02.011
☆國家自然科學基金 (編號:81372685);國家重點基礎研究發(fā)展計劃 (973計劃)(編號:2015CB755505);廣東省自然科學基金 (編號:S2013040012894);廣東省科技計劃項目(編號:2013B021800067,2016A02013004);深圳市科技創(chuàng)新委員會項目(編號:JCYJ20140416094330210);廣東省醫(yī)學科研基金(編號:A2014247)
* 深圳市南山區(qū)人民醫(yī)院神經(jīng)外科(深圳518033)
△中山大學腫瘤防治中心神經(jīng)外科
※中山大學附屬第八醫(yī)院 深圳市福田區(qū)人民醫(yī)院神經(jīng)外科