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阿司匹林誘生型脂氧素A4對(duì)小鼠脊髓撞擊損傷后神經(jīng)病理性疼痛的影響及機(jī)制探討

2017-05-25 00:37郭云翮李祥米衛(wèi)東
關(guān)鍵詞:鞘內(nèi)神經(jīng)病膠質(zhì)

郭云翮,李祥,米衛(wèi)東

(山西大同大學(xué)醫(yī)學(xué)院外科教研室,山西大同037009)

阿司匹林誘生型脂氧素A4對(duì)小鼠脊髓撞擊損傷后神經(jīng)病理性疼痛的影響及機(jī)制探討

郭云翮,李祥,米衛(wèi)東

(山西大同大學(xué)醫(yī)學(xué)院外科教研室,山西大同037009)

目的評(píng)估阿司匹林誘生型脂氧素A4(ATL)對(duì)小鼠脊髓損傷(SCI)模型中神經(jīng)炎癥和神經(jīng)病理痛的影響。方法成年FVB小鼠T10節(jié)段脊髓進(jìn)行改良Allen'脊髓撞擊損傷。小鼠隨機(jī)分成ATL組和Vehicle組,分別在SCI手術(shù)后4和24 h鞘內(nèi)注射ATL(300 pmol)或vehicle。采用von Frey方法評(píng)估兩組小鼠后腳機(jī)械刺激的敏感性;采用PCR方法檢測(cè)兩組小鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物和細(xì)胞因子信使核糖核酸(mRNA)表達(dá);此外,通過(guò)小鼠大腦皮層組織小膠質(zhì)細(xì)胞培養(yǎng)來(lái)評(píng)估ATL對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞的激活和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)釋放的直接影響。結(jié)果與Vehicle組小鼠比較,ATL處理導(dǎo)致SCI誘導(dǎo)的小鼠機(jī)械痛敏降低;脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物和促炎性細(xì)胞因子mRNA水平也下降。而且,ATL處理對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物IBA-1和促炎性因子TNF-α表達(dá)影響。此外,原代皮層小膠質(zhì)細(xì)胞表達(dá)ATL相應(yīng)受體ALX,ATL通過(guò)ALX發(fā)揮抗炎作用。結(jié)論ATL通過(guò)ALX受體調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細(xì)胞激活和TNF-α釋放,最終降低小鼠SCI后神經(jīng)病理性疼痛。

阿司匹林誘生型脂氧素A4;脊髓損傷;神經(jīng)病理性疼痛;小鼠

脊髓損傷(Spinalcordinjury,SCI)是一種常見(jiàn)的損傷,全球范圍內(nèi)患病率約為40/10 000~80/10 000[1]。大約40%~50%SCI患者在損傷1年內(nèi)產(chǎn)生神經(jīng)病理性疼痛[2]。目前,臨床上對(duì)神經(jīng)病理性疼痛治療主要通過(guò)調(diào)節(jié)神經(jīng)元上鈉和鈣通道,以及N-甲基-D-天冬氨酸受體(N-methyl-D-aspartic acid receptor,NMDA)和γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)受體,但治療效果有限[3]。近年來(lái)研究表明,神經(jīng)病理性疼痛產(chǎn)生不僅涉及神經(jīng)元,也與免疫系統(tǒng)和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,如星形膠質(zhì)細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞有關(guān)[4]。SCI后激活的小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞,均可釋放趨化因子和細(xì)胞因子,導(dǎo)致脊髓炎癥反應(yīng)。越來(lái)越多證據(jù)表明,抑制脊髓炎癥反應(yīng)可緩解SCI誘導(dǎo)的神經(jīng)病理性疼痛[5]。

阿司匹林誘生型脂氧素A4(aspirin-triggered lipoxin A4,ATL)是二十烷類家族中一類氨基酸代謝產(chǎn)物,具有典型的三羥基、四共軛雙鍵結(jié)構(gòu)。ATL是機(jī)體內(nèi)產(chǎn)生的抗炎脂類介質(zhì),參與抑制機(jī)體內(nèi)各種炎癥[6]。有研究表明,大鼠鞘內(nèi)注射ATL,主要通過(guò)與星形膠質(zhì)細(xì)胞上ALX受體結(jié)合,抑制炎癥細(xì)胞因子表達(dá),從而緩解慢性坐骨神經(jīng)壓迫損傷(chronic constriction injury,CCI)誘導(dǎo)的神經(jīng)病理性疼痛[7]。然而,ATL在小鼠SCI模型中的作用仍未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。因而,本研究目的是探討ATL在小鼠脊髓撞擊損傷后的抗炎鎮(zhèn)痛作用。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組

雄性FVB小鼠(25~30 g)購(gòu)于山西醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。室溫下自由飲食和飲水。將FVB小鼠隨機(jī)分成:Sham組、(SCI+ATL)組和(SCI+Vehicle)組,每組6只。

1.2 實(shí)驗(yàn)儀器和試劑

ATL(美國(guó)Sigma公司),γ-干擾素(interferon-γ,IFN-γ)(美國(guó)Sigma公司),酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒、兔抗P-p38MAPK多克隆抗體(美國(guó)Sigma公司),DMEM/F12培養(yǎng)基(湖北省武漢博士德生物工程有限公司),腦立體定位儀(香港友誠(chéng)生物科技有限公司),ALX siRNA及聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)引物(上海生工生物工程有限公司和上海英駿公司合成)。

1.3 方法

1.3.1 小鼠SCI模型復(fù)制首先將腦立體定位儀持物桿取下,以10 g砝碼的重物打擊桿代替,將砝碼用線相連并將線上標(biāo)明長(zhǎng)度,來(lái)控制打擊高度和重量。小鼠麻醉,剔除背部正中毛發(fā),分離脊椎旁肌肉組織,暴露T9、T10和T11椎體,然后置于打擊模型下,對(duì)脊髓進(jìn)行打擊,以損傷小鼠痙攣性擺尾及雙下肢及軀體回縮撲動(dòng)為造模成功的標(biāo)志。最后傷口消毒,縫合傷口,每天腹腔注射2 u青霉素。Sham組只進(jìn)行前期手術(shù)操作,不對(duì)其脊髓進(jìn)行打擊。

1.3.2 小鼠鞘內(nèi)插管及給藥1%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉小鼠,頸后部剪毛、消毒,在兩耳連線中央做縱向切口,暴露枕骨寰枕膜,然而從此處插入PE-10管,插入約6~7 cm,最終達(dá)到蛛網(wǎng)膜下池,然后固定PE-10管。(SCI+ATL)組和(SCI+Vehicle)組在SCI手術(shù)后4和24h鞘內(nèi)分別注射10μl ATL(300pmol)或等量Vehicle(0.9%NaCl)。5μl ALX siRNA(2g/L)或scramble siRNA于SCI手術(shù)前24 h鞘內(nèi)注射。

1.3.3 行為學(xué)觀察SCI模型復(fù)制前及復(fù)制后1、2、3、4和5周對(duì)小鼠進(jìn)行縮足閾值測(cè)定。主要采用von Frey細(xì)絲法,von Frey細(xì)絲(1.0~15 g)垂直刺激大鼠后足中央處,持續(xù)5~10 s,出現(xiàn)明顯縮足、舔足及抬足行為為陽(yáng)性反應(yīng)。

1.3.4 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,qRT-PCR)通過(guò)RNA提取試劑盒提取不同組小鼠脊髓總RNA,然后進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),使用基因特異性引物進(jìn)行qRT-PCR擴(kuò)增,引物序列如表所示。通過(guò)軟件分析計(jì)算基因Ct,其中GAPDH作為內(nèi)參;按照文獻(xiàn)方法計(jì)算相對(duì)基因表達(dá)=2-△Ct sample-△Ctcontrol[8]。見(jiàn)表1。

1.3.5 小膠質(zhì)細(xì)胞培養(yǎng)1~2 d的新生FVB乳鼠處死后,取出腦組織,放入DMEM/F12培養(yǎng)基中剪碎,0.25%的胰酶消化消化,后離心5 min,用完全培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)至第7~9天時(shí)可見(jiàn)膠質(zhì)細(xì)胞分層,上層為小膠質(zhì)細(xì)胞,然后分離純化小膠質(zhì)細(xì)胞。采用不同濃度IFN-γ或ATL刺激小膠質(zhì)細(xì)胞。

表1 相關(guān)基因引物序列

1.3.6 Western blot提取原代培養(yǎng)的小膠質(zhì)細(xì)胞蛋白,取30 g進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electropheresis,SDS-PAGE),然后轉(zhuǎn)至聚偏氟乙?。╬olyvinylidene fluoride,PVDF)膜上。經(jīng)5%牛奶孵育1 h后,并用磷酸鹽緩沖液-T(phosphate buffered saline,PBS-T)洗膜3次,每次10 min。用兔抗P-p38 MAPK多克隆抗體(1∶2 000)和鼠抗β-actin多克隆抗體(1∶2 000)4℃孵育3 h,PBS-T洗3次,每次10 min。用PBS-T稀釋山羊抗兔和山羊抗鼠的二抗(1∶25 000),室溫孵育1 h。PBS-T洗3次,每次5 min。利用化學(xué)發(fā)光掃描系統(tǒng)檢測(cè)相關(guān)蛋白表達(dá)并攝片,采用Quantity one圖像分析軟件對(duì)吸光度積值進(jìn)行分析。

1.3.7 ELISA培養(yǎng)的小膠質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行不同的處理后,對(duì)細(xì)胞進(jìn)行裂解,通過(guò)ELISA試劑盒規(guī)定的步驟檢測(cè)不是處理后小膠質(zhì)細(xì)胞腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor,TNF-α)濃度。

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間均值比較用重復(fù)測(cè)量設(shè)計(jì)的方差分析,兩兩比較用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 ATL對(duì)小鼠SC I的鎮(zhèn)痛作用

小鼠SCI損傷后可導(dǎo)致兩側(cè)后腳持續(xù)的機(jī)械性痛覺(jué)增敏。與Sham小鼠比較,小鼠SCI后同側(cè)(2~5周)(F=12.42,P=0.004)和對(duì)側(cè)(1~5周)(F=13.83,P=0.003)后腳縮足反應(yīng)閾值(paw with drawal threshold,PWT)降低,而鞘內(nèi)注射ATL后可改善機(jī)械性痛覺(jué)增敏(見(jiàn)表2和圖1)。

表2 各組小鼠SC I后不同時(shí)間同側(cè)及對(duì)側(cè)后腳PW T比較(n=6,±s)

表2 各組小鼠SC I后不同時(shí)間同側(cè)及對(duì)側(cè)后腳PW T比較(n=6,±s)

組別1周2周3周4周5周同側(cè)組對(duì)側(cè)組S h a m S C I + V e h i c l e S C I + A T L S h a m S C I + V e h i c l e S C I + A T L1 . 5 1 ± 0 . 3 51 . 6 4 ± 0 . 3 7 1 . 2 4 ± 0 . 3 9 0 . 6 0 ± 0 . 0 0 0 . 5 6 ± 0 . 0 0 0 . 7 0 ± 0 . 1 8 0 . 8 0 ± 0 . 2 1 1 . 7 4 ± 0 . 4 0 1 . 2 0 ± 0 . 5 1 1 . 1 0 ± 0 . 6 0 1 . 3 2 ± 0 . 3 5 1 . 1 5 ± 0 . 2 01 . 6 0 ± 0 . 4 21 . 7 0 ± 0 . 5 31 . 5 8 ± 0 . 4 01 . 5 0 ± 0 . 3 81 . 8 5 ± 0 . 3 8 0 . 4 0 ± 0 . 0 0 0 . 3 8 ± 0 . 0 0 0 . 3 6 ± 0 . 0 0 0 . 4 0 ± 0 . 2 0 0 . 3 7 ± 0 . 1 0 0 . 9 6 ± 0 . 2 8 0 . 8 0 ± 0 . 2 0 0 . 8 3 ± 0 . 2 4 0 . 8 2 ± 0 . 2 3 0 . 8 0 ± 0 . 0 01 . 6 5 ± 0 . 3 71 . 7 6 ± 0 . 4 51 . 9 0 ± 0 . 4 0

圖1 ATL緩解小鼠SC I后機(jī)械痛覺(jué)增敏

2.2 ATL通過(guò)ALX受體對(duì)鎮(zhèn)痛作用的影響

與scramble siRNA比較,ALX siRNA降低SCI后7 d脊髓中ALX mRNA水平。鞘內(nèi)注射ALX siRNA不改變小鼠SCI后7 d同側(cè)后腳的機(jī)械敏感性(F=2.745,P=0.159),但是降低小鼠SCI后7 d對(duì)側(cè)后腳的PWT(F=10.872,P=0.009),這與圖1中鞘內(nèi)注射ATL在SCI后7 d的鎮(zhèn)痛作用一致。見(jiàn)圖2。

2.3 ATL對(duì)SC I誘導(dǎo)小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物和促炎癥因子表達(dá)的影響

圖2 干擾ALX受體影響ATL的鎮(zhèn)痛作用

SCI小鼠鞘內(nèi)注射ATL或Vehicle后,脊髓中ALX mRNA水平表達(dá)相似(見(jiàn)圖3A)。各組間IBA-1mRNA水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=14.737,P=0.002),與Sham小鼠比較,SCI小鼠IBA-1mRNA水平增高(P=0.009);而鞘內(nèi)注射ATL可降低IBA-1mRNA表達(dá)(P=0.013)(見(jiàn)圖3B)。但是ATL對(duì)星形膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物GFAP影響差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。同時(shí)各組間TNF-α mRNA水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=12.157,P=0.006),與Sham小鼠比較,SCI小鼠TNF-α mRNA水平增高(P= 0.006);而鞘內(nèi)注射ATL可降低TNF-α mRNA表達(dá)(P=0.007)(見(jiàn)圖3C)。

圖3 ATL降低SC I 7 d后小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物和促炎癥因子表達(dá)

2.4 ATL抑制原代小膠質(zhì)細(xì)胞TN F-α釋放

各組間P-p38MAPK表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=15.745,P=0.001),小膠質(zhì)細(xì)胞受到IFN-γ刺激后,P-p38MAPK表達(dá)增加(P=0.032);而ALT可降低P-p38MAPK表達(dá)(P=0.015)(見(jiàn)圖4A)。與此同時(shí),不同組間TNF-α釋放差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=16.062,P=0.001),IFN-γ可誘導(dǎo)小膠質(zhì)細(xì)胞釋放TNF-α(P=0.001);而ALT可降低TNF-α釋放(P=0.003)(見(jiàn)圖4B)。

圖4 ATL抑制原代小膠質(zhì)細(xì)胞激活

3 討論

SCI可引起炎癥和慢性疼痛。因而控制SCI誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)可以改善神經(jīng)損傷和神經(jīng)病理性疼痛。然而,很少有藥物被證明能夠安全、有效治療神經(jīng)炎癥和疼痛。本研究中,筆者評(píng)估ATL對(duì)小鼠SCI中神經(jīng)炎癥和神經(jīng)病理痛的影響。研究表明,ATL能有效抑制SCI后小膠質(zhì)細(xì)胞激活及神經(jīng)病理性疼痛。

目前對(duì)SCI引起的疼痛,主要采用抗驚厥藥和抗抑郁藥治療,但效果不佳,同時(shí)伴有嚴(yán)重的副作用[9]。本研究表明,SCI前鞘內(nèi)注射ATL能夠緩解SCI引起的神經(jīng)病理性疼痛。ATL是機(jī)體內(nèi)產(chǎn)生的抗炎脂類介質(zhì),主要來(lái)源于脂肪酸代謝,在各種炎癥及神經(jīng)病理性疼痛動(dòng)物模型中具有較強(qiáng)的鎮(zhèn)痛效果[10]。ATL主要作用于G蛋白偶聯(lián)的ALX受體,但也可以結(jié)合其他受體,包括芳基烴受體、白三烯受體和CB1大麻素受體等[11]。本研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)特定siRNA干擾ALX受體ATL是機(jī)體內(nèi)產(chǎn)生的抗炎脂類介質(zhì)后可抑制ATL的鎮(zhèn)痛作用,表明ALX受體是ATL是機(jī)體內(nèi)產(chǎn)生的抗炎脂類介質(zhì)SCI動(dòng)物中脂質(zhì)介質(zhì)的作用靶點(diǎn)。筆者的研究結(jié)果還表明,ATL也可減少SCI引起小膠質(zhì)細(xì)胞激活及促炎癥細(xì)胞因子TNF-α釋放。而TNF-α在疼痛中發(fā)揮關(guān)鍵作用,所以ATL鎮(zhèn)痛作用可能與抗炎作用有關(guān)[12]。TNF-α也是一個(gè)關(guān)鍵促炎疼痛介質(zhì),因?yàn)樗梢杂绊懮婕疤弁磦鲗?dǎo)的多個(gè)機(jī)制。同時(shí)TNF-α也能減少對(duì)脊髓突觸傳遞的抑制,刺激釋放其他的促炎癥細(xì)胞因子,并誘導(dǎo)免疫和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞增殖,從而增強(qiáng)神經(jīng)炎癥和疼痛傳導(dǎo)[13]。筆者也觀察到,ATL可降低SCI誘導(dǎo)小鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物IBA-1表達(dá);同時(shí)也抑制原代小膠質(zhì)細(xì)胞受到IFN-γ刺激后p38的磷酸化及TNF-α釋放。在出血?jiǎng)游锬P椭幸呀?jīng)證實(shí),外源性ATL可抑制小膠質(zhì)細(xì)胞p38的磷酸化[14]。以往研究表明,脊髓中注射米諾環(huán)素,一種廣泛使用的小膠質(zhì)細(xì)胞抑制劑,可抑制SCI后脊髓背角神經(jīng)元和疼痛敏感性[15],這與本研究中另一種小膠質(zhì)細(xì)胞抑制劑ATL的作用是相似的。

總之,ATL可以改變小鼠SCI后脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞促炎癥反應(yīng),更重要的是,可以有效持久緩解機(jī)械性痛覺(jué)增敏。為下一步觀察ATL在SCI后神經(jīng)炎癥和神經(jīng)病理性疼痛中的作用打下基礎(chǔ)。

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Effect of ALT on neuropathic pain after spinal cord injury in mice

Yun-he Guo,Xiang Li,Wei-dong Mi
(Department of surgery,School of Medicine,Shanxi Datong University, Datong,Shanxi 037009,China)

ObjectiveTo evaluate the effects of aspirin-triggered lipoxin A4(ATL)on spinal neuroinflammation and neuropathic pain in mice model of spinal cord injury(SCI).MethodsModified Allen'hit model at T10was carried out in adult FVB mice.To test if ATL can reduce neuroinflammation and neuropathic pain, each mouse received two intrathecal injections of ATL(300 pmol)or vehicle at 4 and 24 h after SCI.Sensitivity to mechanical stimulation of the hind paws was evaluated by von Frey monofilaments,and the neuroinflammation was tested by measuring the mRNA expression levels of microglial markers and cytokines in the spinal cord samples after SCI.Also,microglia cultures prepared from mice cortical tissue were used to assess the direct effects of ATL on microglial activation and release of pro-inflammatory TNF-α.ResultsATL treatment caused significant reductions in the intensity of mechanical pain hypersensitivity and spinal expression levels of microglial markers and pro-inflammatory cytokines induced by SCI,when compared to the control group.Notably,the increased expressions of the microglial marker IBA-1 and pro-inflammatory cytokine TNF-α were affected by the ATL treatment mostly.ConclusionsOur results suggest that ATL can effectively modulate microglial activation and TNF-α release through ALX receptors,ultimately reduce neuropathic pain in mice after SCI.

aspirin-triggered lipoxin A4;spinal cord injury;neuropathic pain;mice

R441.1

A

10.3969/j.issn.1005-8982.2017.08.006

1005-8982(2017)08-0027-05

2016-12-12

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抗生素鞘內(nèi)給藥治療顱內(nèi)感染的研究進(jìn)展
研究神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的新興技術(shù)
人類星形膠質(zhì)細(xì)胞和NG2膠質(zhì)細(xì)胞的特性
鞘內(nèi)氫嗎啡酮聯(lián)合用藥自控鎮(zhèn)痛治療難治性癌痛價(jià)值分析
越測(cè)越開(kāi)心
你是“神經(jīng)病”嗎?