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低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1結合量和p-Nrf2表達的影響

2017-08-01 00:19:22姬衛(wèi)秀何詩依
中國體育科技 2017年4期
關鍵詞:骨骼肌低氧抗氧化

姬衛(wèi)秀,何詩依,嚴 露,張 纓

JI Wei-xiu,HE Shi-yi,YAN Lu,ZHANG Ying

低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1結合量和p-Nrf2表達的影響

姬衛(wèi)秀,何詩依,嚴 露,張 纓

JI Wei-xiu,HE Shi-yi,YAN Lu,ZHANG Ying

目的:轉(zhuǎn)錄因子NF-E2相關因子(Nrf2)-Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關蛋白-1(Keapl)信號通路是細胞氧化應激反應中的關鍵通路。普遍認為,長期低氧訓練會影響抗氧化能力,研究試圖通過對小鼠施加低氧暴露、低氧訓練兩種方式,探討其對小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1結合量和Nrf2、Keap1、p-Nrf2蛋白表達以及活性氧(ROS)水平的影響。方法:C57BL/6J小鼠30只,分為3組,分別是對照組(C)、低氧組(H)和低氧訓練組(HT)。其中,小鼠跑臺訓練的跑速為12 m/min,1 h/d,6 d/周,持續(xù)4周;低氧濃度為10%,8 h/d,持續(xù)4周。干預結束后脫頸處死取后腿兩側(cè)骨骼肌。Western Blot法測定骨骼肌Nrf2、Keapl和p-Nrf2的蛋白表達。免疫共沉淀法測Nrf2/Keap1結合量。高質(zhì)熒光測定法檢測小鼠骨骼肌ROS水平。結果:與C組相比,H、HT組小鼠骨骼肌中Nrf2/Keap1結合量顯著升高,游離Nrf2顯著降低,p-Nrf2蛋白表達顯著降低,游離Keap1基本無變化。WHT組ROS水平顯著高于WC組。結論:氧濃度為10%的4周低氧暴露和低氧訓練均抑制了小鼠骨骼肌Nrf2和Keap1的解綁作用;低氧訓練組小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白水平非常顯著性降低,可能是造成ROS水平顯著升高的原因之一。

低氧;低氧訓練;Nrf2/Keap1;p-Nrf2

近年來,低氧訓練已成為運動員提高運動成績的重要輔助手段。研究已表明,低氧訓練可影響骨骼肌的抗氧化能力[1,3,4,11],但其作用機制目前并不十分清楚。

NF-E2相關因子(NF-E2-related factor 2,Nrf2)是細胞氧化應激反應中的關鍵轉(zhuǎn)錄因子,可調(diào)節(jié)靶基因Ⅱ相解毒酶和抗氧化酶基因的表達[11,26]。Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關蛋白-1(Kelch-like ECH-associated protein-1,Keapl),是Nrf2的調(diào)節(jié)者,對Nrf2功能起負調(diào)控作用[19]。在正常情況下,Keapl與Nrf2耦聯(lián),并與肌動蛋白結合被錨定于胞漿中,通過泛素化介導Nrf2蛋白降解,從而維持細胞漿內(nèi)Nrf2處于較低水平[15]。而當機體受到氧化應激刺激后,Keap1蛋白上半胱氨酸的巰基易受到破壞,使其構象發(fā)生改變,可促進Nrf2與Keapl偶聯(lián)作用的解除。同時,氧化應激刺激使Nrf2/Keap1復合物中的Nrf2發(fā)生磷酸化(p-Nrf2),加劇其和Keap1的解離作用,也可使游離Nrf2發(fā)生磷酸化[10,14],從而使Nrf2和P-Nrf2在細胞漿中聚集,并轉(zhuǎn)位進入細胞核與Maf蛋白形成雜化二聚體[25],而后與下游靶基因DNA上的抗氧化元件(ARE)結合,啟動其靶基因的轉(zhuǎn)錄,成為許多抗氧化基因的開關[17,20]。

運動可以激活Nrf2-ARE通路,增強心肌的抗氧化防御能力,但Nrf2敲除鼠這種作用減弱[22]。也有研究發(fā)現(xiàn),急性運動可使小鼠骨骼肌細胞核Nrf2的蛋白表達升高[5]。在低氧環(huán)境中,機體細胞缺氧,會產(chǎn)生一系列的反應。低氧預處理可以激活Nrf2及其靶基因的表達,從而提高大鼠胚胎心肌細胞的生物學功能及抗缺氧能力[16]。沉默Nrf2基因后,低氧導致的內(nèi)皮細胞凋亡增加,細胞的體外增殖活動減少[28]。但也有研究表明,慢性間歇性低氧暴露4周和8周小鼠心肌組織中Nrf2表達水平下降[8]。在氧濃度為零的極度缺氧環(huán)境下培養(yǎng)24 h的人類晶狀體上皮細胞,其Nrf2蛋白和mRNA表達降低,導致嚴重的細胞蛋白破壞[29]。

由上可知,低氧與Nrf2關系密切。然而,低氧暴露和低氧訓練如何影響骨骼肌的Nrf2信號及其抗氧化作用,目前并不十分清楚。因此,本研究試圖通過動物實驗,以Nrf2/Keap1復合物為切入點,探討4周低氧暴露和低氧訓練,對小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1結合量和Nrf2、Keap1、p-Nrf2蛋白表達以及活性氧(ROS)水平的影響,為低氧訓練影響骨骼肌抗氧化作用的分子機制提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 研究對象

健康8周齡C57BL/6J雄性小鼠(購于維通利華公司實驗動物技術有限公司,動物合格證書:SCX-K(京)2009-0004)30只,按體重隨機分為3組,分別是對照組(C組),低氧暴露組(H組),低氧訓練組(HT組),每組10只。小鼠體重(18.37±2.26)g,每籠3~4只飼養(yǎng)于北京體育大學動物房,動物房溫度保持在20~25℃,相對濕度保持在50%~70%,每天光照12 h(7:00~19:00),3組動物均自由進食和飲水。

1.2 干預方案

低氧暴露組小鼠每天暴露在常壓低氧環(huán)境中8 h(8:00~16:00),氧氣濃度為10%,持續(xù)4周;通過制氮機(北京創(chuàng)文氣體有限公司)、凍干機(杭州超濾)和空氣壓縮機(美國英格索蘭)共同作用將空氣中的氮氣通入動物飼養(yǎng)室內(nèi)達到相應氧濃度;低氧訓練組的低氧環(huán)境與低氧組相同,并在低氧環(huán)境下進行跑臺運動,經(jīng)過兩天的適應性訓練后,進行正式訓練,其中,跑速12m/min,坡度為0,每天1 h,每周6天,持續(xù)4周。

1.3 取材

最后一次訓練結束后,休息48 h脫頸處死,迅速取兩側(cè)腿部骨骼肌,用錫紙包裹標記,投于液氮,后轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱備后續(xù)之用。

1.4 指標測定

1.4.1 提取總蛋白

取100 mg組織,加入800μl含蛋白酶抑制劑的RIPA蛋白裂解液,超聲勻漿,冰上靜置30 min,隨后12 000 rpm,4℃離心30 min,取上清溶液即為總蛋白。

1.4.2 Western blot

對提取的組織蛋白進行BCA蛋白濃度測定(BCA Protein Assay Reagent,美國Thermo Scientific公司),根據(jù)濃度計算配樣,上樣量為20μg。采用Bolt 4%~12% Bis-Tris Plus凝膠(美國life technologies公司)和NuPAGE MOPS SDS電泳緩沖液(美國life technologies公司)進行電泳。之后采用美國Invitrogen公司的iBlot 2將蛋白從電泳凝膠轉(zhuǎn)移至NC膜上。目的條帶標記后用5%的脫脂牛奶或BSA封閉1 h后,進行一抗孵育:p-Nrf2(bs-2013R,1:200)、Nrf2(sc-722,1:200)、Keap1(sc-33569,1:500)、內(nèi)參β-actin(sc-47778,1:1 000),于4℃搖床孵育過夜。次日洗脫一抗后進行二抗孵育1 h:p-Nrf2(羊抗兔,中杉金橋,ZB-2301,1:5 000)、Nrf2(羊抗兔,中杉金橋,ZB-2301,1:2 000)、Keap1(羊抗兔,中杉金橋,ZB-2301,1:5 000)、β-actin(羊抗鼠,中科晨宇,164017,1:5 000)、。最后,洗脫二抗后加發(fā)光液用BIORAD凝膠顯影儀器進行顯影,用其配套軟件進行條帶檢測與分析。讀取灰度值,計算結果,公式如下:

1.4.3 免疫共沉淀

采用免疫共沉淀法測組織胞漿中Nrf2/Keap1的結合量。根據(jù)蛋白的濃度,用PBS稀釋到1μg/μl;將1 ml已稀釋的蛋白溶液中加入到含20μl Protein A/G Mix Magnetic Beads(美國Millipore公司,LSKMAGAG02)的離心管中,4℃搖床2 h,將離心管放到磁力架(美國Millipore公司),轉(zhuǎn)移上清;向上清中加入5μl Nrf2抗體(sc-30915,santa cruz)(Input中加入Nomal goat IgG),4℃搖床過夜;次日加入30 μl Protein A/G Mix Magnetic Beads,室溫搖床2 h,棄上清,PBS清洗3次,加35 μl上樣緩沖液洗脫,70℃水浴10 min,轉(zhuǎn)移上清液,重復洗脫第二遍,共吸出上清液70μl。用Bolt 4%~12% Bis-Tris Plus凝膠(美國life technologies公司)上樣30μl進行電泳。之后,采用美國Invitrogen公司的iBlot 2將蛋白從電泳凝膠轉(zhuǎn)移至NC膜上。目的條帶標記后用5%的脫脂牛奶封閉1 h后,加入一抗稀釋液Keap1(sc-33569,1:500),于4℃搖床孵育過夜。次日洗脫一抗后加入二抗稀釋液(羊抗兔,中杉金橋,ZB-2301,1:5 000),室溫搖床孵育1 h。最后,洗脫二抗后加發(fā)光液用BIO-RAD凝膠顯影儀器進行顯影。

1.4.4 ROS測定

采用GENMED試劑盒(中國上海杰美基因醫(yī)藥科技有限公司,GMS10016.3)對小鼠骨骼肌ROS進行測定,實驗操作嚴格按照試劑盒的說明書進行。

1.5 統(tǒng)計學分析

采用SPSS 17.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計處理,數(shù)據(jù)分析方法為單因素方差分析,用P<0.05和P<0.01分別表示具有顯著性和非常顯著性差異。

2 實驗結果

2.1 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌 Nrf2/Keap1結合量的影響

圖1 各組小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1結合量Figure 1 The Nrf2/Keap1 Binding Capacity in Skeletal Muscle of Mice

由圖1可知,H、HT組分別與C組相比,小鼠骨骼肌Nrf2/Keap1復合物結合量顯著性增加。

2.2 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌Nrf2蛋白表達的影響

由圖2可知,H、HT組分別與C組相比,小鼠骨骼肌Nrf2蛋白表達量均顯著性降低。

2.3 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌Keap1蛋白表達的影響

由圖3可知,H、HT組分別與C組相比,小鼠骨骼肌Keap1蛋白表達均無顯著性變化。

2.4 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白表達的影響

圖2 各組小鼠骨骼肌Nrf2蛋白表達量Figure 2 The Expression of Nrf2 in Skeletal Muscle of Mice

圖3 各組小鼠骨骼肌Keap1蛋白表達量Figure 3 The Expression of Keap1 in Skeletal Muscle of Mice

由圖4可知,間歇低氧暴露后,H組骨骼肌p-Nrf2蛋白表達水平與C組相比顯著性下降;低氧訓練后,HT組小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白表達量與C組相比,非常顯著性降低。

2.5 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌活性氧(ROS)的影響

由圖5可知,H組與C組相比,小鼠骨骼肌中ROS水平無顯著性變化;HT組與C組相比,小鼠骨骼肌ROS水平顯著性升高。

圖4 各組小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白表達量Figure 4 The Expression of p-Nrf2 in Skeletal Muscle of Mice

圖5 各組小鼠骨骼肌ROSFigure 5 The Level of ROS in Skeletal Muscle of Mice

3 分析討論

3.1 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌Nrf2、Keap1蛋白表達量和Nrf2/Keap1結合量的影響

缺氧模擬化合物氯化鈷(CoCl2)處理小鼠視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細胞和骨骼肌衛(wèi)星細胞,可促進Nrf2從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)位入細胞核,使核內(nèi)Nrf2蛋白含量增加,進而上調(diào)Nrf2介導的抗氧化酶基因的轉(zhuǎn)錄[6,7]。Nrf2作為氧化應激反應的關鍵調(diào)節(jié)者,急性運動后小鼠心臟和骨骼肌細胞Nrf2核蛋白表達顯著增加[18,22]。6周中等強度運動訓練可提高年輕和年老小鼠心臟細胞Nrf2核蛋白的水平,從而使抗氧化酶的表達增強[13]。也有研究發(fā)現(xiàn),4周和8周的慢性間歇低氧暴露,小鼠心肌組織中Nrf2表達水平下降[8]。在本研究中,低氧暴露、低氧訓練這兩種干預作用下,小鼠骨骼肌Nrf2蛋白表達量均顯著性降低,且兩種干預方式間無顯著性差異。這種Nrf2蛋白表達量的降低可能與實驗動物所處低氧環(huán)境的氧濃度有關。

有研究提出,Keap1與Nrf2的相互作用遵循著“開放”和“閉合”不同構象的循環(huán)方式。“開放”構象即1個Nrf2分子結合1個Keap1分子;“閉合”構象即1個Nrf2分子結合兩個Keap1分子。當機體受到氧化應激刺激時,處于安靜“開放”狀態(tài)的分子可被誘導呈現(xiàn)為“閉合”態(tài),從而釋放出1個游離Nrf2分子,而Keap1結合數(shù)量仍保持不變,游離Keap1未被釋放[9]。因此,在本研究中,低氧暴露、低氧訓練兩種干預作用下小鼠骨骼肌游離Keap1蛋白表達無顯著性變化,可能與此相關。

Nrf2/Keap1復合物是Nrf2和Keap1結合物。在本研究中,低氧暴露、低氧訓練兩種干預作用下,小鼠骨骼肌Nrf2/ Keap1結合量均顯著增加。說明兩種干預方式使得Nrf2/ Keap1復合物的解離作用減弱,是造成游離Nrf2蛋白水平降低的重要原因。

3.2 低氧、低氧訓練對小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白表達和ROS水平的影響

機體受到氧化應激后,Nrf2蛋白磷酸化(p-Nrf2)與Nrf2一樣,在與Keap1解綁、核易位及其靶基因轉(zhuǎn)錄過程中也可能發(fā)揮著重要調(diào)控作用[10,23]。有研究發(fā)現(xiàn),大鼠6周游泳運動后,海馬體的p-Nrf2蛋白表達增加[12]。而在本研究中,低氧暴露、低氧訓練這兩種干預作用下小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白表達均降低,且降低程度依次增強,但兩種干預方式之間并無顯著變化。Nrf2蛋白磷酸化減少可能也會造成p-Nrf2與靶基因的ARE結合活性降低,從而影響靶基因的轉(zhuǎn)錄。

生物活性小分子ROS是細胞代謝的產(chǎn)物,正常情況下細胞內(nèi)ROS的產(chǎn)生和清除能力之間呈現(xiàn)動態(tài)平衡。運動、低氧都會影響機體ROS的產(chǎn)生[2,24,27]。在本研究中,低氧暴露、低氧訓練這兩種干預作用下,低氧訓練組小鼠骨骼肌ROS水平顯著性增加,說明p-Nrf2蛋白表達的非常顯著性降低可能影響了下游抗氧化酶的表達,進而使骨骼肌的ROS水平提高。

4 結論

氧濃度為10%的4周低氧暴露和低氧訓練均抑制了小鼠骨骼肌Nrf2和Keap1的解綁作用;且低氧訓練組小鼠骨骼肌p-Nrf2蛋白水平非常顯著性降低,可能是造成ROS水平顯著升高的原因之一。

[1] 薄海,李玲,段富強,等. 低氧復合運動抑制低氧誘導的骨骼肌線粒體DNA氧化損傷 [J]. 生理學報,2014,(5):597-604.

[2] 薄海,王義和,李海英,等. 耐力訓練抑制急性低氧時骨骼肌線粒體生物能學變化:ROS和UCP3的作用 [J]. 生理學報,2008,(6):767-76.

[3] 黃麗英,翁錫全,林文弢,等. 間歇低氧訓練對抗氧化酶系統(tǒng)及其適應能力的影響 [J]. 廣州體育學院學報,2007,(2):111-115.

[4] 黃麗英,翁錫全,林文弢. 間歇低氧訓練活性氧介導基因調(diào)控作用的研究 [J]. 北京體育大學學報,2008,(5):615-617.

[5] 李鐵瑛,何詩依,劉思雪,等. 急性運動對小鼠骨骼肌核蛋白Nrf2-ARE結合活性的影響 [J]. 中國運動醫(yī)學雜志,2015,(07):649-652,687.

[6] 劉永,李俊平,羅冬梅. CoCl2預處理對C2C12細胞氧化損傷后增殖和Nrf2表達的影響 [J]. 中國運動醫(yī)學雜志,2014,(03):238-241.

[7] 裴涌,郝旭紅,孫曉楠. 低氧對視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細胞中Nrf2及其調(diào)控的抗氧化酶表達的影響 [J]. 解剖科學進展,2016,(01):26-28.

[8] 周珊珊. Nrf2與MT的協(xié)同作用在保護慢性間歇性低氧所致心臟損傷中的作用 [D].長春:吉林大學,2015.

[9] BAIRD L,LLERES D,SWIFT S,et al. Regulatory flexibility in the Nrf2-mediated stress response is conferred by conformational cycling of the Keap1-Nrf2 protein complex [J]. Proc Nat Acad Sci U S A,2013,110(38):15259-15264.

[10] BLOOM D A,JAISWAI A K. Phosphorylation of Nrf2 at Ser40 by protein kinase C in response to antioxidants leads to the release of Nrf2 from INrf2,but is not required for Nrf2 stabilization/accumulation in the nucleus and transcriptional activation of antioxidant response element-mediated NAD(P)H:quinone oxidoreductase-1 gene expression [J]. J Bio Chem,2003,278(45):44675-44682.

[11] CHEN T I,TU W C. Exercise attenuates intermittent hypoxia-induced cardiac fibrosis associated with sodium-hydrogen exchanger-1 in rats [J]. Frontiers Physiol,2016,7:462.

[12] DA SILVA FIORIN F,DE OLIVERRA A P,RIBEIRO L R,et al. The impact of previous physical training on redox signaling after traumatic brain injury in rats:A behavioral and neurochemical approach [J]. J Neurotrauma,2016,33(14):1317-1330.

[13] GOUNDER S S,KANNAN S,DEVADOSS D,et al. Impaired transcriptional activity of Nrf2 in age-related myocardial oxidative stress is reversible by moderate exercise training [J]. PloS one,2012,7(9):e45697.

[14] HAYES J D,MCMAHON M. NRF2 and KEAP1 mutations:permanent activation of an adaptive response in cancer [J]. Trends Biochemical Sci,2009,34(4):176-188.

[15] ITOH K,MIMURA J,YAMAMOTO M. Discovery of the negative regulator of Nrf2,Keap1:a historical overview [J]. Antioxid Redox Signal,2010,13(11):1665-1678.

[16] KOLAMUNNE R T,DIAS I H,VERNALLIS A B,et al. Nrf2 activation supports cell survival during hypoxia and hypoxia/reoxygenation in cardiomyoblasts;the roles of reactive oxygen and nitrogen species [J]. Redox Bio,2013,1:418-426.

[17] KWAK M K,WAKABAYASHI N,KENSLER T W. Chemoprevention through the Keap1-Nrf2 signaling pathway by phase 2 enzyme inducers [J]. Mutat Res,2004,555(1-2):133-148.

[18] LI T,HE S,LIU S,et al. Effects of different exercise durations on Keap1-Nrf2-ARE pathway activation in mouse skeletal muscle [J]. Free Radic Res,2015,49(10):1269-1274.

[19] MENEGON S,COLUMBANO A,GIORDANO S. The dual roles of Nrf2 in cancer [J]. Trends Mol Med,2016,22(7):578-593.

[20] MIN K J,KIM J H,JOU I,et al. Adenosine induces hemeoxygenase-1 expression in microglia through the activation of phosphatidylinositol 3-kinase and nuclear factor E2-related factor 2 [J]. Glia,2008,56(9):1028-1037.

[21] MOI P,CHAN K,ASUNIS I,et al. Isolation of NF-E2-related factor 2 (Nrf2),a NF-E2-like basic leucine zipper transcriptional activator that binds to the tandem NF-E2/AP1 repeat of the beta-globin locus control region [J]. Proc Nat Acad Sci U S A,1994,91(21):9926-9930.

[22] MUTHUSAMY V R,KANNAN S,SADHAASIVAM K,et al. Acute exercise stress activates Nrf2/ARE signaling and promotes antioxidant mechanisms in the myocardium [J]. Free Radic Bio Med,2012,52(2):366-376.

[23] NGUYEN T,YANG C S,PICKETT C B. The pathways and molecular mechanisms regulating Nrf2 activation in response to chemical stress [J]. Free Radic Bio Med,2004,37(4):433-441.

[24] SACHDEV S,DAVIES K J. Production,detection,and adaptive responses to free radicals in exercise [J]. Free Radic Bio Med,2008,44(2):215-223.

[25] SEKHAR K R,RACHAKONDA G,F(xiàn)REEMAN K L. Cysteine-based regulation of the CUL3 adaptor protein Keap1 [J]. Toxi Appl Pharmacol,2010,244(1):21-26.

[26] SUZUKI T,YAMAMOTO M. Molecular basis of the Keap1-Nrf2 system [J]. Free Radic Bio Med,2015,88(Pt B):93-100.

[27] YAN Z. Exercise,PGC-1alpha,and metabolic adaptation in skeletal muscle [J]. Appl Physiol,Nut,Metab,2009,34(3):424-427.

[28] ZHAO R,F(xiàn)ENG J,HE G. Hypoxia increases Nrf2-induced HO-1 expression via the PI3K/Akt pathway [J]. Front Biosci (Landmark ed),2016,21:385-396.

[29] ZHENG X Y,XU J,CHEN X I,et al. Attenuation of oxygen fluctuation-induced endoplasmic reticulum stress in human lens epithelial cells [J]. Exp Therapeutic Med,2015,10(5):1883-1887.

Effects of Hypoxia and Hypoxic Training on Nrf2/Keap1 Binding Capacity and p-Nrf2 Expression in Skeletal Muscle of Mice

Objective:NF-E2-related factor 2(Nrf2)-Kelch-like ECH-associated protein-1 (Keapl) signaling pathway is a key pathway of cell oxidative stress reaction. It is generally believed that the long-term hypoxic training could impact oxidation resistance. This research attempts to apply hypoxic training on mice to study the binding capacity of Nrf2/Keap1 and the contents of Nrf2、Keap1、p-Nrf2proteins in skeletal muscle. Methods:The 30 C57BL/6J mice were divided into three groups:control group (C),hypoxia group (H),hypoxic training group (HT). The mice ran on treadmill in speed of 12 m/min,1h/d,6d/week,for 4 weeks. Oxygen concentration in hypoxia chamber was 10%. Mice were treated for 4 weeks,8h/d. After both the interventions,the mice were sacrificed and collected skeletal muscle of legs. The expression of Nrf2,Keap1 and p-Nrf2were analyzed by western blot. High quality fluorescence assay was done to detect ROS level in skeletal muscle of mice. Result:Compared with C group,Nrf2/Keap1 binding capacity in skeletal muscle of H、HT groups mice was significantly increased while free Nrf2 and p-Nrf2were significantly reduced respectively;Free Keap1 did not change in skeletal muscle of mice;The ROS level in skeletal muscle of HT group mice significantly increased compared with C group mice. Conclusion:Hypoxia and hypoxic training which oxygen concentration was 10% could reduce the Nrf2/Keap1 unbinding capacity in skeletal muscle of mice. The exerpression of p-Nrf2in skeletal muscle of mice in hypoxic training group was significantly reduced,which may result in marked increase in ROS level.

hypoxia;hypoxic training;Nrf2/Keap1;p-Nrf2

1002-9826(2017)04-0114-05

10. 16470/j. csst. 201704016

G804.2

A

2016-11-28;

2017-05-24

國家自然基金項目(31471134);中央高校基本科研業(yè)務費資助;北京體育大學自主課題(2016BS004)。

姬衛(wèi)秀,女,博士研究生,主要研究方向為運動與骨骼肌代謝,E-mail:jwx8918@163.com。

張纓,女,北京人,博士,博士研究生導師,研究方向為運動與骨骼肌代謝,E-mail:zhyi9256@126.com,Tel:(010)62989584

北京體育大學 運動人體科學學院,北京 100084

Beijing Sports University,Beijing 100084,China.

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