王康，劉良森，陳磊，張衛(wèi)文

(天津大學(xué) 化工學(xué)院，天津，300350)

使用稀禾定馴化提高裂殖壺菌的生長(zhǎng)和DHA積累

王康，劉良森，陳磊*，張衛(wèi)文

(天津大學(xué) 化工學(xué)院，天津，300350)

采用基于實(shí)驗(yàn)室的微生物適應(yīng)性馴化方法，對(duì)Schizochytriumsp. S31進(jìn)行脂肪酸合成途徑抑制劑稀禾定連續(xù)傳代馴化，逐步提高稀禾定的馴化濃度。經(jīng)過(guò)近200天連續(xù)馴化65代，Schizochytriumsp. S31對(duì)稀禾定的耐受濃度從200 μmol/L提高到了500 μmol/L。通過(guò)250 mL搖瓶發(fā)酵96 h后發(fā)現(xiàn)，馴化株的生物量明顯高于野生株的生物量，其中馴化株ALE500的生物量最高，比相同時(shí)間點(diǎn)野生株的生物量高20.2%，二十二碳六烯酸(Docosahexaenoic acid, DHA)產(chǎn)量也提高了30.4%。此外，馴化株的脂肪酸不飽和度也有所提高，其中馴化株ALE500的不飽和度達(dá)到了1.11。采用5 L發(fā)酵罐驗(yàn)證馴化效果，結(jié)果顯示馴化株ALE500的生物量和DHA產(chǎn)量分別提高了19.74%和29.38%。綜上所述，使用脂肪酸合成途徑抑制劑稀禾定對(duì)裂殖壺菌進(jìn)行定向馴化的方法可以提高裂殖壺菌的發(fā)酵生物量和DHA產(chǎn)量。

裂殖壺菌；稀禾定；馴化；生物量；DHA

二十二碳六烯酸(Docosahexaenoic acid, DHA)是一種ω-3多不飽和脂肪酸(ω-3 PUFAs)，具有預(yù)防和治療心血管疾病、健腦益智和提高記憶力、改善視網(wǎng)膜功能和提高視力、抗癌、抗過(guò)敏等重要生理功能[1-3]。比較傳統(tǒng)魚(yú)油來(lái)源的DHA，一些海洋微生物油脂中的DHA含量更高[4]，且海洋微生物具有種質(zhì)資源豐富、培養(yǎng)簡(jiǎn)單可控、脂肪酸組成簡(jiǎn)單、不含魚(yú)腥味等優(yōu)點(diǎn)而成為可以替代魚(yú)油的重要DHA來(lái)源。其中，裂殖壺菌因生長(zhǎng)速度快、油脂含量高、DHA含量高且無(wú)毒副作用、易于培養(yǎng)、易于純化等優(yōu)點(diǎn)而成為一種有潛力的生產(chǎn)DHA的種質(zhì)資源。

為了提高裂殖壺菌的發(fā)酵生物量，克服裂殖壺菌在長(zhǎng)期的保存及使用過(guò)程中由于退化導(dǎo)致的發(fā)酵生物量低的缺點(diǎn)，以往研究主要集中在培養(yǎng)基配方、培養(yǎng)條件、發(fā)酵工藝以及遺傳改造等方面[5-7]，但是DHA 產(chǎn)量和質(zhì)量仍有較大的提升空間[8]。由于微生物有快速適應(yīng)不同環(huán)境的能力，基于實(shí)驗(yàn)室的微生物適應(yīng)性馴化(Adaptive Laboratory Evolution, ALE)已經(jīng)越來(lái)越被推崇為一種篩選并富集有利突變進(jìn)而可以獲得高活性或高抗性菌株的重要方法[9]。

乙酰輔酶A羧化酶(Acetyl-CoA carboxylase, ACCase)可以催化乙酰輔酶A生成丙二酸單酰輔酶A，此反應(yīng)是脂肪酸合成的限速步驟[10]。而稀禾定(sethoxydim, 2-[1-(乙氧基亞氨基)丁基]-5-[2-(乙硫基)丙基]-3-羥基-2-環(huán)己烯-1-酮)是該酶的抑制劑(包括但不限于稀禾定)[11]。DONG[11]使用泛素啟動(dòng)子在玉米細(xì)胞中過(guò)量表達(dá)狐尾粟胞內(nèi)的ACCase基因，使得稀禾定對(duì)玉米的損傷指數(shù)降低到33%，玉米油脂含量從24%提高到65%；SARA[12]在經(jīng)過(guò)7 000多次實(shí)驗(yàn)后證實(shí)，稀禾定可以殺死產(chǎn)油效率低的藻類(lèi)植物，同時(shí)也能促進(jìn)產(chǎn)油效率高的藻類(lèi)植物快速生長(zhǎng)。這表明稀禾定在海洋微藻產(chǎn)油方面具有篩選與促進(jìn)的雙重作用。作為原始的真核植物細(xì)胞，裂殖壺菌與植物有著密切的進(jìn)化關(guān)系[13]。在裂殖壺菌的培養(yǎng)基中添加稀禾定同樣會(huì)抑制細(xì)胞生長(zhǎng)，于是推測(cè)稀禾定也是通過(guò)抑制裂殖壺菌的脂肪酸合成而導(dǎo)致其衰弱甚至死亡的。本研究中，我們以Schizochytriumsp. S31為研究對(duì)象，采用適應(yīng)性馴化的方法對(duì)其進(jìn)行稀禾定馴化，提高其對(duì)稀禾定的耐受性，從而提高裂殖壺菌的發(fā)酵生物量和DHA產(chǎn)量。

1 材料與方法

1.1菌種

裂殖壺菌(Schizochytriumsp. S31)，購(gòu)自廣東微生物菌種保藏中心。

1.2主要試劑

十九烷酸甲酯(Methyl nonadecanoate，內(nèi)標(biāo))、二十二碳六烯酸甲酯(Docosahexaenoic acid methylester, DHA-ME，外標(biāo))、2-[1-(乙氧基亞氨基)丁基]-5-[2-(乙硫基)丙基]-3-羥基-2-環(huán)己烯-1-酮(稀禾定，Sethoxydim，純度≥98%)：色譜純，美國(guó)Sigma-Aldrich公司；苯酚、亞硝基鐵氰化鈉：分析純?cè)噭?，天津江天化工公司；葡萄糖測(cè)定試劑盒：中生北控公司。

1.3主要儀器

7890A/5975CAgilent氣相色譜與質(zhì)譜聯(lián)用儀，Agilent公司；5430R Eppendorf臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)，Eppendorf公司；LGJ-10冷凍干燥機(jī)，松源華興公司；ELX-808 96孔板掃描儀，基因公司；UV-1750紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)，日本島津公司；LWG-L96真空干燥離心機(jī)，湘儀離心機(jī)儀器公司；Forma 702 超低溫冰箱，Thermo公司。

1.4培養(yǎng)基

種子培養(yǎng)基(g/L)：葡萄糖5.0，酵母粉1.0，蛋白胨1.0，海鹽20.0，pH 6.5；

發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L)：葡萄糖40.0，酵母粉10.0，蛋白胨5.0，海鹽20.0，pH 6.5。

以上培養(yǎng)基均在1×105Pa壓力下滅菌30 min。

1.5方法

1.5.1 培養(yǎng)方法

種子發(fā)酵培養(yǎng)：一級(jí)液體種子發(fā)酵培養(yǎng)：50 mL種子培養(yǎng)基裝于250 mL三角瓶中，從斜面保藏菌種挑取單菌落接種于液體培養(yǎng)基，25 ℃、180 r/min培養(yǎng)2 d。二級(jí)液體種子發(fā)酵培養(yǎng)：100 mL種子培養(yǎng)基裝于500 mL三角瓶中，從一級(jí)種子液中按照接種量5%(v/v)取液體菌種，接種于滅菌的二級(jí)發(fā)酵培養(yǎng)基中，25 ℃、180 r/min培養(yǎng)2 d得二級(jí)種子液，進(jìn)入5 L發(fā)酵罐。

搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)：從一級(jí)液體種子中取種子液，接種于裝有50 mL發(fā)酵培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中，使起始OD660為0.4，25 ℃、180 r/min培養(yǎng)4 d。所有發(fā)酵培養(yǎng)基均未添加稀禾定，且每組做3個(gè)平行樣，定點(diǎn)取樣用于后續(xù)分析測(cè)定。

5 L反應(yīng)器補(bǔ)料分批發(fā)酵：初始葡萄糖濃度為40 g/L，裝液量為2 L，接種量10%(v/v)，培養(yǎng)溫度25 ℃，通氣為1.0 L/(L·min)，通過(guò)控制轉(zhuǎn)速使溶氧控制在30%以上。通過(guò)添加NaOH，維持pH在6.5 ± 0.1，消泡劑選用50 g/L生工Foam-free powder。發(fā)酵過(guò)程中每隔一定的時(shí)間取樣測(cè)定葡萄糖濃度、氨態(tài)氮濃度、生物量、油脂含量以及DHA含量。通過(guò)添加60%的葡萄糖控制罐內(nèi)葡萄糖質(zhì)量濃度在10 g/L以上。在發(fā)酵24 h后，為了防止補(bǔ)料發(fā)酵過(guò)程中的氮源限制向發(fā)酵液中流加酵母粉10 g。

1.5.2 馴化方法

取少量Schizochytriumsp. S31菌液涂布于含有10、50、100、200、300 μmol/L不同濃度稀禾定的固體種子培養(yǎng)基上，正常條件下進(jìn)行培養(yǎng)，同時(shí)以未添加稀禾定的固體平板作為對(duì)照。根據(jù)平板上的菌落長(zhǎng)出情況，確定稀禾定的抑制濃度為200 μmol/L。馴化過(guò)程中控制接種到培養(yǎng)基后的菌液濃度OD660為0.4，添加一定濃度的稀禾定，培養(yǎng)至OD660為10左右后傳代，仍然控制起始接種OD660為0.4。在傳代的過(guò)程中，待馴化株的長(zhǎng)勢(shì)由緩慢變正常后以50 μmol/L的增幅逐漸增大稀禾定的濃度，每一個(gè)特定稀禾定濃度持續(xù)幾代至十幾代不等。

1.5.3 耐受性測(cè)定

在四分格培養(yǎng)皿中依次倒入5 mL分別含有0、200、350、500 μmol/L稀禾定的固定種子培養(yǎng)基。待其凝固后，分別取野生株和馴化株ALE500在每格的固體培養(yǎng)基上進(jìn)行劃線。將其置于25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，48 h后取出進(jìn)行分析比較。

1.5.4 分析方法

生物量的測(cè)定：取3 mL發(fā)酵液置于已稱(chēng)重的離心管中，7 500 r/min離心5 min，棄上清后，用pH 6.5的PBS溶液洗滌2次，置于-80 ℃冰箱中凍結(jié)細(xì)胞，后用冷凍干燥機(jī)凍干至恒重(約24 h)后稱(chēng)重。

殘?zhí)堑臏y(cè)定：收集上步離心后的上清液，雙蒸水稀釋30倍，按照葡萄糖測(cè)定試劑盒(葡萄糖氧化酶法)使用說(shuō)明書(shū)進(jìn)行測(cè)定[14]。

氨態(tài)氮的測(cè)定：靛酚藍(lán)-分光光度法[15]。

總油脂的測(cè)定：有機(jī)溶劑萃取方法[16]。

脂肪酸含量的測(cè)定[17]：稱(chēng)取凍干后的菌體100 mg，加入2 mL氯仿和2 mL酯化液(含有3%(v/v)濃硫酸和2.5 g/L十九烷酸甲酯(作為內(nèi)標(biāo))的甲醇溶液)，在100 ℃下酯化2 h，取出后冷卻至室溫，加入1 mL雙蒸水。充分振蕩后靜置至溶液分層，取下層溶液在氣相色譜與質(zhì)譜聯(lián)用儀Agilent 7890A/5975C中檢測(cè)。氣相色譜條件：色譜柱：HP-5MS，載體為氮?dú)?，分流比?0∶1。升溫程序?yàn)椋浩鹗紲囟?0 ℃并停留2 min，以10 ℃/min的速度升至300 ℃并停留20 min。質(zhì)譜掃描范圍為：35～650 amu。質(zhì)譜結(jié)果通過(guò)NIST2002數(shù)據(jù)庫(kù)檢索比對(duì)，各組分含量由歸一化法定量。DHA的定性分析：在上述氣相色譜條件下，用已知的DHA甲酯標(biāo)準(zhǔn)品色譜峰的保留時(shí)間與樣品甲酯化后脂肪酸甲酯各組分色譜峰的保留時(shí)間對(duì)照進(jìn)行分析。

1.5.5 統(tǒng)計(jì)分析

使用SPSS軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行t檢驗(yàn)分析差異性。以野生型數(shù)值作為對(duì)照，P<0.005，表明與野生型的差異極顯著；P<0.01，表明差異非常顯著；P<0.05，表明差異顯著。

2 結(jié)果和分析

2.1裂殖壺菌的稀禾定馴化曲線及耐受性測(cè)定

鑒于稀禾定作為乙酰輔酶A羧化酶的抑制劑，在本研究中，以Schizochytriumsp. S31為研究對(duì)象，選定稀禾定作為馴化劑，采用適應(yīng)性馴化的方法對(duì)其進(jìn)行稀禾定馴化，如圖1所示。

圖1 稀禾定馴化裂殖壺菌曲線圖Fig.1 Laboratory evolution of sethoxydim tolerance in Schizochytrium sp. S31

經(jīng)過(guò)約200天65代的連續(xù)馴化，裂殖壺菌對(duì)稀禾定的耐受濃度逐漸提高到了500 μmol/L，是起始馴化濃度的2.5倍。但是隨著稀禾定濃度的增大，馴化株達(dá)到平臺(tái)期的時(shí)間逐漸延長(zhǎng)，且在當(dāng)前濃度下的傳代次數(shù)隨之增多。在提高稀禾定馴化濃度之前對(duì)可在當(dāng)前濃度下穩(wěn)定遺傳的馴化株進(jìn)行保種。分別取野生株(Wild type)、耐200 μmol/L稀禾定的馴化株(ALE200)、耐300 μmol/L稀禾定的馴化株(ALE300)、耐400 μmol/L稀禾定的馴化株(ALE400)和耐500 μmol/L稀禾定的馴化株(ALE500)用作后續(xù)分析實(shí)驗(yàn)。為了驗(yàn)證馴化株對(duì)稀禾定的耐受性，設(shè)計(jì)了平板表型驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。如圖2(a)、(b)所示，野生株只在不含稀禾定和含200 μmol/L稀禾定的平板上生長(zhǎng)，且在含200 μmol/L稀禾定的平板上的菌落數(shù)明顯少于不含稀禾定的對(duì)照組。而馴化株ALE500卻可以在含以上所有濃度稀禾定的平板上生長(zhǎng)，但是由于高濃度稀禾定的脅迫，稀禾定濃度越高，菌落數(shù)越少。由此結(jié)果得出，通過(guò)稀禾定馴化確實(shí)提高了裂殖壺菌對(duì)稀禾定的耐受性。

0：c(稀禾定)= 0 μmol/L；200：c(稀禾定)= 200 μmol/L；350：c(稀禾定)= 350 μmol/L；500：c(稀禾定)= 500 μmol/L圖2 裂殖壺菌野生株(a)和馴化株ALE500(b)的平板表型驗(yàn)證Fig.2 Phenotype validation of wild type (a) and evolved strain ALE500 (b) on plate

2.2不同裂殖壺菌馴化菌株的搖瓶發(fā)酵性能差異比較

將上述5株不同的裂殖壺菌菌株接入相同的發(fā)酵培養(yǎng)基中，按照1.5.1的培養(yǎng)條件進(jìn)行培養(yǎng)，探討其搖瓶發(fā)酵性能的差異。不同菌株的生長(zhǎng)曲線如圖3所示，前24 h是菌體生長(zhǎng)的適應(yīng)期，菌株之間差別不明顯。24 h之后，菌體生長(zhǎng)便進(jìn)入指數(shù)生長(zhǎng)期，菌株之間的差別逐漸拉大。馴化菌株的生長(zhǎng)速率明顯高于野生株，且隨著馴化菌株耐受濃度的增大，生長(zhǎng)速率也逐漸增大。和野生株相比，馴化菌株的耗糖和耗氮速率明顯加快，且總耗糖量和總耗氮量也明顯增多(圖3)。

圖3 裂殖壺菌野生株和馴化株生長(zhǎng)曲線Fig.3 The growth curves of wild type and four evolved strains

其中，野生株96 h的總耗糖量為33.41 g/L，而馴化株ALE500的總耗糖量卻達(dá)到了38.02 g/L。如表1所示，馴化株的最大比生長(zhǎng)速率呈依次增大的趨勢(shì)，其中馴化株ALE500的最大比生長(zhǎng)速率0.356比野生株的最大比生長(zhǎng)速率0.294高21.1%。由于在相同的發(fā)酵周期，馴化株的生物量比野生株的高，因此馴化株的干重產(chǎn)率也高于野生株。搖瓶發(fā)酵野生株和不同馴化株72 h后，馴化株ALE500的干重產(chǎn)率達(dá)到了0.20 g/(L·h)，而野生株僅為0.17 g/(L·h)，ALE500馴化株的干重產(chǎn)率是是野生株的1.18倍(表1)。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果均表明，通過(guò)稀禾定馴化裂殖壺菌可以有效提高裂殖壺菌的發(fā)酵生物量，進(jìn)而可以獲得高DHA產(chǎn)率的馴化菌株。

表1 裂殖壺菌野生株和馴化株搖瓶發(fā)酵特性

注：***：P<0.005；**：P<0.01；*：P<0.05.

2.3不同裂殖壺菌馴化菌株的脂肪酸分布

C14∶0，C15∶0，C16∶0，C17∶0及C18∶0是裂殖壺菌胞內(nèi)主要的飽和脂肪酸，二十碳五烯酸(Eicosapentaenoic Acid, EPA)和DHA則是主要的不飽和脂肪酸。針對(duì)不同裂殖壺菌馴化株及野生株的脂肪酸成分分析表明，在幾株馴化株與野生株中，DHA占總脂肪酸的含量沒(méi)有顯著變化(表2)。然而由表1所示，馴化株ALE500的DHA產(chǎn)量達(dá)到了2.23 g/L，與野生株的1.71 g/L相比，其差異顯著性水平P<0.005，這表明高濃度的稀禾定馴化可以顯著提高裂殖壺菌的DHA產(chǎn)量。同時(shí)，馴化株ALE500的PUFA/SFAs值達(dá)到了1.11，是野生株的1.13倍，其差異顯著性水平0.005

表2 裂殖壺菌野生株和馴化株脂肪酸成分對(duì)比

2.4野生株與馴化株的補(bǔ)料分批發(fā)酵比較

為了驗(yàn)證裂殖壺菌馴化株的高生長(zhǎng)能力，將野生株和馴化株ALE500分別應(yīng)用到5 L發(fā)酵罐中進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)，結(jié)果如圖4(a)所示。

圖4 裂殖壺菌野生株和馴化株耗糖(a)和耗氮(b)速率Fig. 4 The glucose (a) and ammonium nitrogen (b) consumption of wild type and four evolved strains

雖然野生株和馴化株ALE500的生物量在細(xì)胞指數(shù)生長(zhǎng)期都快速增長(zhǎng)，但是馴化株的生物量增長(zhǎng)速率要明顯高于野生株。其中在發(fā)酵84 h時(shí)，馴化株ALE500的生物量比同一時(shí)間點(diǎn)野生株的生物量高21.6%。84 h之后，生物量繼續(xù)增長(zhǎng)，隨后便進(jìn)入細(xì)胞生長(zhǎng)平臺(tái)期(>96 h)，馴化株ALE500的細(xì)胞干重達(dá)到了52.6 g/L。比野生株高19.74%(表3)。雖然在整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中，野生株和馴化株ALE500的油脂含量差別不大，但是馴化株ALE500的油脂產(chǎn)量卻明顯高于野生株(圖4(a))。發(fā)酵60 h后，隨著生物量的增長(zhǎng)，馴化株ALE500呈現(xiàn)出了較野生株更強(qiáng)的油脂積累能力。馴化株ALE500的油脂產(chǎn)量最大達(dá)到了28.01 g/L，比野生株提高了24.43%(表3)。馴化株ALE500的DHA占總脂肪酸含量持續(xù)增長(zhǎng)，最終達(dá)到了53%，比野生株提高了3.92%。和野生株相比，馴化株ALE500實(shí)現(xiàn)了更高的DHA產(chǎn)量，最高在發(fā)酵120 h時(shí)達(dá)到了11.14 g/L，比野生株高29.38%。以上結(jié)果均表明，經(jīng)過(guò)稀禾定馴化得到的馴化株，其發(fā)酵生物量和DHA產(chǎn)量均有所提高。

圖5 裂殖壺菌野生株和馴化株ALE500補(bǔ)料分批發(fā)酵過(guò)程中生物量和總油脂(a)、DHA占總脂肪酸含量和DHA產(chǎn)量(b)的變化比較曲線Fig. 5 Comparisons between wild type and evolved strain ALE500 for biomass and total lipids(a), DHA percentage in total fatty acids and DHA yield(b) in fed-batch fermentation

表3 裂殖壺菌野生株和馴化株ALE500的補(bǔ)料分批發(fā)酵參數(shù)比較

注：***：P<0.005；：P<0.01；*：P<0.05.

3 討論

菌種的生物量低、易退化和不穩(wěn)定已成為DHA發(fā)酵產(chǎn)率低的主要因素。為了克服以上缺點(diǎn)，一方面，傳統(tǒng)的菌種改造技術(shù)將繼續(xù)為生物發(fā)酵提供簡(jiǎn)單易行的工業(yè)菌株改造手段。比如：YAN[19]等把大腸桿菌中的乙酰輔酶A合成酶(acetyl-CoA synthetase, ACS)基因整合到裂殖壺菌Schizochytriumsp. TIO1101的基因組上，通過(guò)過(guò)量表達(dá)外源ACS基因，可以提高裂殖壺菌的生長(zhǎng)速率和耗糖速率，最終實(shí)現(xiàn)生物量和脂肪酸含量分別提高了29.9%和11.3%；另一方面，基于實(shí)驗(yàn)室的微生物馴化方法得到對(duì)某一脅迫有高耐受性的菌株，結(jié)合基因組重測(cè)序、轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白組學(xué)或代謝組學(xué)的研究，在整體水平上得到與耐受性相關(guān)的基因、mRNA、蛋白、代謝物等其他的遺傳或代謝基礎(chǔ)，從而為后續(xù)基因工程改造高產(chǎn)菌株提供科學(xué)依據(jù)和靶點(diǎn)[20]，然而這在裂殖壺菌馴化研究中還沒(méi)有相關(guān)報(bào)道。

稀禾定作為一種環(huán)己二酮類(lèi)除草劑，是乙酰輔酶A羧化酶的抑制劑。如果將其添加到微藻培養(yǎng)基中，ACCase活性較弱的細(xì)胞衰弱甚至死亡，而ACCase活性較強(qiáng)的細(xì)胞可以生長(zhǎng)。以此為出發(fā)點(diǎn)，嘗試在裂殖壺菌培養(yǎng)基中添加稀禾定，采用基于實(shí)驗(yàn)室的微生物適應(yīng)性馴化的方法對(duì)Schizochytriumsp. S31進(jìn)行稀禾定馴化，逐步提高其對(duì)稀禾定的耐受性，從而可以獲得ACCase活性較強(qiáng)的馴化株。為了驗(yàn)證馴化株對(duì)稀禾定的耐受性，設(shè)計(jì)了平板表型驗(yàn)證，結(jié)果表明Schizochytriumsp. S31對(duì)稀禾定的耐受性確實(shí)有了大幅度的提高。通過(guò)補(bǔ)料分批發(fā)酵比較裂殖壺菌野生株與馴化株ALE500的生長(zhǎng)及發(fā)酵特性，裂殖壺菌馴化株ALE500的生物量比野生株提高了19.74%，油脂產(chǎn)量提高了24.43%，DHA產(chǎn)量提高了29.38%。另外，本研究把裂殖壺菌對(duì)稀禾定的耐受濃度只提高到了500 μmol/L，將來(lái)仍然可以繼續(xù)對(duì)其進(jìn)行馴化，以得到生物量更高的裂殖壺菌。

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ImprovinggrowthandDHAproductionofSchizochytriumsp.bysethoxydim-basedadaptiveevolution

WANG Kang, LIU Liang-sen, CHEN Lei*, ZHANG Wei-wen

(School of Chemical Engineering and Technology, Tianjin University, Tianjin 300350, China)

Laboratory-based adaptive evolution was applied to increase the tolerance to ACCase inhibitor sethoxydiminSchizochytriumsp. S31. Through an experimental evolution process of continuous 65 passages for 200 days, the sethoxydim tolerance concentration inSchizochytriumsp. was increased from 200 μmol/L to 500 μmol/L. After 96 h fermentation in shake flasks, a comparative analysis of wild type and evolved strains showed that the biomass of the final evolved strain ALE500 reached 14.7 g/L at 72 h, which was 20.2% higher than that of wild type. In addition, docosahexaenoic acid (DHA) yield was increased by 30.4% in the evolved strain compared with the wild type. Moreover, the unsaturation degree of total fatty acids was also significantly increased in the evolved strain ALE500 and reached 1.11. To further verify the domestication effect of evolved strain, fed-batch strategy was applied and 19.74% increase of biomass and 29.38% increase of DHA yield were observed. This study demonstrated that the application of the sethoxydim-tolerance increased the biomass accumulation and DHA production inSchizochytriumsp. S31.

Schizochytriumsp.； Sethoxydim；adaptive evolution; growth; docosahexaenoic acid (DHA)

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.014107

碩士研究生(陳磊副教授為通訊作者,E-mail:lchen@tju.edu.cn)。

國(guó)家自然科學(xué)基金(21621004)；國(guó)家“973”計(jì)劃(2014CB745101)；高等學(xué)校博士學(xué)科點(diǎn)專(zhuān)項(xiàng)科研基金(20120032110020、20130032120022)；天津市應(yīng)用基礎(chǔ)與前沿技術(shù)研究計(jì)劃(15JCZDJC32500)

2017-02-21，改回日期：2017-03-22