曾海娟，劉武康，謝曼曼，丁承超，董慶利，劉 箐*

（上海理工大學(xué)醫(yī)療器械與食品學(xué)院，上海 200093）

單核細(xì)胞性李斯特菌基因dal的敲除及其生物學(xué)特性初步分析

曾海娟，劉武康，謝曼曼，丁承超，董慶利，劉 箐*

（上海理工大學(xué)醫(yī)療器械與食品學(xué)院，上海 200093）

在單核細(xì)胞性李斯特菌（Listeria monocytogenes）野生株EGDe actA及in lB雙基因缺失株（EGDe ΔactAΔinlB）的基礎(chǔ)上，利用同源重組的方法進(jìn)一步構(gòu)建了缺失營(yíng)養(yǎng)基因dal的菌株（EGDe ΔactAΔinlBΔdal），并對(duì)該缺失菌株生長(zhǎng)狀態(tài)、毒力基因表達(dá)水平、生物被膜的形成量及細(xì)胞侵襲等方面作進(jìn)一步分析。結(jié)果顯示，37 ℃搖床培養(yǎng)6 h后，缺失株的菌濃度顯著低于EGDe ΔactAΔinlB（P＜0.001），培養(yǎng)基中補(bǔ)充D-丙氨酸的缺失株生長(zhǎng)速率與親本株相比無(wú)顯著差異；實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)結(jié)果顯示，缺失株的sigB基因表達(dá)水平變化最明顯（P＜0.01），約下調(diào)90%；缺失株生物被膜形成量顯著增加（P＜0.05），培養(yǎng)基補(bǔ)充D-丙氨酸后缺失株生物被膜的生成量與親本株相比無(wú)差異；對(duì)Coca-2細(xì)胞的侵襲無(wú)影響，表明該基因?qū)?xì)菌生長(zhǎng)能力及生物被膜形成具有重要的調(diào)控作用，并不影響菌株對(duì)細(xì)胞的侵襲力。此缺失株的構(gòu)建為進(jìn)一步研究基因dal的功能提供了理論支持。

單核細(xì)胞性李斯特菌；基因敲除；生長(zhǎng)能力；細(xì)胞侵襲；生物被膜

單核細(xì)胞性李斯特菌（Listeria monocytogenes）是一種重要的革蘭氏染色陽(yáng)性食源性致病菌，在自然環(huán)境中廣泛分布[1]。單核細(xì)胞性李斯特菌具有較強(qiáng)的生存能力，pH 4.5～9、溫度0～45 ℃均可增殖[2]，在干酪、原奶、冰淇淋、生肉、海鮮及方便食品，如：熟肉、熏魚(yú)中均有檢出[3-6]。超過(guò)99%的單核細(xì)胞性李斯特菌感染是由于食用了被該菌污染的食物[7]，死亡率達(dá)30%以上。單核細(xì)胞性李斯特菌是典型的胞內(nèi)寄生菌，它可通過(guò)李斯特菌溶血素、磷脂酰肌醇特異性磷脂酶C和卵磷脂酶的裂解作用逃離吞噬小體[8-9]，并在細(xì)胞質(zhì)中增殖。單核細(xì)胞性李斯特菌可穿透腸道屏障、胎盤(pán)屏障和血腦屏障，引起哺乳動(dòng)物和人的腸胃炎、敗血癥、孕畜流產(chǎn)及腦膜炎等[10]。

基因dal為營(yíng)養(yǎng)基因，存在于多種細(xì)菌中。其編碼丙氨酸消旋酶（alanine racemase，A lr）蛋白，可將L-丙氨酸轉(zhuǎn)化為D-丙氨酸（D-A la），后者為細(xì)菌細(xì)胞壁肽聚糖的重要組成成分[11]。在革蘭氏陽(yáng)性菌中，例如芽孢桿菌屬與乳桿菌屬[12]，僅存在一種催化生成D-A la的酶，即為A lr。而革蘭氏陰性菌中，例如大腸桿菌[13]，存在兩種可催化產(chǎn)生D-A la的酶（A lr與DadX）。在單核細(xì)胞性李斯特菌中，同樣存在2 種途徑生成D-A la：基因dal編碼A lr，可將L-A la轉(zhuǎn)化為D-A la；基因dat編碼D-氨基酸氨基轉(zhuǎn)移酶蛋白，可將D-谷氨酸與丙酮酸通過(guò)轉(zhuǎn)氨作用生成D-A la與α-酮戊二酸，當(dāng)dal與dat基因全部缺失時(shí)，由于不能合成D-A la，在無(wú)外源D-A la添加時(shí)，該dal/dat雙基因缺失菌株將發(fā)生溶菌死亡[14]。目前尚鮮有研究報(bào)道，當(dāng)菌株缺失dal基因時(shí)，對(duì)該缺失菌株在生長(zhǎng)狀態(tài)、毒力基因表達(dá)水平、細(xì)胞侵襲性、生物被膜的生成量等方面的影響。

本研究以單核細(xì)胞性李斯特菌野生株EGDe actA及inlB雙基因缺失株（EGDe ΔactAΔinlB）為親本，利用同源重組的方法進(jìn)一步構(gòu)建缺失dal基因的菌株（EGDe ΔactAΔinlBΔdal），并對(duì)構(gòu)建的該缺失菌株生長(zhǎng)狀態(tài)、毒力基因表達(dá)水平、細(xì)胞侵襲性及生物被膜的生成量等方面作進(jìn)一步分析。該項(xiàng)研究對(duì)菌株EGDe ΔactAΔinlBΔdal的特性提供了依據(jù)，為研究dal基因的功能提供材料。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

單核細(xì)胞性李斯特菌野生株E G D e由本實(shí)驗(yàn)室保存，EGD e Δa c tAΔin lB由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建。大腸桿菌（Esch erich ia co li）DH 5α感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)自天根生化科技（北京）有限公司，穿梭質(zhì)粒pKSV7由上海交通大學(xué)史賢明教授惠贈(zèng)。

細(xì)菌總DNA提取試劑盒、膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒 天根生化科技（北京）有限公司；實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（quantitative real-time polymerase chain reaction，qRT-PCR）相關(guān)試劑、PCR相關(guān)試劑、DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶 寶生物工程（大連）有限公司；腦心浸液培養(yǎng)基（brain heart infusion，BHI） 北京陸橋技術(shù)有限公司；氨芐青霉素、氯霉素及其他常規(guī)試劑國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

PCR熱循環(huán)儀、q RT-PCR儀 美國(guó)A p p lied Biosystems公司；凝膠成像儀、NANODROP濃度測(cè)定儀美國(guó)Thermo公司；M ini-power電泳儀、電穿孔儀 美國(guó)伯樂(lè)公司；SpectraM ax M 2多功能酶標(biāo)儀 美國(guó)分子儀器公司。

1.3 方法

1.3.1 引物

根據(jù)GenBank登錄的基因序列（Gene ID：986294），用Prim er3 Inpu t設(shè)計(jì)擴(kuò)增上游同源臂引物P1/P2，下游同源臂引物P3/P4。連接后PCR引物為P1/P4，全長(zhǎng)1 342 bp，缺失片段大小為1 202 bp。相關(guān)引物序列見(jiàn)表1，由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

表1 PCR擴(kuò)增所用的引物序列Table 1 Primer sequences used for PCR am p lifi cation

1.3.2 基因缺失株的構(gòu)建

1.3.2.1 穿梭重組質(zhì)粒的構(gòu)建

利用引物P1/P2及P3/P4分別擴(kuò)增dal基因的上下游同源臂片段，經(jīng)Eco RⅠ單酶切后30℃進(jìn)行連接16 h。以連接體系為模板，利用引物P1/P4對(duì)連接產(chǎn)物進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)DNA回收試劑盒割膠純化回收，再經(jīng)SalⅠ、SmaⅠ雙酶切。酶切后經(jīng)割膠純化回收，與經(jīng)Sa lⅠ、SmaⅠ酶切的穿梭質(zhì)粒pKSV 7連接，并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中，涂布含氨芐青霉素（100 μg/m L）的LB固體培養(yǎng)基培養(yǎng)。

1.3.2.2 電轉(zhuǎn)化與同源重組

挑取LB平板的單菌落培養(yǎng)，利用P1/P4進(jìn)行PCR鑒定。鑒定為陽(yáng)性的克隆抽提質(zhì)粒后進(jìn)行雙酶切鑒定，并送華大基因測(cè)序。測(cè)序正確的重組質(zhì)粒經(jīng)11.25 kV/c m、4 ms電轉(zhuǎn)化至EGDe ΔactAΔinlB中，氯霉素（10 μg/m L）抗性平板培養(yǎng)48 h，并用引物P1/P4對(duì)平板上的單菌落進(jìn)行鑒定。鑒定為陽(yáng)性的克隆在42 ℃和氯霉素雙重壓力下傳15 代，使之發(fā)生單交換同源重組。然后在30 ℃無(wú)抗性條件下傳15 代，末代培養(yǎng)物劃線于無(wú)抗性BHI平板。

1.3.2.3 缺失株的鑒定

挑取BHI平板上的單菌落于液體培養(yǎng)基30 ℃培養(yǎng)，分別用引物P1/P4及引物dal-F/dal-R進(jìn)行PCR鑒定，鑒定成功的菌株分別劃線于BHI平板及含氯霉素（10 μg/m L）抗性平板，37 ℃培養(yǎng)。

1.3.3 缺失株生長(zhǎng)曲線測(cè)定

為確定該基因是否會(huì)對(duì)菌株生長(zhǎng)能力有影響，采用酶標(biāo)儀對(duì)EGDe ΔactAΔinlB及敲除da l菌株EGDe ΔactAΔinlBΔdal（外源不補(bǔ)充及補(bǔ)充200 μg/m L D-A la）的生長(zhǎng)進(jìn)行測(cè)定[15-16]。挑取平板上的單菌落37 ℃過(guò)夜培養(yǎng)15 h后，按1∶100轉(zhuǎn)接種到新鮮BHI培養(yǎng)基中，37℃搖床培養(yǎng)。每間隔1 h吸取樣品于96 孔酶標(biāo)板中，酶標(biāo)儀測(cè)定600 nm波長(zhǎng)處的光密度（OD600nm）后繼續(xù)37 ℃搖床培養(yǎng)，連續(xù)測(cè)12 h。

1.3.4 毒力基因表達(dá)水平的qRT-PCR檢測(cè)

表2 qRT-PCR所用的引物序列Table 2 Primer sequences used for qRT-PCR

為確定該營(yíng)養(yǎng)基因缺失后是否會(huì)對(duì)其他毒力基因及dat的表達(dá)量有影響，本實(shí)驗(yàn)選取了李斯特菌EGDe的12 個(gè)毒力基因[17]及與D-A la合成有關(guān)的2 個(gè)基因，比較了3 株菌在毒力基因表達(dá)量上存在的差異。分別挑取EGDe、EGDe ΔactAΔinlB及EGDe ΔactAΔinlBΔdal平板上的單菌落過(guò)夜培養(yǎng)后，各取5 m L飽和菌液提取RNA后，按照TaKaRa反轉(zhuǎn)錄試劑盒的操作說(shuō)明先去除其中的DNA，再反轉(zhuǎn)錄為cDNA。以cDNA為模板進(jìn)行qRTPCR，實(shí)驗(yàn)中選取的毒力基因引物序列參照文獻(xiàn)[18]，見(jiàn)表2。數(shù)據(jù)采用2-ΔΔCt法進(jìn)行相對(duì)定量分析，以EGDe的基因表達(dá)水平為對(duì)照，以16S rRNA為內(nèi)參。計(jì)算公式為：ΔCt=菌株目的基因Ct均值-各自內(nèi)參基因Ct均值；ΔΔCt=ΔCt（敲除株及親本株目的基因）-ΔCt（對(duì)應(yīng)的EGDe目的基因）。2-ΔΔCt為毒力基因?qū)GDe相應(yīng)毒力基因的表達(dá)量的倍數(shù)，即EGDe的每個(gè)目的基因表達(dá)水平均以1表示，EGDe ΔactAΔinlB及EGDe ΔactAΔinlBΔdal的目的基因表達(dá)水平大于1為表達(dá)上調(diào)，反之則為表達(dá)下調(diào)。

1.3.5 生物被膜生成量的測(cè)定

構(gòu)成生物被膜的胞外多糖可與結(jié)晶紫結(jié)合，可利用胞外多糖的量來(lái)衡量生物被膜的生成量。操作方法根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道并稍作改良后進(jìn)行[19]。將過(guò)夜培養(yǎng)的細(xì)菌用BHI液體培養(yǎng)基調(diào)整至OD600nm為0.15，取200 μL菌懸液加入96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中，于37 ℃條件下培養(yǎng)48 h后，無(wú)菌PBS洗3 遍，150 μL 1%的結(jié)晶紫染色30 m in，無(wú)菌水洗3遍，每孔滴加170 μL 95%乙醇溶液洗脫30 m in，酶標(biāo)儀測(cè)量其在570 nm波長(zhǎng)處的吸光度。

1.3.6 細(xì)胞侵襲實(shí)驗(yàn)

按照相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道[20]，將生長(zhǎng)良好的Caco-2細(xì)胞消化并轉(zhuǎn)移至12 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中，過(guò)夜培養(yǎng)20 h左右。細(xì)菌侵襲前，將細(xì)胞培養(yǎng)板中完全培養(yǎng)基吸出，換成不含血清的不完全培養(yǎng)基，然后按細(xì)菌和細(xì)胞100∶1的比例分別加入新鮮的野生株EGDe、親本株EGDe ΔactAΔinlB及敲除株EGDe ΔactAΔinlBΔdal共培養(yǎng)3 h。侵襲結(jié)束后，換用慶大霉素（200 μg/m L）37 ℃處理30 m in。將慶大霉素吸出，無(wú)菌生理鹽水輕柔清洗2 次，再用1% Triton X-100裂解細(xì)胞，釋放細(xì)菌。每孔充分吹打并收集至離心管中，生理鹽水梯度稀釋涂布BHI平板，置于37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)并計(jì)數(shù)。

2 結(jié)果與分析

2.1 上下游片段擴(kuò)增及連接

上下游同源臂的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳，條帶大小分別為607 bp和735 bp左右（圖1a），連接后PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)電泳，顯示一條約1 342 bp的條帶（圖1b），與預(yù)期結(jié)果一致。

圖1 上下游同源臂（a）及連接后片段（b）大小Fig. 1 Fragment sizes of separate and connected upstream and downstream homologous arm s

2.2 穿梭重組載體構(gòu)建及雙酶切鑒定結(jié)果

連接后片段經(jīng)SalⅠ、SmaⅠ雙酶切后，與同樣酶切的穿梭質(zhì)粒pKSV7連接，并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中。陽(yáng)性克隆測(cè)序成功后，經(jīng)雙酶切鑒定，片段大小與預(yù)期一致（圖2a），表明重組載體構(gòu)建成功。抽提質(zhì)粒電轉(zhuǎn)化至EGDe ΔactAΔinlB中，引物P1/P4進(jìn)行PCR鑒定，可見(jiàn)1 342 bp左右的條帶（圖2b泳道1～3），表明重組質(zhì)粒已經(jīng)電轉(zhuǎn)化至EGDe ΔactAΔinlB中。

圖2 雙酶切（a）及電轉(zhuǎn)化（b）鑒定結(jié)果Fig. 2 Identifi cation by doub le enzyme digestion and electrotransform ation

2.3 缺失株的鑒定

dal-F/dal-R的結(jié)合位點(diǎn)位于上游同源臂引物P2及下游同源臂引物P3之間1 202 bp的序列上，若dal基因被敲除，則該引物將不會(huì)擴(kuò)增出條帶。鑒定時(shí)，采用引物P1/P4及引物dal-F/dal-R對(duì)單菌落分別進(jìn)行PCR擴(kuò)增，若P1/P4擴(kuò)增出1 342 bp左右的條帶，而dal-F/dal-R未擴(kuò)增出條帶，則該菌株為疑似敲除菌株。如圖3a所示，引物P1/P4擴(kuò)增出1 342 bp左右的條帶（泳道3），而未敲除菌株（泳道1、2）擴(kuò)增出約2 544 bp的條帶；如圖3b所示，引物dal-F/dal-R未擴(kuò)增出條帶（泳道3），而未敲除株擴(kuò)增出約428 bp的條帶（泳道1、2），表明3號(hào)為疑似敲除株，經(jīng)氯霉素抗性進(jìn)一步鑒定，該克隆不能在抗性平板上生長(zhǎng)，確定3號(hào)為敲除株。

圖3 基因缺失株的鑒定Fig. 3 Identification of dal deletion mutant

2.4 生長(zhǎng)曲線分析

圖4 生長(zhǎng)曲線Fig. 4 Grow th curves

酶標(biāo)儀測(cè)定連續(xù)12 個(gè)時(shí)間點(diǎn)的OD600nm值繪制生長(zhǎng)曲線，如圖4所示，與親本株EGDe ΔactAΔinlB相比，敲除株EGDe ΔactAΔinlBΔdal從培養(yǎng)6 h的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期到12 h平臺(tái)期達(dá)到的菌濃度顯著降低（P＜0.001），而在敲除株培養(yǎng)基中添加D-A la后生長(zhǎng)趨勢(shì)與親本株相比無(wú)差別。表明盡管李斯特菌可通過(guò)另一途徑經(jīng)丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶作用產(chǎn)生D-Ala，但dal基因的缺失使菌株的生長(zhǎng)能力降低。

2.5 毒力基因表達(dá)結(jié)果

圖5 qRT-PCR結(jié)果Fig. 5 Viru lence gene exp ression levels detected by RT-PCR

由圖5可知，菌株EGDe ΔactAΔinlBΔdal的dal基因無(wú)信號(hào)，進(jìn)一步驗(yàn)證dal基因的缺失；EGDe ΔactAΔinlB與EGD e相比，未有顯著性差異（P＞0.0 5）；EGDe ΔactAΔinlBΔdal與EGDe ΔactAΔinlB相比，基因表達(dá)量均略微下調(diào)，其中sigB基因表達(dá)水平變化最明顯（P＜0.01），約下調(diào)90%。

2.6 生物被膜生成量分析

圖6 生物被膜生成量比較Fig. 6 Comparison of biofi lm formation between the wild-type and the mutant strains

生物被膜是細(xì)菌抵抗外界不利環(huán)境時(shí)形成的，它是一種多細(xì)胞聚合物，由細(xì)菌團(tuán)塊與表多糖、蛋白和胞外DNA構(gòu)成的細(xì)胞外基質(zhì)形成的復(fù)合物。由圖6可知，dal缺失株與野生株EGDe及親本株EGDe ΔactAΔinlB相比，形成生物被膜的能力顯著增加（P＜0.05），而在培養(yǎng)基中添加D-A la后缺失株菌膜生成量與EGDe及EGDe ΔactAΔinlB相比均無(wú)顯著差異，推測(cè)由于dal基因的缺失使菌株處于D-A la營(yíng)養(yǎng)不足的脅迫狀態(tài)，因而對(duì)于外界不利條件形成自我保護(hù)的生物被膜。

2.7 細(xì)胞侵襲結(jié)果

由圖7敲除株對(duì)Caco-2細(xì)胞侵襲結(jié)果可以看出，與野生株相比敲除actA及inlB基因后，菌株EGDe ΔactAΔinlB的侵襲能力顯著下降（P＜0.01），表明actA及inlB基因在細(xì)胞侵襲過(guò)程中發(fā)揮了重要作用[21]。但dal基因敲除后，與菌株EGDe ΔactAΔinlB相比，并未對(duì)侵襲結(jié)果產(chǎn)生顯著影響，表明dal基因敲除后，菌株對(duì)細(xì)胞的侵襲力并無(wú)發(fā)生變化，也不會(huì)引起菌株毒力返祖的現(xiàn)象。

圖7 細(xì)胞侵襲結(jié)果Fig. 7 Com parison of cell invasion ability between the w ild-type and the mutant strains

3 討 論

單核細(xì)胞性李斯特菌識(shí)別、黏附與侵入宿主細(xì)胞的過(guò)程與內(nèi)化素基因（inl）分泌的內(nèi)化素A和B有關(guān)[22-23]，而其細(xì)胞內(nèi)增殖及細(xì)胞間擴(kuò)散能力則由毒力基因plcA、plcB、hly、prfA、actA等介導(dǎo)[24-26]。本研究在單核細(xì)胞性李斯特菌actA及inlB雙基因缺失株的基礎(chǔ)上成功構(gòu)建了dal基因缺失的三基因缺失株，并對(duì)該缺失菌株的生長(zhǎng)特性、毒力基因表達(dá)的變化、生物被膜的生成量及對(duì)細(xì)胞的侵襲性進(jìn)行了研究。結(jié)果顯示，缺失dal基因的菌株在無(wú)外源D-A la補(bǔ)充時(shí)，雖不影響菌株的生存，但從生長(zhǎng)曲線可以看出，缺失株6 h后菌濃度低于親本株，而外源補(bǔ)充D-A la后生長(zhǎng)能力與親本株相比無(wú)差異，表明通過(guò)丙氨酸轉(zhuǎn)氨作用單一途徑合成D-A la不足以維持菌株原有的生長(zhǎng)繁殖速率，使得菌濃度降低。qRT-PCR結(jié)果顯示，sigB基因表達(dá)水平約下調(diào)90%。由于sigB基因在許多革蘭氏陽(yáng)性菌，例如芽孢桿菌屬、李斯特菌和金黃色葡萄球菌中，作為應(yīng)激反應(yīng)的中心調(diào)節(jié)子[27-28]，推斷菌株EGDe ΔactAΔinlBΔdal在外界不利條件下生長(zhǎng)能力可能有一定影響。缺失株生物被膜生成量顯著增加（P＜0.05），但在培養(yǎng)基中添加D-A la后生物被膜生成量與親本株相比無(wú)差異，表明基因dal缺失使菌株處于一種外界營(yíng)養(yǎng)脅迫狀態(tài)，該脅迫對(duì)菌體生長(zhǎng)是不利的，因而產(chǎn)生了應(yīng)對(duì)不利環(huán)境的菌膜。該缺失株的構(gòu)建表明dal基因在菌株生長(zhǎng)及生物被膜形成上起重要的調(diào)控作用，但不會(huì)對(duì)菌株毒力產(chǎn)生影響。

在革蘭氏陽(yáng)性菌如鼠傷寒沙門(mén)菌、豬霍亂沙門(mén)菌中[29-30]，同樣存在類(lèi)似功能的基因asd，編碼天冬氨酸β-半乳糖脫氫酶。asd缺失菌株在無(wú)外源二氨基庚二酸存在的條件下會(huì)發(fā)生溶菌死亡，通過(guò)質(zhì)?；匮a(bǔ)asd基因并攜帶外源抗原基因而表達(dá)相應(yīng)抗原蛋白，能有效解決質(zhì)粒攜帶外源基因表達(dá)不穩(wěn)定的問(wèn)題，為沙門(mén)菌活疫苗載體的研發(fā)開(kāi)辟了新的途徑。本研究的下一步實(shí)驗(yàn)是進(jìn)一步缺失dat基因，并通過(guò)質(zhì)?；匮a(bǔ)dal基因并攜帶外源抗原基因，構(gòu)建能穩(wěn)定表達(dá)外源基因的單核細(xì)胞性李斯特菌活疫苗載體。研究通過(guò)對(duì)缺失株生長(zhǎng)曲線、qRT-PCR、生物被膜的生成量、細(xì)胞侵襲實(shí)驗(yàn)的研究，為基因dal缺失后菌株的生物學(xué)特性提供了依據(jù)，對(duì)進(jìn)一步缺失dat基因，構(gòu)建李斯特菌活疫苗載體提供了理論支持。

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Knockout of dal Gene and Its Effect on Listeria monocytogenes

ZENG Haijuan, LIU Wukang, XIE Manman, DING Chengchao, DONG Qingli, LIU Qing*
(School of Medical Instrument and Food Engineering, University of Shanghai for Science and Technology, Shanghai 200093, China)

In this study, the actA and inlB double gene deletion mutant (EGDe ΔactAΔinlB) of Listeria monocytogenes w ild-type (WT) strain EGDe was used as the parent to delete the dal gene by homologous recombination technology, and the biological characteristics of the dal-deficient mutant such as grow th capacity, virulence gene expression, cell invasion and biofilm formation were further studied. Grow th curves showed that the concentration of the new mutant strain was significantly lower than that of EGDe ΔactAΔinlB after 6 h of shaking culture at 37 ℃ (P ＜ 0.001), but there was no diff erence in the grow th rates of the parental and the mutant strains when D-alanine was added to the medium. Quantitative real-time-PCR showed that the sigB gene expression level of the mutant strain was changed most significantly (P ＜ 0.01) and down-regulated by 90% compared w ith EGDe ΔactAΔinlB. The biofi lm formation of the mutant strain increased compared w ith EGDe ΔactAΔinlB, but this diff erence did not exist when D-alanine was added to the medium for the mutant. There was no significant diff erence in Caco-2 cells invasion ability compared w ith EGDe ΔactAΔinlB. The results indicated that the dal gene played an important regulatory role in the grow th and biofi lm formation of bacteria and did not aff ect the ability of cell invasion. The construction of this deletion strain can provide a tool for further study of the function of the dal gene.

Listeria monocytogenes; gene knockout; grow th capacity; biofi lm; cell invasion

10.7506/spkx1002-6630-201722008

TS201.3

A

1002-6630（2017）22-0048-06

曾海娟, 劉武康, 謝曼曼, 等. 單核細(xì)胞性李斯特菌基因dal的敲除及其生物學(xué)特性初步分析[J]. 食品科學(xué), 2017, 38(22):

48-53.

10.7506/spkx1002-6630-201722008. http://www.spkx.net.cn

ZENG Haijuan, LIU Wukang, XIE Manman, et al. Knockout of dal gene and its effect on Listeria monocytogenes[J]. Food

Science, 2017, 38(22): 48-53. (in Chinese w ith English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201722008. http://www.spkx.net.cn

2016-12-29

國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目（31371776）

曾海娟（1990—），女，博士研究生，研究方向?yàn)槭吃葱灾虏【虏C(jī)理。E-mail：zenghaijuan12@126.com

*通信作者：劉箐（1970—），男，教授，博士，研究方向?yàn)槭吃葱灾虏【虏C(jī)理及快速檢測(cè)技術(shù)。E-mail：liuq@usst.edu.cn