張士璀, 張 欽, 蔣成硯
(中國海洋大學海洋生命學院,山東 青島 266003)
魚類養(yǎng)殖在我國乃至世界水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中都處于支柱產(chǎn)業(yè)地位,因此一直倍受重視。然而,魚類養(yǎng)殖業(yè)特別是海水魚類養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展也存在一些亟待解決的問題。隨著養(yǎng)殖規(guī)模不斷擴大,對魚苗需求量也大大增加,而與此形成鮮明反差的是魚類育苗期,胚胎和仔稚魚死亡率通常較高,已經(jīng)成為長期困擾海水魚類養(yǎng)殖業(yè)發(fā)展的一個關鍵問題。例如,即使在人工養(yǎng)殖(沒有天敵/魚類捕食)條件下,魚苗死亡率有時也高達90%以上[1],嚴重影響魚苗生產(chǎn),致使生產(chǎn)效益下降、成本增加,這已經(jīng)成為魚類苗種培育生產(chǎn)中一個亟待解決的難題[1-3]。近年來,有關于魚類母源性免疫和免疫增強劑跨代免疫功能的研究報道,為解決這一養(yǎng)殖難題提供了可能。本文對近年來有關研究進展作了簡要概述。
魚類早期胚胎和仔稚魚高死亡率,長期以來是魚類生活史研究領域中的一個中心問題。魚類的發(fā)育從受精卵開始,歷經(jīng)胚胎發(fā)育期、仔魚期、稚魚期,直至發(fā)育到幼魚期結束。在早期發(fā)育過程中,魚類的營養(yǎng)方式由內(nèi)源性營養(yǎng)向外源性營養(yǎng)轉(zhuǎn)變,同時器官和相應生理功能逐漸發(fā)育完善。在自然條件下,魚類早期發(fā)育過程中僅有不到1.0%的個體能夠存活下來[1]。自然條件下影響魚類成活率的主要因素有餌料豐富程度、天敵和水文環(huán)境優(yōu)劣等。然而,在人工養(yǎng)殖條件下,上述影響成活率因素幾乎被調(diào)控于最佳狀態(tài),水溫、光照、鹽度等理化環(huán)境適宜,有輪蟲、鹵蟲等組成的充足餌料,并且沒有捕食生物存在,但養(yǎng)殖魚類早期階段死亡率依然很高。目前,普遍認為養(yǎng)殖條件下影響魚類胚胎和仔稚魚成活率的主要因素是卵子質(zhì)量和卵子成熟度[3]。另一方面,越來越多證據(jù)表明,絕大多數(shù)魚類賴以生存、發(fā)育的水環(huán)境中存在大量各種各樣微生物,其中不乏一些致病細菌,可以在受精數(shù)小時后就黏附到并生活于卵子表面,成為魚類早期胚胎死亡重要原因之一[2-3]。例如,毛霉亮發(fā)菌(Leucothrixmucor)黏附到鱈魚卵子表面后,可以導致大量胚胎死亡;嗜冷嗜纖維菌(Cytophagapsychrophilum)可以感染虹鱒和鮭魚胚胎,導致冷水病的發(fā)生。某些病原還可以在魚類垂直傳播,影響胚胎發(fā)育。例如,傳染性造血壞死病毒(Infectious hematopoietic necrosis virus, IHNV)可以從虹鱒魚親代傳遞給子代,導致胚胎急性病并大量死亡[4]。同樣,在包括廣東省在內(nèi)的我國南方廣大地區(qū)大量養(yǎng)殖的重要魚類石斑魚中,神經(jīng)壞死病毒也可以從親代傳遞給子代,并引起魚苗發(fā)病[5]。因此,卵子質(zhì)量和疾病感染都是早期魚類死亡重要原因。需要指出的是,卵子和胚胎抗病力是卵子質(zhì)量的一個重要標志,與胚胎抵抗病原攻擊的能力直接相關。
絕大多數(shù)魚類體外受精,胚胎在體外發(fā)育,這與哺乳類在母體內(nèi)發(fā)育并得到母親很好保護完全不同。特別是魚類胚胎的免疫系統(tǒng)發(fā)育相對較晚,基本不具備或者僅有些許合成免疫相關分子的能力[6-7]。因此,魚類胚胎主要依靠從親代(母體)傳遞來的免疫相關物質(zhì)(分子),比如免疫球蛋白IgM和溶菌酶等,保護其不受病原感染[8]。
母親通過胎盤、初乳、乳汁(哺乳動物)或者卵子(卵生動物)傳遞給子代的免疫能力被稱為母源性免疫,這被認為在保護脆弱的子代免受病原攻擊中發(fā)揮關鍵作用。早在110多年前,在哺乳類和鳥類就出現(xiàn)了關于母源性免疫的描述,以后又發(fā)現(xiàn)免疫球蛋白可以由親代向子代傳遞[9]。 現(xiàn)在母源性免疫已經(jīng)在包括哺乳類、鳥類、爬行類、兩棲類和魚類在內(nèi)的脊椎動物中以及包括昆蟲、蝦和文昌魚(Branchiostomabelcher)在內(nèi)的無脊椎動物中得到證明[10-11]。
對魚類母源性免疫的研究遠比對哺乳類和鳥類母源性免疫的研究起步晚。魚類胚胎外圍包裹有受精膜,既可以起到緩沖作用保護胚胎免受機械損傷,又可以在一定程度上不讓微生物進入內(nèi)部,保護胚胎不受病原感染。但是,真正對魚類胚胎起關鍵保護作用的主要是依靠從親代傳遞給子代的免疫相關分子,比如免疫球蛋白IgM、溶菌酶和補體成分等[7]。在1980年代,在蝶魚卵子中首先發(fā)現(xiàn)有IgM存在[11-12],以后又陸續(xù)在魚類卵子中發(fā)現(xiàn)一些其他母源性免疫因子。在已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的魚類各種母源性免疫因子之中,對免疫球蛋白的研究較為集中和深入。目前,已經(jīng)在數(shù)種魚類卵子中發(fā)現(xiàn)有IgM,包括鯉魚(Cyprinusmajor)、羅非魚(Oreocnromisspp)、真鯛(Pagrosomusmajor)、鱸魚(Lateolabraxjaponicus)、虹鱒(Salmogairdneri)、鮭魚(Oncorhynchustschawytscha)、鰈(Pleuronectidae)和斑馬魚(Daniorerio)等[13-15]。然而,關于魚類卵子中IgM的功能研究僅見于Swain等、Hanif等和Wang等的報道[13,15-16],他們從不同角度分別證明魚卵中的IgM可能對正在發(fā)育的胚胎具有免疫保護作用。關于免疫球蛋白在親子之間的傳遞機制,Swain等認為和胎生脊椎動物的傳遞機制相似,也是通過受體介導的跨膜作用進入卵子中。還有一種觀點認為,魚類繁殖期血液中的免疫球蛋白含量顯著升高;由于血液中免疫球蛋白濃度高于卵泡,因此親魚循環(huán)系統(tǒng)的免疫球蛋白便可以通過血液循環(huán)而進入卵泡。進入卵子的母源性免疫球蛋白在早期發(fā)育過程中,會隨著胚胎或仔魚的體液(或血液)循環(huán)從卵黃囊進入其他各個器官,逐漸被代謝消耗并在此過程中發(fā)揮識別并結合抗原的活性作用,從而使仔魚保持較高的存活能力。
除去適應性免疫分子IgM之外,魚類的補體成分、溶菌酶、凝集素和蛋白酶抑制劑等天然免疫成分都具有母源性免疫功能[13,17-20]。例如,虹鱒的補體成分C3、C4、C5和Bf能夠傳遞給子代,鯉魚和狼魚(Anarrhichtysocellaus)的 C3也能夠傳遞給子代。我們的研究也發(fā)現(xiàn)斑馬魚的替代補體途徑關鍵因子C3和Bf可以從親代傳遞給子代,并且利用建立的體外補體活性檢測方法,證明斑馬魚卵內(nèi)補體成分具有保護早期胚胎的功能[17-18]。我們還發(fā)現(xiàn)由卵黃蛋白原(Vitellogenin)降解產(chǎn)生的卵黃蛋白-高磷蛋白(Phosvitin)和脂磷蛋白(Lipovitellin)除了可以給胚胎提供營養(yǎng)之外,也參與魚類胚胎免疫保護作用[21-23]。最近,有人報道白細胞的吞噬作用也在魚類胚胎免疫保護中發(fā)揮一定作用[24]。這些結果都說明魚類卵子中的確存在許多母源性免疫因子,它們都對早期胚胎的正常發(fā)育起到保護作用。
免疫增強劑(Immunostimulant)是指具有增強免疫功能的生物活性物質(zhì)。免疫增強劑種類很多,包括聚肌胞苷酸、左旋咪唑等化學合成物質(zhì),來源于微生物和動植物的多糖類以及人或動物免疫系統(tǒng)產(chǎn)生的激素和維生素類物質(zhì),還有一些中藥的有效成分,如,刀豆蛋白A、胎盤多糖及植物血凝素等。其中,來源廣泛(如植物、藻類、蘑菇和酵母等)的葡聚糖(β-glucan)和其他多糖等免疫增強劑,被認為是提高水產(chǎn)養(yǎng)殖魚類免疫力的有效工具(Effective tool),不但可以促進免疫相關分子合成,提高魚體免疫力,增強機體抗病能力,而且已經(jīng)在水產(chǎn)養(yǎng)殖生產(chǎn)中得到應用[25]。有證據(jù)表明,β-葡聚糖能與單核細胞、巨噬細胞、中性粒細胞和自然殺傷細胞表面特異性受體結合,從而激活這些免疫細胞釋放TNF-α、TGF-1β、IL-1β、IL-6、IL-10以及IL-12等細胞因子。在這些細胞因子的作用下,新的白細胞不斷生成,誘導機體產(chǎn)生細胞免疫和體液免疫[26-28],它們還可以促進吞噬細胞的吞噬活性和呼吸爆發(fā)活力[29-30],同時可以促進溶菌酶、補體C3、C4、Bf等免疫因子分泌量增加[29,31]。除此之外,β-葡聚糖還能提高魚體內(nèi)抗體產(chǎn)生水平,提高其抗病毒感染能力[31-32]??傊?,葡聚糖對成魚魚類的先天性免疫和特異性免疫都有促進作用。那么,β-葡聚糖是否可以促進母源性免疫因子從親代向子代轉(zhuǎn)移,從而提升魚類胚胎的免疫能力呢?這是一個既具有理論意義又具有潛在應用價值的重要問題。
新近,我們發(fā)現(xiàn)用β-葡聚糖飼喂斑馬魚雌魚,不但能夠增強免疫相關分子C3、Bf和溶菌酶在斑馬魚卵中的含量,而且來自這些卵子的胚胎具有更強的抵抗細菌感染的能力,表明卵子內(nèi)提高了的C3、Bf和溶菌酶直接參與斑馬魚胚胎發(fā)育的抑菌作用。但是,飼喂β-葡聚糖的斑馬魚與對照斑馬魚(未飼喂β-葡聚糖)比較,產(chǎn)卵量和胚胎發(fā)育孵化率均沒有差異[33-34]。這些結果說明,β-葡聚糖可以安全有效運用于魚類養(yǎng)殖,用來提高魚類胚胎的非特異性免疫功能,達到提高魚類育苗成活率的目的。目前,相關的生產(chǎn)試驗已在鲆鰈魚類上展開。
總之,隨著魚類養(yǎng)殖的不斷發(fā)展,苗種培育變得越來越重要,如何提高魚類苗種的質(zhì)量和數(shù)量對魚類養(yǎng)殖規(guī)模的擴大至關重要。除控制魚卵質(zhì)量、養(yǎng)殖環(huán)境等因素外,如何降低因疾病而造成的早期胚胎死亡率也不容忽視。葡聚糖能增強母源性免疫因子在卵子中的含量,提高胚胎免疫保護力,這給提高魚類魚苗成活率提供了一條可行途徑。
參考文獻:
[1] 李軍, 肖志忠, 肖永雙. 養(yǎng)殖魚類早期發(fā)育階段為什么死亡率高[M]. ∥吳常信. 10000個科學難題農(nóng)業(yè)科學卷. 北京: 科學出版社,2011, 760-763.
Li J, Xiao Z Z, Xiao Y S. Why high mortality rate occurs in early developmental stages of cultured fish[M]. ∥Wu C X. 10000 Selected Problems in Science, Agriculture Sciences. Beijing: Science Press, 2011: 760-763.
[2] Brock J A, Bullis R. Disease prevention and control for gametes and embryos of fish and marine shrimp[J]. Aquaculture, 2001, 197(1-4): 137-159.
[3] Hansen G H, Olafsen J A. Bacterial interactions in early life stages of marine cold water fish[J]. Microb Ecol, 1999, 38(1): 1-26.
[4] Mulcahy D, Pascho R J. Adsorption of fish sperm of vertically transmitted fish viruses[J]. Science, 1984, 225(4659): 33-335.
[5] 林克冰, 方瓊珊. 石斑魚苗種期常見病害及其防治[J]. 福建水產(chǎn), 2006, 4: 52-54.
Lin K B, Fang Q S. Prevention and treatment for common diseases in grouper larvae [J]. Journal of Fujian Fisheries, 2006, 4: 42-54.
[6] Magnadottir B, Lange S, Gudmundsottir S, et al. Ontogeny of humoral immune parameters in fish[J]. Fish Shellfish Immunol, 2005, 19(5): 429-439.
[7] 張士璀, 李欣, 汲廣東. 魚類免疫系統(tǒng)的早期發(fā)生[J]. 中國海洋大學學報, 2007, 37(4): 557-562.
Zhang S C, Li X, Ji G D. Ontogeny of fish immune system [J]. Periodical of Ocean University of China, 2007, 37(4): 557-562.
[8] 張士璀. 魚類免疫因子的親子傳遞及其對子代保護作用[M]. ∥吳常信. 10000個科學難題農(nóng)業(yè)科學卷. 北京: 科學出版社,2011, 764-766.
Zhang S C. Transfer of Maternal immune-relevant factors from mother to offspring and their protective roles in fish [M]. ∥ Wu C X. 10000 Selected Problems in Science, Agriculture Sciences. Beijing: Science Press, 2011: 764-766.
[9] Erhlich P. Ueber immunit?t durch vererbung und s?ugung[J]. Z Hyg lnfectkt Krankn, 1892, 12(1): 183-203.
[10] Hauton C, Smith V J. Adaptive immunity in invertebrates: A strawhouse without a mechanistic foundation[J]. Bioessays, 2007, 29(11): 1138-1146.
[11] Zhang S C, Wang Z P, Wang H M. Maternal immunity in fish[J]. Dev Comp Immunol, 2013, 39(1-2): 72-78.
[12] Loon J J A V, Oosterom R V, Muiswinkel W B V. Development of the immune system in carp (Cyprinuscarpio)[J]. Aspects of Developmental and Comparative Immunology, 1981(1): 469-470.
[13] Swain P, Dash S, Bal J, et al. Passive transfer of maternal antibodies and their existence in eggs, larvae and fry of Indian major carpLabeorohita(Ham)[J]. Fish Shellfish Immunol, 2006, 20(4): 519-527.
[14] Kanlis G, Suzuki Y, Tauchi M, et al. Immunoglobulin in oocytes, fertilized eggs, and yolk sac larvae of red sea bream[J]. Fish Sci, 2008, 61: 787-790.
[15] Wang H, Ji D, Shao J, et al. Maternal transfer and protective role of antibodies in zebrafishDaniorerio[J]. Mol Immunol, 2012, 51(3-4): 332-336.
[16] Hanif A, Bakopoulos V, Dimitriadis G J. Maternal transfer of humoral specific and non-specific immune parameters to sea bream (Sparusaurata)larvae[J]. Fish Shellfish Immunol, 2004, 17(5): 411-435.
[17] Wang Z P, Zhang S C, Wang G F, et al. Complement activity in the egg cytosol of zebrafishDaniorerio: Evidence for the defense role of maternal complement components[J]. PLoS ONE, 2008, 3(1): e1463. doi: 10.1371/journal.pone.0001463.
[18] Wang Z P, Zhang S C, Tong Z, et al. Maternal transfer and protective role of the alternative complement components in zebrafishDaniorerio[J]. PLoS ONE, 2009, 4(2): e4498. doi: 10.1371/journal.pone.00044982009.
[19] L?voll M, Kilvik T, Boshra H, et al. Maternal transfer of complement components C3-1, C3-3, C3-4, C4, C5, C7, Bf, and Df to offspring in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss)[J]. Immunogenetics, 2006, 58(2): 168-179.
[20] Ellingsen T, Strand C, Monsen E, et al. The ontogeny of complement component C3 in the spotted wolffish (Anarhichas minor Olafsen)[J]. Fish Shellfish Immunol, 2005, 18(5): 351-358.
[21] Wang S, Wang Y, Ma J, et al. Phosvitin plays a critical role in the immunity of zebrafish embryos via acting as a pattern recognition receptor and an antimicrobial effector[J]. J Biol Chem, 2011, 286(25): 22653-22664.
[22] Zhang J, Zhang S. Lipovitellin is a non-self recognition receptor with opsonic activity[J]. Marine Biotechnology, 2011, 13(3): 441-450.
[23] Sun C, Hu L, Liu S, et al. Antiviral activity of phosvitin from zebrafishDaniorerio[J]. Dev Comp Immunol, 2013, 40(1): 28-34.
[24] Rounioja S, Saralahti A, Ranatala L, et al. Defense of zebrafish embryos againstStreptoococcuspneumoniaeinfection is dependent on the phagocytic activity of leukocytes[J]. Dev Comp Immunol, 2012, 36: 342-348.
[25] Meena D K, Das P, Kumar S, et al. β-glucan: An ideal immunostimulant in aquaculture (a review)[J]. Fish Physiol Biochem, 2013, 39(3): 431-457.
[26] Chansue N, Endo M, Kono T, et al. The stimulation of cytokine-like proteins in tilapia (Oreochromisniloticus) orally treated with β-1, 3-glucan[J]. Asian Fish Sci, 2000, 13: 271-278.
[27] Secombes C J, Hardie L J, Daniels G. Cytokines in fish: An update[J]. Fish Shellfish Immunol, 1996, 6: 291-304.
[28] Hardie L J, Chappell L H, Secombes C J. Human tumor necrosis factor a influences rainbow troutOncorhynchusmykissleucocyte responses[J]. Vet Immunol Immunopathol, 1994, 40(1): 73-84.
[29] Ai Q, Mai K, Zhang L, et al. Effects of dietary β-1, 3-glucan on innate immune response of large yellow croaker,Pseudosciaenacrocea[J]. Fish Shellfish Immunol, 2007, 22(4): 394-402.
[30] Kumari J, Sahoo P. Non-specific immune response of healthy and immunocompromised asian catfish (Clariasbatrachus) to several immunostimulants[J]. Aquaculture, 2006, 255(1): 133-141.
[31] Misra C K, Das B K, Mukherjee S C, et al. Effect of long term administration of dietary β-glucan on immunity, growth and survival of labeo rohita fingerlings[J]. Aquaculture, 2006, 255(1): 82-94.
[32] Sealey W, Barrows F, Hang A, et al. Evaluation of the ability of barley genotypes containing different amounts of β-glucan to alter growth and disease resistance of rainbow troutOncorhynchusmykiss[J]. Animal Feed Science and Technology,2008, 141(1): 115-128.
[33] Jiang C Y, Wang P, Li M Y, et al. Dietary β-glucan enhances the contents of complement component 3 and factor B in eggs of zebrafish[J]. Dev Comp Immunol, 2016, 65: 107-113.
[34] Wang P, Jiang C Y, Liu S S, et al. Trans-generational enhancement of C-type lysozyme level in eggs of zebrafish by dietary β-glucan[J]. Dev Comp Immunol, 2017, 74: 25-31.