宋慶凱，李曉飛，苗雨潤(rùn)，張志成，王 璇，袁 圓，代解杰，孫曉梅

(中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院/北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)生物學(xué)研究所樹(shù)鼩種質(zhì)資源中心，云南省重大傳染病疫苗研發(fā)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)生物學(xué)研究所實(shí)驗(yàn)樹(shù)鼩標(biāo)準(zhǔn)化與應(yīng)用研究省創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)，昆明 650118)

樹(shù)鼩(Tupaiabelangeri)作為與靈長(zhǎng)類動(dòng)物親緣關(guān)系最近的新型模式動(dòng)物，在人類疾病模型尤其是感染性疾病模型研究中發(fā)揮著不可或缺的作用，已逐步成為生物醫(yī)學(xué)研究的熱點(diǎn)[1]。前期開(kāi)展的相關(guān)研究表明，野生來(lái)源樹(shù)鼩中腺病毒攜帶率較高，并有疑似病例發(fā)生，被列為樹(shù)鼩實(shí)驗(yàn)動(dòng)物微生物質(zhì)量控制的檢測(cè)指標(biāo)之一。因此，建立一種高效、快速，可反應(yīng)個(gè)體病毒載量的實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法勢(shì)在必行。

樹(shù)鼩腺病毒(tree shrew adenovirus，TAV)屬于腺病毒科，哺乳動(dòng)物腺病毒屬。迄今，已發(fā)現(xiàn)有100多種腺病毒能感染人、哺乳動(dòng)物和禽類。腺病毒感染會(huì)引起急性上呼吸道感染、急性眼結(jié)膜炎、急性出血性膀胱炎、腹瀉等疾病[2]。目前，在樹(shù)鼩腺病毒(TAV)檢測(cè)方面，已有普通PCR方法報(bào)道[3]，但此類方法只可用于TAV定性檢測(cè)且靈敏度低。本研究根據(jù)TAV的3’保守區(qū)域設(shè)計(jì)特異性引物，通用性好，穩(wěn)定性高，適用于不同型別病毒株檢測(cè)，建立了操作簡(jiǎn)便、敏感性高、特異性強(qiáng)、重復(fù)性好、可實(shí)時(shí)定量分析TAV感染程度的TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法[4-8]，以期為TAV的分子流行病學(xué)調(diào)查和早期感染研究奠定基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

野生來(lái)源成年樹(shù)鼩，性別不限，在普通級(jí)環(huán)境設(shè)施中僅飼養(yǎng)了3個(gè)月，體重120～150 g。飼養(yǎng)環(huán)境：溫度18℃～28℃，相對(duì)濕度30%～60%，噪音≤ 60 dB，光照強(qiáng)度100～150 lx。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物來(lái)源于醫(yī)學(xué)生物學(xué)研究所樹(shù)鼩種質(zhì)資源中心[SCXK (滇) K2013-0001]，實(shí)驗(yàn)操作在醫(yī)學(xué)生物學(xué)研究所樹(shù)鼩種質(zhì)資源中心實(shí)驗(yàn)設(shè)施進(jìn)行[SYXK (滇) K2013-0001]。

1.2 主要試劑與儀器

Viral DNA Kit(購(gòu)自O(shè)mega)，iTaqTMUniversal Probes One-Step Kit(購(gòu)自Bio-Rad)。CFX96TM熒光定量PCR儀(Bio-Rad)，核酸蛋白檢測(cè)儀，Vortex QL-902，制冷機(jī)(雪科)，臺(tái)式微量高速離心機(jī)，恒溫水浴鍋，離心管。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 樣本來(lái)源及DNA提取

樹(shù)鼩腺病毒、樹(shù)鼩呼腸孤病毒、EV71、人單純皰疹病毒1型來(lái)自本實(shí)驗(yàn)室保存。使用Viral DNA Kit提取病毒DNA。詳細(xì)操作根據(jù)產(chǎn)品說(shuō)明書進(jìn)行。

1.3.2 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR的建立

(1)引物設(shè)計(jì)合成：從NCBI中檢索獲得TAV的全基因組，利用DNA Star軟件設(shè)計(jì)擴(kuò)增病毒株3’保守區(qū)域(22 989 bp～23 476 bp)特異性引物，引物序列為：TAVF：5’-AAAGAATGCCCACCTCCCAT-3’和TAVR：5’-CAGTGGCAGGCCATTAAGC-3’，擴(kuò)增的目的片段為122 bp。根據(jù)測(cè)序所得目的基因序列設(shè)計(jì)熒光探針引物：5’-Fam-CTCGCCGCCGC CGGTTTCAC-Tamra-3’。委托昆明碩擎生物科技有限公司合成。

(2)陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品的構(gòu)建：以本實(shí)驗(yàn)室保存的陽(yáng)性TAV DNA作為模板，進(jìn)行目的基因片段擴(kuò)增。反應(yīng)體系：金牌Mix(green)20 μL，10 μM TAVF 1 μL，10 μM TAVR 1 μL，DNA模板3 μL，終體積25 μL。試劑盒參考退火溫度為55℃～60℃，優(yōu)化后的反應(yīng)條件：98℃ 2 min；98℃ 10 s，58℃ 15 s，72℃ 15 s，共35個(gè)循環(huán)；72℃ 5 min。擴(kuò)增產(chǎn)物用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定；膠回收純化；將目的基因片段與PUC57載體進(jìn)行連接；連接后產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞；測(cè)序驗(yàn)證。采用紫外分光光度計(jì)測(cè)定A260/280數(shù)值，計(jì)算質(zhì)粒濃度，將其換算為質(zhì)?？截悢?shù)[每微升拷貝數(shù)=質(zhì)粒濃度×(6.02×1023)×(A260/280×10-9)/(DNA堿基數(shù)×660)]，式中，A260/280單位為ng/μL。

(3)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線：將(2)中的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品10倍倍比稀釋至每微升101拷貝。用梯度稀釋的標(biāo)準(zhǔn)品作為模板，進(jìn)行擴(kuò)增。以每微升108～101拷貝共8個(gè)梯度標(biāo)準(zhǔn)品建立標(biāo)準(zhǔn)曲線，設(shè)置復(fù)孔及陰性對(duì)照。擴(kuò)增體系(20 μL)：2×iTaqTMUniversal Probes One-Step Reaction Mix 10 μL，10 μM TAVF 1 μL，10 μM TAVR 1 μL，10 μM探針引物2 μL，標(biāo)準(zhǔn)DNA模板3 μL，Easy Dilution 3 μL。優(yōu)化后的擴(kuò)增條件為：95℃ 2 min，95℃ 10 s，58℃ 30 s，共40個(gè)循環(huán)。通過(guò)軟件自動(dòng)繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線。

(4)靈敏性檢測(cè)：以(3)中梯度稀釋的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板，進(jìn)行TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng)，檢測(cè)試驗(yàn)的靈敏性。

(5)重復(fù)性及特異性檢測(cè)：用梯度稀釋的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品作為模板，每個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品做3個(gè)平行管，通過(guò)計(jì)算Ct均值、變異系數(shù)(即相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差：指標(biāo)準(zhǔn)差除以平均值，以百分?jǐn)?shù)表示)分析試驗(yàn)的重復(fù)性。以樹(shù)鼩呼腸孤病毒、EV71、人單純皰疹病毒1型、TAV作為樣品，測(cè)定TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR特異性。

1.3.3 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的初步應(yīng)用

采取48份人工飼養(yǎng)3個(gè)月野生來(lái)源樹(shù)鼩糞便，并用Viral DNA Kit提取DNA作為模板，進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè)。

2 結(jié)果

2.1 目的片段的鑒定

重組質(zhì)粒用PvuII酶切，結(jié)果見(jiàn)圖1A，酶切后獲得兩個(gè)片段，長(zhǎng)度相加即為質(zhì)粒及插入片段大小。對(duì)重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行PCR鑒定，擴(kuò)增獲得一條約122 bp的特異片段，結(jié)果見(jiàn)圖1B，與預(yù)期擴(kuò)增結(jié)果相符。對(duì)目的基因片段進(jìn)行測(cè)序分析，NCBI比對(duì)結(jié)果同TAV 3’保守區(qū)域(22 989 bp～23 476 bp)序列完全一致，表明目的基因片段已成功接入載體中。

注：從左到右標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)依次為：每微升3.7×101，3.7×102，3.7×103，3.7×104，3.7×105，3.7×106，3.7×107，3.7×108拷貝。圖中“○”代表標(biāo)準(zhǔn)品。圖2 不同稀釋度陽(yáng)性質(zhì)粒擴(kuò)增形成的標(biāo)準(zhǔn)曲線Note. The number of copies of the standard from left to right is: 3.7×101, 3.7×102, 3.7×103, 3.7×104, 3.7×105, 3.7×106, 3.7×107, 3.7×108 copies per microliter, respectively. “○”represents standard values.Fig.2 Standard curve of plasmid DNA in different dilutions

注：A：M：1 kb DNA marker，1：酶切后的PUC57重組質(zhì)粒；B：M：500 bp DNA marker，1：重組質(zhì)粒PCR產(chǎn)物。圖1 目的片段的擴(kuò)增Note. A: M: 1 kb DNA marker; 1: PUC57 recombinant plasmid after digestion. B: M: 500 bp DNA marker; 1: PCR product of recombinant plasmid.Fig.1 Amplification of target fragment

2.2 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線

重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)核酸分析儀檢測(cè)結(jié)果：A260/280值為1.93，濃度為50 ng/μL，即拷貝數(shù)為每微升3.7×109拷貝。以10倍梯度稀釋的重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板進(jìn)行擴(kuò)增，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2)，相關(guān)系數(shù)R2為0.998，擴(kuò)增效率為95.7%，以起始模板量的對(duì)數(shù)值為X軸，循環(huán)數(shù)(Ct值)為Y軸做回歸曲線，即標(biāo)準(zhǔn)曲線(Y=-3.430lgX+ 37.951)，具有良好的線性關(guān)系。

2.3 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR靈敏性

靈敏性檢測(cè)試驗(yàn)擴(kuò)增結(jié)果如圖3，1～8為不同稀釋濃度的陽(yáng)性質(zhì)粒，當(dāng)陽(yáng)性質(zhì)?？截悢?shù)為每微升3.7拷貝，才出現(xiàn)特異性擴(kuò)增曲線且陰性對(duì)照無(wú)特異性擴(kuò)增，表明該方法的最低檢測(cè)靈敏度可達(dá)每微升3.7拷貝。

2.4 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR重復(fù)性

分別以每微升3.7×105、3.7×106和3.7×107拷貝的重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板進(jìn)行擴(kuò)增，每份標(biāo)準(zhǔn)品設(shè)置3個(gè)平行管，通過(guò)計(jì)算Ct值的變異系數(shù)對(duì)試驗(yàn)重復(fù)性進(jìn)行評(píng)價(jià)，結(jié)果詳見(jiàn)表1，變異系數(shù)不足0.5%。

2.5 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR特異性

特異性試驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果(圖4)顯示，在40個(gè)反應(yīng)循環(huán)內(nèi)，以每微升3.7×106拷貝的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品和TAV為模板的PCR反應(yīng)有特異性擴(kuò)增曲線。以樹(shù)鼩呼腸孤病毒、EV71、人單純皰疹病毒1型為模板的PCR反應(yīng)均無(wú)擴(kuò)增曲線。表明建立的基于TaqMan探針實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法具有高度特異性。

注：1～8：每微升3.7×107，3.7×106，3.7×105，3.7×104，3.7×103，3.7×102，3.7×101，3.7×100拷貝；9：陰性對(duì)照。圖3 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR靈敏性檢測(cè)結(jié)果Note. 1-8: 3.7×107, 3.7×106, 3.7×105, 3.7×104, 3.7×103, 3.7×102, 3.7×101, 3.7×100 copies per μL, respectively; 9: Negative control.Fig.3 Sensitivity of the TaqMan real-time fluorescence quantitative PCR

每微升拷貝數(shù)CopiespermicroliterCt值 Ctvalue123 平均Ct值A(chǔ)verageofCtvalue變異系數(shù)(%)Coefficientofvariation37×107131813191321131901137×106165316571659165601837×1052001200920112007026

注：圖中“其他病毒”指樹(shù)鼩呼腸孤病毒、EV71、人單純皰疹病毒1型。圖4 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR特異性檢測(cè)結(jié)果Note. “Other viruses” in the figure are tree shrew reovirus, EV71, human herpes simplex virus type 1.Fig.4 Specific test results of the TaqMan real-time fluorescence quantitative PCR

2.6 TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR初步應(yīng)用

如圖5所示，在反應(yīng)的35個(gè)循環(huán)內(nèi)，48份樣品中有19份陽(yáng)性，陽(yáng)性率為39.58%，最低檢出濃度為每微升3.92拷貝。傳統(tǒng)方法檢測(cè)陽(yáng)性率僅為25%(12/48)。因此，建立的TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法更加靈敏且高效，可更好地運(yùn)用于樹(shù)鼩腺病毒的檢測(cè)，為其防控提供更精準(zhǔn)的檢測(cè)方法。

圖5 初步應(yīng)用檢測(cè)結(jié)果Fig.5 Preliminary application of the TaqMan real-time fluorescence quantitative PCR

3 討論

樹(shù)鼩腺病毒是無(wú)囊膜線性單分子雙股DNA病毒，歸類于腺病毒科哺乳動(dòng)物腺病毒屬。在前期飼養(yǎng)觀察中，發(fā)現(xiàn)該病毒可普遍感染樹(shù)鼩并引起急性上呼吸道感染、急性眼結(jié)膜炎、急性出血性膀胱炎、腹瀉等多種疾病。Darai等早在1980年報(bào)道，在38份樹(shù)鼩腎組織培養(yǎng)物中分離獲得1株TAV[9-10]，病毒可凝集大鼠及人“O”型紅細(xì)胞。陳元鼎等[11]1987年報(bào)道，在90份成年云南源樹(shù)鼩大便中檢測(cè)到12份腺病毒陽(yáng)性，陽(yáng)性率為3%。吳小閑等[12]1990年報(bào)道，從云南野生樹(shù)鼩咽拭子、腎細(xì)胞培養(yǎng)物和糞便中分離到10株TAV，并鑒定為2個(gè)血清型(TAV-1和TAV-2)。王淑菁等[3]建立了樹(shù)鼩腺病毒PCR檢測(cè)方法，檢測(cè)了56份剛從野外捕獲來(lái)源的樹(shù)鼩糞便DNA，有24份陽(yáng)性，檢出的陽(yáng)性率達(dá)到42.85%，結(jié)果顯示野生樹(shù)鼩具有較高的攜帶率。

迄今，在腺病毒檢測(cè)方面已有多種方法。其中，間接免疫熒光檢測(cè)方法適用于細(xì)胞培養(yǎng)物中TAV的檢測(cè)；ELISA檢測(cè)方法主要適用于對(duì)TAV抗體的篩查，其缺點(diǎn)是檢測(cè)結(jié)果假陽(yáng)性偏高；PCR檢測(cè)法具有快速方便、靈敏性好、特異性強(qiáng)等特點(diǎn)，其中實(shí)時(shí)熒光定量PCR[13-14]方法與傳統(tǒng)PCR方法比較又具有更大的優(yōu)勢(shì)，最大的優(yōu)勢(shì)是可實(shí)時(shí)檢測(cè)反應(yīng)早期到終點(diǎn)過(guò)程中PCR的擴(kuò)增情況，此外還具有靈敏性好、所需樣品少、特異性強(qiáng)、可精確進(jìn)行定量分析等特點(diǎn)，被認(rèn)為是病原學(xué)檢測(cè)的金標(biāo)準(zhǔn)。

本研究根據(jù)TAV的3’保守區(qū)域設(shè)計(jì)特異性擴(kuò)增引物[15-17]，采用傳統(tǒng)PCR方法擴(kuò)增目的片段并膠回收純化連接載體，構(gòu)建出重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品，并探索優(yōu)化反應(yīng)條件及擴(kuò)增體系，成功建立了高效、特異、靈敏性強(qiáng)的TAV TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法。重復(fù)性檢測(cè)試驗(yàn)中以3個(gè)梯度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行3次重復(fù)，變異系數(shù)檢測(cè)結(jié)果均小于0.05%，即試驗(yàn)重復(fù)性好。采用此方法檢測(cè)樹(shù)鼩源呼腸孤病毒以及其他引起腹瀉、急性眼結(jié)膜炎等疾病的病毒均無(wú)交叉反應(yīng)，表明建立的檢測(cè)方法具有良好的特異性。研究中應(yīng)用此方法檢測(cè)人工飼養(yǎng)3個(gè)月的野生來(lái)源樹(shù)鼩TAV攜帶情況，檢測(cè)結(jié)果顯示，此方法可定性及定量分析不同個(gè)體病毒載量情況，靈敏度高，在35個(gè)循環(huán)內(nèi)最低檢測(cè)限度達(dá)每微升3.92拷貝。陽(yáng)性檢出率為39.58%，略低于王淑菁等[3]報(bào)道的野生源樹(shù)鼩病毒檢測(cè)結(jié)果，原因可能與樣品來(lái)源有關(guān)。

本研究建立的基于TAV的TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法具有高效、靈敏度高、特異性和重復(fù)性好的優(yōu)點(diǎn)，既可定性分析又可定量分析[18]。該檢測(cè)方法的構(gòu)建為TAV的致病[19]、溶瘤[20]機(jī)理研究提供了詳細(xì)可靠的技術(shù)支持，同時(shí)也對(duì)TAV防控具有重要作用。

[1] 向征, 楊照青. 樹(shù)鼩寄生蟲研究進(jìn)展 [J]. 中國(guó)人獸共患病學(xué)報(bào), 2014, 30(9): 955-959.

[2] 殷震, 劉景華. 動(dòng)物病毒學(xué) [M]. 北京: 科學(xué)出版社, 1997: 1104-1129.

[3] 王淑菁, 付瑞, 李曉波, 等. 樹(shù)鼩腺病毒(TAV)PCR方法的建立及初步應(yīng)用 [J]. 中國(guó)比較醫(yī)學(xué)雜志, 2014, 24(12): 42-46.

[4] Jothikumar N, Cromeans TL, Hill VR, et al. Quantitative real-time PCR assays for detection of human adenoviruses and identification of serotypes 40 and 41 [J]. Appl Environ Microbiol, 2005, 71(6): 3131-3136.

[5] 萬(wàn)春和, 陳翠騰, 傅秋玲, 等. 禽坦布蘇病毒TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立 [J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2016, 44(8): 49-54.

[6] 邱麗葉. 禽腺病毒熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立與初步應(yīng)用 [D]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué), 2016.

[7] 曹偉偉, 郭抗抗, 許信剛, 等. 豬圓環(huán)病毒II型TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立與應(yīng)用 [J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2013, 41(1): 13-18.

[8] 熊建英. 熒光定量PCR快速檢測(cè)登革1型病毒 [D]. 南方醫(yī)科大學(xué), 2012.

[9] Darai G, Matz B, Flügel RM, et al. An adenovirus fromTupaia(tree shrew): growth of the virus, characterization of viral DNA, and transforming ability [J]. Virology, 1980, 104(1): 122-138.

[10] Sch?ndorf E, Bahr U, Handermann M, et al. Characterization of the complete genome of theTupaia(tree shrew) adenovirus [J]. J Virol, 2003, 77(7): 4345-4356.

[11] 陳元鼎, 戴國(guó)珍, 李軍, 等. 樹(shù)鼩大便中腺病毒的實(shí)驗(yàn)研究 [J]. 中國(guó)人獸共患病學(xué)報(bào), 1987, 3(3): 2-4.

[12] 吳小閑, 唐恩華, 張新生, 等. 樹(shù)鼩腺病毒(I和II型)的生物學(xué)性狀、抗原關(guān)系和血清抗體的研究 [J]. 中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院學(xué)報(bào), 1990, 12(2): 153-156, 15.

[13] 宋爽, 趙柏林, 曲萍, 等. 牛病毒性腹瀉病毒、牛傳染性支氣管炎病毒和口蹄疫病毒多重TaqMan熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立 [J]. 中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2017, 39(2): 133-136.

[14] Tam S, Clavijo A, Engelhard EK, et al. Fluorescence-based multiplex real-time RT-PCR arrays for the detection and serotype determination of foot-and-mouth disease virus [J]. J Virol Methods, 2009, 161(2): 183-191.

[15] 李曉飛, 殷安國(guó), 張媛, 等. 樹(shù)鼩呼腸孤病毒RT-nPCR檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用 [J]. 中國(guó)比較醫(yī)學(xué)雜志, 2014, 24(6): 63-68.

[16] 王楷宬, 邱源, 紀(jì)海旺, 等. 通用引物擴(kuò)增甲型流感病毒基因組及其高通量測(cè)序 [J]. 中國(guó)動(dòng)物檢疫, 2017, 34(1): 90-93.

[17] 任少堂, 秦一中, 汪偉業(yè), 等. 用高度保守區(qū)引物和套式PCR擴(kuò)增丙型肝炎病毒 [J]. 第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 1993, 14(5): 424-427.

[18] 胡丹, 郝麗娜, 李丙軍, 等. 漢坦病毒實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立 [J]. 中國(guó)病原生物學(xué)雜志, 2014, 27(4): 347-350.

[19] 劉娟. 人呼吸道腺病毒55型的基因組學(xué)與病原學(xué)特征研究 [D]. 中國(guó)人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院, 2014.

[20] Kirn D. Replication-selective oncolytic adenoviruses: virotherapy aimed at genetic targets in cancer [J]. Oncogene, 2000, 19(56): 6660-6669.