王金玉,姜曉文,王 娜,王婕然,于苗苗,鐘 秋,于文會,2*
(1. 東北農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院,哈爾濱 150030;2. 黑龍江省教育廳動物普通疾病防治重點實驗室,哈爾濱 150000)
豬鏈球菌是一種人畜共患菌,豬鏈球菌按莢膜抗原被分為33種血清型,其中豬鏈球菌2型是最常見、危害最大的,可以通過接觸直接傳染給人[1]。豬鏈球菌很容易在自然環(huán)境或動物體內(nèi)形成生物膜,使豬鏈球菌難以去除,增加了感染的危險性[2]。細菌生物被膜(bacterial biofilm,BF),是細菌或真菌特有的生命現(xiàn)象,主要是為了適應自然環(huán)境,有利于生存。當細菌在活組織或非活性組織表面吸附時,它們能夠分泌多種多糖復合物,如脂蛋白、纖維蛋白和多糖基質(zhì),它們通過黏性物質(zhì)將細菌結合在一起,互相包裹纏繞形成的一種膜樣物質(zhì)[3-7]。已經(jīng)形成生物被膜的細菌比游離的細菌對抗生素的耐受力會增加到近1 000倍[8]。治療豬鏈球菌病的一個重要手段就是干預豬鏈球菌生物被膜的形成[9]。研究發(fā)現(xiàn)豬鏈球菌中含有多種毒力基因,例如豬溶血素(SLY)、溶菌酶釋放蛋白(MRP)、莢膜多糖(CPS)、胞外因子(EF)、谷氨酸脫氫酶(GDH)等,均與致病性相關[10-17]。
大多數(shù)現(xiàn)有的抗菌劑是天然化合物,如青霉素、鏈霉素和β-內(nèi)酰胺類的提取物。由于耐藥細菌的大量出現(xiàn),新的抗菌藥在市場上有很大的需求[18]。穿心蓮內(nèi)酯(Andrographolide,AG) 被譽為天然抗生素藥物,是一種二萜內(nèi)酯類化合物,爵床科植物穿心蓮Andrographispaniculata(Burm. f) Ness的全草或葉中的一種活性物質(zhì),是穿心蓮的有效成分之一,AG 和它的衍生物具有抗炎、抗感染、抗腫瘤、免疫調(diào)節(jié)等廣泛的藥理作用,特別是在一些抗感染作用更加明顯,比如對細菌、真菌、病毒、原蟲等[19]。通過構建豬鏈球菌體外生物被膜模型,采用中藥單體穿心蓮內(nèi)酯對其進行干預,為豬鏈球菌病的細菌耐藥性尋找替代療法提供參考。
豬鏈球菌2型分離株[20],由中國農(nóng)業(yè)科學院哈爾濱獸醫(yī)研究所惠贈,具有良好的生物被膜形成能力,菌種保存于含有20%甘油的THB 培養(yǎng)基中,-80 ℃保存。
THB(Todd-Hewitt broth)培養(yǎng)基購于高科園海博生物技術有限公司;犢牛血清購于四季青有限公司;結晶紫染料、瓊脂粉末、腦心浸液粉末均購于南京化學試劑有限公司;24孔及96孔細胞培養(yǎng)板購于美國Costar公司;穿心蓮內(nèi)酯標準品購于中國食品藥品檢定研究院。
向96孔細胞培養(yǎng)板依次加入用THB培養(yǎng)基稀釋的菌液,第1孔加入160 μL THB稀釋的菌液外,2~12孔每孔加入100 μL THB稀釋的菌液。向第1孔加入40 μL 5 mg·mL-1的穿心蓮內(nèi)酯溶液,混勻后采取二倍稀釋法逐一稀釋每孔中的藥物濃度至第11孔,并從第11孔吸取100 μL 棄去,第12孔為不加穿心蓮內(nèi)酯的陰性對照組。使每孔最終菌液濃度約為1×106cfu·mL-1。按上述方法做3組重復。于37 ℃培養(yǎng)24 h,以肉眼觀察,無細菌生長為MIC[21]。從確定為MIC的孔到最后一孔中分別吸取50 μL的液體涂布法接種于THB固體培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)24 h。接種平板中肉眼未見細菌生長的最低藥物濃度為MBC[22]。
將活化好的豬鏈球菌用THB液體培養(yǎng)基稀釋到1×108cfu·mL-1,每個試管中加入一定量的THB培養(yǎng)基和穿心蓮內(nèi)酯,使菌液濃度為1×106cfu·mL-1,穿心蓮內(nèi)酯的濃度分別是1/2MIC、1/4MIC、1/8MIC、陰性對照組為不加藥物組,每個試管內(nèi)總體積為5 mL,每組3個重復。37 ℃恒溫培養(yǎng)12 h,每小時取200 μL在600 nm處測定OD值,繪制生長曲線[23]。
步驟:①將干凈的蓋玻片分割成合適的大小,放入無菌的錐形瓶中,分別放入10 mL含有1/2MIC、1/4MIC和1/8MIC穿心蓮內(nèi)酯的培養(yǎng)基中,然后每孔中加入0.1 mL稀釋好的菌液,以不加穿心蓮內(nèi)酯的孔為空白對照組,37 ℃培養(yǎng)48 h;②取出培養(yǎng) 48 h生物膜模型,滅菌 PBS 輕輕沖洗兩次,去除浮游菌;錐形瓶中的菌液為懸浮菌組,兩組分別進行如下操作;③將生物膜模型置于盛有5 mL無菌THB 培養(yǎng)液的試管中,高速渦旋振蕩2 min,將細菌從玻璃片上振蕩下來形成懸液;④采用梯度稀釋法,分別稀釋至10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7;⑤取0.1 mL 菌液到相應編號的THB平板中,垂直自流后置于37 ℃恒溫孵育箱培養(yǎng)24 h;⑥到達規(guī)定時間后選取菌落在30~300之間的平板計數(shù)。菌落數(shù)與對應稀釋倍數(shù)乘積即為原液細菌量,并換算成常用對數(shù)(gcfu·cm-2)。
取無菌的96孔板,同菌液濃度的豬鏈球菌放入含有1/2MIC、1/4MIC和1/8MIC的96孔板中,以不加穿心蓮內(nèi)酯的孔為陰性對照組,氨芐西林抑制組為陽性對照,每組3個重復,培養(yǎng)72 h。然后將上層懸浮的豬鏈球菌吸走,用等量的無菌PBS清洗三次。再向每孔加入99%甲醇200 μL,固定15 min,晾干。每孔加入2%結晶紫200 μL染色5 min后,將染色液用無菌PBS沖洗掉。晾干,將結合染料的貼壁細菌及多糖等用33%冰醋酸200 μL溶解。用酶標儀(595 nm)測量OD值[24]。
取處在對數(shù)生長期的豬鏈球菌100 μL,分別放入5 mL含有1/2MIC、1/4MIC和1/8MIC穿心蓮內(nèi)酯的培養(yǎng)基中,在37 ℃的環(huán)境下進一步孵化72 h。陰性對照組培養(yǎng)基中不加穿心蓮內(nèi)酯。提取豬鏈球菌生物被膜的mRNA后用試劑盒進行cDNA的合成[25]。RT-PCR用來測量gdh、mrp、gapdh、sly、fbps、ef、cps2J和luxSmRNA 的轉(zhuǎn)錄量,16S rRNA為內(nèi)參基因。引物由上海生工設計并合成(表1)。準備20 μL PCR 預混液,包括12.5 μL 的IQ SYBR Green Supermix,1 μL的基因特異性引物(上下游引物總和)和6.5 μL的Rnase- and DNase-free water;最后加入5 μL 的cDNA。RT-PCR的反應條件:94 ℃ 10 min,以下進行35個周期:94 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,72 ℃ 20 s;72 ℃ 10 min[26]。
表1用于定量分析的引物
Table1Primersforquantitativeanalysis
基因Gene序列(5'-3')Sequence(5'-3')正向引物Forward反向引物ReversegdhACCTCTTGGCTTTGGTGGTTGAAGGATTTACCGTTTGCTGmrpTGGCACAGTTATCAAGGAACCTACCGTCAACACGAACCAATgapdhGCTGAAGAAGTAAACGCTGCTGTCGCATCAAACAATGAACCslyAGTCAGTTTGGCACTCGTAGGTTGTGGCTCGTAAGTCAAGCfbpsGCTCCTGACCACCTATCTGCTCAAAGCCACATCCAACTCAefGAACCCAAGGAACCAATCGAACATTCTGACCACTCGCATCcps2JTTGGAATACGCAGAGCAAGATAACCCTCCCGACAAATCACluxSCGAGTTTGGAAGAAATTGCAGAGCTGAATGAAGGCTGTGGT16SrRNATGCTAGTCACCGTAAGGCTAAGGGCTGCAAGATTTCCTTGAT
步驟:①固定,將干凈的蓋玻片分割成合適的大小,放入無菌的24孔板中,分別放入含有2 mL 1/2MIC、1/4MIC和1/8MIC穿心蓮內(nèi)酯的培養(yǎng)基中,然后每孔中加入1 mL稀釋好的菌液,以不加穿心蓮內(nèi)酯的孔為空白對照組,37 ℃培養(yǎng)72 h后取出蓋玻片放入平皿中;用滅菌PBS洗滌兩次,放入戊二醛中固定,置4 ℃冰箱中1 h。②沖洗,用滅菌PBS洗去戊二醛,輕輕洗滌兩次,每次10 min。③脫水,用50%、70%、90%乙醇各脫水一次,每次10 min;用100%乙醇脫水2次,每次10 min。④置換,無水乙醇∶叔丁醇=1∶1,叔丁醇各1次,每次15 min。⑤干燥,將樣品放入-20 ℃冷凍室30 min,取出后放入冷凍干燥儀干燥4 h以上。⑥點樣,將制備好的樣品觀察面朝上,用導電膠帶粘附于掃描電鏡樣品臺上,進行標記、觀察。⑦鍍膜,用E-1010型離子溉射鍵膜儀,在真空條件下將樣品表面鍍一層厚150A的金屬膜;⑧觀察,將制備好的樣品粘在樣品臺上,掃描電鏡下進行觀察[27]。
將哈維氏弧菌接種于海生菌肉湯培養(yǎng)基中,于8 ℃ 120 r·min-1搖床培養(yǎng)24 h。600 nm測其OD值范圍在0.7~1.2均可。用新鮮的海生菌肉湯培養(yǎng)基以1∶5 000稀釋,隨后振蕩搖勻。用12孔板培養(yǎng)豬鏈球菌,第1孔加入2 mL含穿心蓮內(nèi)酯1 mg·mL-1的THB液體培養(yǎng)基,第2、3、4孔每孔加入1 mL普通THB培養(yǎng)基,從第1孔吸出1 mL加入到第2個孔依此類推,至第4孔吸出1 mL棄去,然后每孔加入1 mL普通THB培養(yǎng)基。第5孔加入2 mL普通THB培養(yǎng)基作為空白對照。最后每孔加入100 μL 稀釋好的豬鏈球菌。37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h。24 h后,將之前培養(yǎng)過的液體12 000 r·min-1,離心10 min,取上清液。將上述上清液放到試管中,以1∶9的體積比與哈維氏弧菌的稀釋菌液混合。每個試管做2組平行。28 ℃ 4 h搖床振蕩培養(yǎng)。4 h 后每個試管取出200 μL加入到黑色96孔酶標板內(nèi),每個試管取三組做平行。熒光酶標儀測定其化學熒光[28]。
從表2可知穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌的最低抑菌濃度(MIC)為0.25 mg·mL-1,最低殺菌濃度(MBC)為0.5 mg·mL-1。
表2穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌的MIC和MBC
Table2MICandMBCofAndrographolideagainstStreptococcussuis
0.125mg·mL-10.25mg·mL-10.5mg·mL-11mg·mL-1MIC+---MBC++--
穿心蓮內(nèi)酯在1/2MIC、1/4MIC、1/8MIC時對豬鏈球菌的生長無明顯抑制作用,試驗結果見圖1。
圖1 穿心蓮內(nèi)酯亞MIC濃度下豬鏈球菌的生長曲線Fig.1 Growth curve of Streptococcus suis at sub-MIC concentration of Andrographolide
由表3可知在1/2MIC、1/4MIC、1/8MIC時生物被膜中細菌數(shù)量明顯降低。
Table 3 The number of Streptococcus suis supplement with sub-MIC concentration of Andrographolide gcfu·cm-2
1/2MIC組、陽性對照與陰性對照組比較差異極顯著(P<0.01),1/4MIC、1/8MIC組與陰性對照組比較差異顯著(P<0.05)。穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌有干預作用呈劑量依賴性。試驗結果見圖2。
*. P<0.05,**. P<0.01圖2 亞MIC 濃度穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌生物被膜干預的作用Fig.2 Effect of sub-MIC concentration of Andrographolide on the biofilm of Streptococcus suis
如圖3所示,穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌的毒力因子gapdh、fbps、sly、ef、luxS的轉(zhuǎn)錄有抑制作用,在1/2MIC、1/4MIC時有顯著的抑制作用(P<0.05 或P<0.01),1/8MIC時沒有明顯的抑制作用。
*. P<0.05,**. P<0.01圖3 穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌5種毒力因子轉(zhuǎn)錄影響測定結果Fig.3 Effect of Andrographolide on the transcription of 5 virulence factors of Streptococcus suis
如圖4所示,穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌的毒力因子cps2J、mrp、gdh的轉(zhuǎn)錄有促進作用,在1/2MIC、1/4MIC時有顯著的促進作用(P<0.05或P<0.01),1/8MIC時沒有明顯的促進作用。
*. P<0.05,**. P<0.01圖4 穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌3種毒力因子轉(zhuǎn)錄影響測定結果Fig.4 Effect of Andrographolide on the transcription of 3 virulence factors of Streptococcus suis
掃面電鏡結果顯示,不加藥物組中的細菌被鑲嵌在生物被膜中,周圍包裹著許多膜狀物質(zhì),穿心蓮內(nèi)酯能夠使細菌周圍的膜狀物質(zhì)消失,細胞外基質(zhì)大量減少,細菌生物被膜發(fā)生明顯變化,細菌的數(shù)量明顯下降;穿心蓮內(nèi)酯對生物被膜的形成有抑制作用,且隨著劑量的增加這種抑制作用也隨之明顯增強,1/2MIC(圖5A)穿心蓮內(nèi)酯對生物被膜的干預作用最強,1/2MIC(圖5A)穿心蓮內(nèi)酯,1/4MIC(圖5B)穿心蓮內(nèi)酯,1/8MIC(圖5C)穿心蓮內(nèi)酯對生物被膜的干預作用依次減弱,圖5D為不加穿心蓮內(nèi)酯的陰性對照組。
使用哈維氏弧菌生物發(fā)光法測定細菌培養(yǎng)液中AI-2活性。AI-2活性測定表示為相對光單位和陰性組比較差異性。如圖6所示,1/2MIC、1/4MIC、1/8MIC組與陰性對照組比較均有顯著性差異(P<0.01或P<0.05),說明穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌AI-2信號分子的產(chǎn)生有抑制作用,并且有劑量依賴性。
汪洋已經(jīng)研究出豬鏈球菌在體內(nèi)定植常以生物被膜形式生存,生物被膜可以阻止和抑制巨噬細胞、白細胞、抗體及抗生素進入生物被膜中清除或殺滅細菌,導致鏈球菌反復感染,難以控制[29]。從本研究中的豬鏈球菌對照組結晶紫染色結果可知,豬鏈球菌形成生物被膜的能力較強,在電鏡圖片中可看到豬鏈球菌被胞外基質(zhì)包繞,層層排布在菌體的周圍,形成塔型或蘑菇型的生物被膜[30]。如何能夠抑制或清除生物被膜,防止其反復感染已成為國內(nèi)、外學者關注的焦點。目前有研究結果表明十四、十五元環(huán)大環(huán)內(nèi)酯類藥物對抑制細菌生物被膜形成有一定的作用[31]。本研究采用1/2MIC、1/4MIC、1/8MIC濃度的穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌生物被膜形成進行干預,可見穿心蓮內(nèi)酯能夠有效抑制豬鏈球菌生物被膜的形成,這種抑制作用隨藥物劑量的增加而增強。這一結果與上文提到的結果相似。從掃描電鏡試驗結果可知,穿心蓮內(nèi)酯能使細菌生物被膜中的細菌數(shù)量和生物被膜的形態(tài)發(fā)生明顯變化,可見穿心蓮內(nèi)酯對生物被膜的干預作用確實存在劑量依賴性。
A. 1/2MIC穿心蓮內(nèi)酯;B. 1/4MIC穿心蓮內(nèi)酯;C. 1/8MIC穿心蓮內(nèi)酯;D.陰性對照A. 1/2MIC Andrographolide; B. 1/4MIC Andrographolide; C. 1/8MIC Andrographolide; D. Negative control圖5 掃描電鏡觀察亞MIC濃度穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌生物膜的形態(tài)學觀察(3 000×)Fig.5 Observation the effects of sub-MICs concentration of Andrographolide on the morphology of Streptococcus suis biofilm by scanning electron microscopy (3 000×)
*. P<0.05,**. P<0.01圖6 穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌AI-2的信號分子影響測定結果Fig.6 Effects of Andrographolide on Streptococcus suis AI-2 signals
已經(jīng)被證實了的早期豬鏈球菌經(jīng)典的毒力及與毒力相關的基因有CPS、MRP、IgG結合蛋白、GAPDH、分泌型核酸酶A、透明質(zhì)酸酶、EF、SLY、GDH、GDH、FBPS、精氨酸氨基肽酶、精氨酸氨基肽酶等。雖然對于豬鏈球菌的了解還不是非常的全面,但是經(jīng)過了前人20多年的研究,已經(jīng)鑒定出了一些公認的毒力基因及毒力的相關基因,在很大程度上提升了我們對于潛在毒力基因的認知度[10-12]。在相關研究報道中指出[29],豬鏈球菌的毒力因子gapdh、sly、fbps、cps2J、mrp與豬鏈球菌的侵襲及黏附有關,從而能夠達到調(diào)節(jié)生物被膜形成的作用。本研究熒光定量PCR結果發(fā)現(xiàn)陰性對照組和加藥組相比,gapdh、sly、fbps、ef基因表達下調(diào),而cps2J、mrp和gdh基因表達上調(diào),并呈劑量依賴性。這說明穿心蓮內(nèi)酯有可能影響相關黏附基因的表達,從而抑制了豬鏈球菌生物被膜的形成。與此同時,我們發(fā)現(xiàn)luxS基因表達下調(diào),而且在使用哈維氏弧菌生物發(fā)光法測定細菌培養(yǎng)液中AI-2活性試驗時,我們發(fā)現(xiàn)穿心蓮內(nèi)酯對豬鏈球菌AI-2信號分子的產(chǎn)生有抑制作用,并且有劑量依賴性。眾所周知[29],luxS基因AI-2信號分子是調(diào)節(jié)密度感應系統(tǒng)的重要因子,密度感應系統(tǒng)(QS)是生物群體調(diào)節(jié)生命活動一種重要的調(diào)節(jié)系統(tǒng),它可以使生物群體在達到一定的密度時調(diào)節(jié)諸如發(fā)光、產(chǎn)氣、耐藥及生物被膜形成等生命活動。在本研究中顯示,穿心蓮內(nèi)酯能夠下調(diào)表達luxS基因及抑制AI-2信號分子活性,說明穿心蓮內(nèi)酯能夠干預豬鏈球菌的QS系統(tǒng),從而對豬鏈球菌生物被膜的形成產(chǎn)生了抑制作用。從以上結果我們發(fā)現(xiàn),穿心蓮內(nèi)酯能很好地抑制豬鏈球菌形成生物被膜,并初步闡述其抑制的機制,然而豬鏈球菌生物被膜的產(chǎn)生和抑制機制還需要我們進一步的研究,希望本試驗可以為預防和治療豬鏈球菌病提供一些具體有意義的數(shù)據(jù)。
亞抑菌濃度的穿心蓮內(nèi)酯能夠干預豬鏈球菌生物被膜形成,并影響豬鏈球菌相關毒力基因及AI-2信號分子的表達。
參考文獻(References):
[1]LUN Z R, WANG Q P, CHEN X G, et al.Streptococcussuis: an emerging zoonotic pathogen[J].LancetInfectDis, 2007, 7(3): 201-209.
[2]ZHANG Y Y, DING D D, LIU M L, et al. Effect of the glycosyltransferases on the capsular polysaccharide synthesis ofStreptococcussuisserotype 2[J].MicrobiolRes, 2016, 185: 45-54.
[3]MOHAMMADI Z, PALAZZI F, GIARDINO L, et al. Microbial biofilms in endodontic infections: an update review[J].BiomedJ, 2013, 36(2): 59-70.
[4]尤理想, 趙青, 周敏, 等. 細菌生物膜檢測方法改進與應用[J]. 實驗技術與管理, 2015, 32(3): 72-76.
YOU L X, ZHAO Q, ZHOU M, et al. Improved method of bacterial biofilm detection and its application[J].ExperimentalTechnologyandManagement, 2015, 32(3): 72-76. (in Chinese)
[5]MAN N K, DEGREMONT A, DARBORD J C, et al. Evidence of bacterial biofilm in tubing from hydraulic pathway of hemodialysis system[J].ArtifOrgans, 1998, 22(7): 596-600.
[6]SERRA D O, RICHTER A M, KLAUCK G, et al. Microanatomy at cellular resolution and spatial order of physiological differentiation in a bacterial biofilm[J].mBio, 2013, 4(2): 00103-13.
[8]CASTELO-BRANCO D S C M, RIELLO G B, VASCONCELOS D C, et al. Farnesol increases the susceptibility ofBurkholderiapseudomalleibiofilm to antimicrobials used to treat melioidosis[J].JApplMicrobiol, 2016, 120(3): 600-606.
[9]WANG S, YANG Y B, ZHAO Y L, et al. Sub-MIC tylosin inhibitsStreptococcussuisbiofilm formation and results in differential protein expression[J].FrontMicrobiol, 2016, 7: 384.
[10]CALZAS C, LEMIRE P, AURAY G, et al. Antibody response specific to the capsular polysaccharide is impaired inStreptococcussuisserotype 2-infected animals[J].InfectImmun, 2015, 83(1): 441-453.
[11]SANTHAKUMARI S, KANNAPPAN A, PANDIAN S K, et al. Inhibitory effect of marine cyanobacterial extract on biofilm formation and virulence factor production of bacterial pathogens causing vibriosis in aquaculture[J].JApplPhycol, 2016, 28(1): 313-324.
[12]HUSAIN F M, AHMAD I. Doxycycline interferes with quorum sensing-mediated virulence factors and biofilm formation in Gram-negative bacteria[J].WorldJMicrobiolBiotechnol, 2013, 29(6): 949-957.
[13]ALASIL S M, OMAR R, ISMAIL S, et al. Inhibition of quorum sensing-controlled virulence factors and biofilm formation inPseudomonasaeruginosaby culture extract from novel bacterial species ofPaenibacillususing a rat model of chronic lung infection[J].IntJBacteriol, 2015, 2015: 671562.
[14]KIM B S, PARK S J, KIM M K, et al. Inhibitory effects ofChrysanthemumborealeessential oil on biofilm formation and virulence factor expression ofStreptococcusmutans[J].EvidBasedComplementAlternatMed, 2015, 2015: 616309.
[15]ZIUZINA D, BOEHM D, PATIL S, et al. Cold plasma inactivation of bacterial biofilms and reduction of quorum sensing regulated virulence factors[J].PLoSOne, 2015, 10(9): e0138209.
[16]KASIMANICKAM V R, OWEN K, KASIMANICKAM R K. Detection of genes encoding multidrug resistance and biofilm virulence factor in uterine pathogenic bacteria in postpartum dairy cows[J].Theriogenology, 2015, 85(2): 173-179.
[17]CHOI N Y, KANG S Y, KIM K J.Artemisiaprincepsinhibits biofilm formation and virulence-factor expression of antibiotic-resistant bacteria[J].BiomedResInt, 2015, 2015: 239519.
[18]AVIN S, AVINASH A, PATIL N, et al. Recent advances in the development of antibacterial agents[J].ResJPharmBiolChemSci, 2015, 6(5): 1220-1228.
[19]HSU Y H, HSU Y L, LIU S H, et al. Development of a bifunctional andrographolide-based chemical probe for pharmacological study[J].PLoSOne, 2016, 11(4): e0152770.
[20]于文會, 許晶, 魏慶微, 等. 蒲公英水提物對豬鏈球菌生物被膜體外干預作用[J]. 畜牧獸醫(yī)學報, 2015, 46(10): 1875-1881.
YU W H, XU J, WEI Q W, et al.Dandelionaqueous extract affects biofilm formation byS.suis[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2015, 46(10): 1875-1881. (in Chinese)
[21]CHOI S C. Effects of bacterial biofilms and iron oxide on copper distribution in a simulated marine environment: an implication to the sediments in the Pearl River estuary[D]. Hong Kong, China: The Hong Kong Polytechnic University, 2003: 189-230.
[22]張文元, 楊亞冬, 唐靚. 十四元環(huán)大環(huán)內(nèi)酯類對細菌生物被膜形成的影響及對環(huán)丙沙星的增效作用[J]. 中國衛(wèi)生檢驗雜志, 2005, 15(11): 1288-1289.
ZHANG W Y, YANG Y D, TANG L. Effects of 14-membered macrolides on the formation ofPseudomonasaeruginosabiofilms and synergism between macrolide and ciprofloxacin[J].ChineseJournalofHealthLaboratoryTechnology, 2005, 15(11): 1288-1289. (in Chinese)
[23]VAN CALSTEREN M R, GAGNON F, LACOUTURE S, et al. Structure determination ofStreptococcussuisserotype 2 capsular polysaccharide[J].BiochemCellBiol, 2010, 88(3): 513-525.
[24]DOBRETSOV S, QIAN P Y. The role of epibotic bacteria from the surface of the soft coralDendronephthyasp. in the inhibition of larval settlement[J].JExpMarBiolEcol, 2004, 299(1): 35-50.
[25]吳戀, 王春艷, 呂維, 等. 藏藥大車前草中大車前苷的定性和定量分析[J]. 成都中醫(yī)藥大學學報, 2014, 37(1): 48-50, 59.
WU L, WANG C Y, LV W, et al. Qualitative and quantitative analysis of plantamajoside inPlantagomajorL.[J].JournalofChengduUniversityofTCM, 2014, 37(1): 48-50, 59. (in Chinese)
[26]Vaccine composition against Streptococcus suis infection: EP, 2949340[P]. 2015-12-02.
[27]HUANG Y H, CAI T G, XIA X, et al. Research advances in the intervention of inflammation and cancer by active ingredients of traditional Chinese medicine[J].JPharmPharmSci, 2016, 19(1): 114-126.
[28]CALLEJO R, PRIETO M, ROCCA F, et al. Molecular characterization ofStreptococcussuisserotype 2 strains isolated from humans and diseased pigs in Argentina[C/OL]//Proceedings of Xix Lancefield International Symposium on Streptococci and Streptococcal Diseases. Buenos Aires, Argentina, 2014. [2017-12-26].https://www.researchgate.net/publication/268222687_MOLECULAR_CHARACTERIZATION_OF_STREPTOCOCCUS_SUIS_SEROTYPE_2_STRAINS_ISOLATED_FROM_HUMANS_AND_DISEASED_PIGS_IN_ARGENTINA
[29]汪洋. 豬鏈球菌生物被膜形成及致病機理研究[D]. 南京: 南京農(nóng)業(yè)大學, 2011: 1-10.
WANG Y. Study on the mechanism of biofilm formation and molecular pathogenesis ofStreptococcussuis[D]. Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2011: 1-10. (in Chinese)
[30]SAHA M, WAHL M. Seasonal variation in the antifouling defence of the temperate brown algaFucusvesiculosus[J].Biofouling, 2013, 29(6): 661-668.
[31]LUTZ L, PEREIRA D C, PAIVA R M, et al. Macrolides decrease the minimal inhibitory concentration of anti-pseudomonal agents againstPseudomonasaeruginosafrom cystic fibrosis patients in biofilm[J].BMCMicrobiol, 2012, 12: 196.