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細胞外超氧化物歧化酶DNA甲基化對動脈粥樣硬化的誘導作用及作用靶點

2018-04-10 02:47陳佳楊曉龍張旭峰
中國現(xiàn)代醫(yī)學雜志 2018年10期
關鍵詞:甲基化主動脈氧化應激

陳佳,楊曉龍,張旭峰

(上海中醫(yī)藥大學附屬曙光醫(yī)院1.急診科,2.重癥醫(yī)學科,3.檢驗科,上海 201203)

動脈粥樣硬化(Atherosclerosis,AS)是導致心肌梗死、心絞痛、冠狀動脈粥樣硬化性心臟?。ü谛牟。?、腦梗死等心腦血管疾病的主要原因[1-3]。目前研究已證實氧化應激誘導血管炎癥改變,引起的局部血管炎癥反應和細胞過度增殖參與了AS的發(fā)生和進展。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)是機體抵抗氧自由基損傷的主要防御體系,其中細胞外SOD(extracellular superoxide dismutase,EC-SOD)是唯一在細胞外分布并發(fā)揮抗氧化功能的酶[4-6],也是血管壁抗氧化酶的主要來源。DNA甲基化作為一種重要的表觀遺傳修飾方式,參與了AS的發(fā)病和局部炎癥反應。盡管如此,目前依然無法確定長期持續(xù)性血脂異常所誘導的表觀遺傳改變,特別是EC-SOD甲基化,是否與AS的發(fā)病有關。鑒于此,本研究通過復制高脂飲食純合子載脂蛋白E基因敲除(apolipoprotein E-knockout,ApoE-/-)小鼠模型和THP-1單核細胞源性巨噬細胞,觀察EC-SOD甲基化與AS的關系及可能作用靶點,旨在為AS的防治提供理論基礎。

1 材料與方法

1.1 試劑與抗體

RPMI-1640培養(yǎng)基購自美國Gibco公司,胰蛋白酶、二甲基亞砜、胎牛血清、BCA蛋白濃度測定試劑盒購自廣州碧云天生物技術研究所,Trizol試劑、逆轉錄聚合酶鏈反應(reverse transcriptionpolymerase chain reaction,RT-PCR)試劑盒、脂質(zhì)體LipofectamineTM2000購自美國Invitrogen公司,pEGFP-N1-DNMT1重組質(zhì)粒委托上海捷瑞生物工程有限公司合成,DNA提取試劑盒、MMLV逆轉錄酶、dNTP、Taq DNA聚合酶、瓊脂糖購自美國Promega公司,THP-1單核細胞株、大腸桿菌DH5α購自上海撫生實業(yè)有限公司,基因引物由上海生工公司合成,丙烯酰胺、PVDF膜、十二烷基硫酸鈉購自美國Sigma公司。DNA甲基轉移酶1(DNA methyltransferase 1,DNMT1)、SOD3抗體、β-actin小鼠單克隆抗體、異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)標記的羊抗兔子IgG二抗購自美國Santa Cruz公司,丙二醛(Malonaldehyde,MDA)、活性氧(reactive oxygen species,ROS)檢測試劑盒均購自上海心語生物科技有限公司。

1.2 動物分組與處理

16只雄性ApoE-/-實驗小鼠(ApoE-/-組)和16只C57BL/6小鼠(WT組)購自北京大學實驗動物中心[許可證號:SYXK(京)2016-0028],8周齡,體重18~22 g,標準化飼養(yǎng)房飼養(yǎng)[SPF級動物房,12 h光照與12 h黑暗循環(huán),相對濕度40%~70%,溫度(22±2)℃]。普通飼料配方:麩皮25%,玉米25%,豆餅13%,大麥20%,魚粉6%,其他輔料11%;高脂飼料配方:在普通飼料中加入5%脂肪、1.5%膽固醇、5%蛋黃粉和0.2%膽酸鈉。WT組給予不含任何高脂成分的普通飼料喂養(yǎng),ApoE-/-組給予高脂飼料喂養(yǎng),小鼠自由攝食和飲水20周后,進行后續(xù)實驗。

1.3 細胞培養(yǎng)、分組與處理

THP-1單核細胞株接種于RPMI-1640培養(yǎng)基,于37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),光學顯微鏡下觀察細胞形態(tài),當細胞貼壁生長、且出現(xiàn)偽足時,提示已經(jīng)分化為巨噬細胞。將細胞分為3組:空白對照組(NC組)、空白質(zhì)粒組(pEGFP-N1組)和重組質(zhì)粒組(pEGFP-N1-DNMT1組);取分化為巨噬細胞的THP-1細胞株,NC組用含15%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),pEGFP-N1組加入10μl脂質(zhì)體Lipofectamine和20μg空質(zhì)粒載體pEGFP-N1,pEGFP-N1-DNMT1組加入10μl脂質(zhì)體Lipofectamine和20μg pEGFP-N1-DNMT1重組質(zhì)粒載體,于37℃、5%CO2下培養(yǎng),每6 h更換1次培養(yǎng)液,各組細胞繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,進行后續(xù)實驗。

1.4 動物處理與取樣

兩組于喂養(yǎng)第8、12、16、20周時,每次每組取4只小鼠,腹腔注射2 ml/100 g麻醉,置于動物手術臺上,摘除眼球,取眼眶靜脈血3 ml,靜置20 min,5 000 r/min離心15 min,吸取上清液,置于-20℃冰箱保存待檢。再將小鼠處死,開腹取出主動脈,生理鹽水沖洗干凈,切取距主動脈弓0.5 cm處的主動脈,分為2部分,一部分采用4%多聚甲醛固定,其余部分于液氮中保存。

1.5 檢測指標

1.5.1血脂檢測 采用全自動生化分析儀檢測小鼠低密度脂蛋白(low density lipoprotein,LDL)、高密度脂蛋白(high density lipoprotein,HDL)、三酰甘油(Triglyceride,TG)、總膽固醇(total cholesterol,TC)等血脂水平,其中LDL、HDL采用常規(guī)酶法,TG、TC采用終點法。

1.5.2組織形態(tài)學觀察取4%多聚甲醛固定的主動脈組織,石蠟包埋,制成4μm的連續(xù)切片,采用蘇木素-伊紅染色,中性樹膠封片,光學顯微鏡下觀察組織形態(tài)學特征。

1.5.3氧化應激指標檢測取4μg組織樣本,勻漿器中打成勻漿,12 000 r/min離心15 min,取上清液待測。采用分光光度比色法檢測主動脈組織MDA、ROS含量,所有樣本均于酶標儀上檢測560 nm處吸光度值,采用標準曲線計算出待測樣品蛋白的濃度。

1.5.4RT-PCR檢測主動脈組織EC-SOD、DNMT1 mRNA水平液氮中取出主動脈組織,自然解凍,Trizol RNA提取試劑盒提取組織總RNA,紫外分光光度法檢測總RNA濃度。將1μg總RNA按照GeneAmp PCR試劑盒說明書逆轉錄成cDNA;合成體系:逆轉錄緩沖液3μl,RNA逆轉錄模板1μl,逆轉錄酶2μl,正向、反向引物各1μl,加入雙蒸水補充至總反應體系為20μl,37℃金屬浴反應50 min合成cDNA。將cDNA置于PCR反應體系中進行擴增(引物序列見附表)。PCR反應體系:PCR試劑混合液12.5μl,DEPC 8μl,cDNA 2.5μl,正反向引物 1μl,總反應體系25μl;反應條件:95℃預變性1 min,95℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸1 min,40個循環(huán)后72℃ 5 min,溶解曲線條件為55℃~95℃,將PCR產(chǎn)物置于瓊脂糖凝膠電泳分離擴增片段,檢測基因熒光信號強度值(Ct),計算基因表達量(2-△△Ct),以β-actin作為內(nèi)參照進行校正,分析目的基因相對表達量。

附表 引物序列及擴增片段長度

1.5.5巢式甲基化特異性PCR檢測主動脈組織ECSOD DNA甲基化程度DNA提取試劑盒提取組織總RNA,4%瓊脂糖凝膠檢測基因組DNA濃度和純度。PCR反應體系:Power SYBR Green PCR Master Mix10μl,引物 1μl,DNA 模板 2.5μl,ddH2O 15μl。第1輪PCR采用外側引物,反應條件:95℃預變性5 min,97℃變性30 s,56℃退火30 s,總計35個循環(huán)。將第1輪PCR產(chǎn)物稀釋50倍,取1μl進行第2輪PCR反應,95℃預變性5 min,97℃變性30 s,62℃退火15 s,總計35個循環(huán)。陰性對照為人外周血淋巴細胞,將PCR產(chǎn)物采用瓊脂糖凝膠電泳,溴化乙錠染色,紫外燈下觀察結果,甲基化%=甲基化光密度值/(甲基化光密度值+非甲基化光密度值)×100%。

1.5.6Western blot檢測EC-SOD、DNMT1蛋白水平和EC-SOD DNA甲基化程度取出對數(shù)生長期細胞,棄去培養(yǎng)液,PBS沖洗,加入離心管中,再加入1 ml細胞裂解液置于冰浴上裂解30 min,4℃條件下離心15 min,采用Western blot檢測EC-SOD、DNMT1蛋白水平,將20μg蛋白提取液置于10%SDS-PAGE電泳分離,常規(guī)濕法轉膜,加入5%脫脂牛奶孵育封閉2 h。加入鼠抗人EC-SOD單克隆抗體、兔抗人DNMT1單克隆抗體,4℃孵育24 h。再滴加FITC標記的二抗37℃孵育2 h。PBS沖洗3次,按照ECL化學發(fā)光顯影試劑盒顯影,以β-actin作為內(nèi)參照,分析目的條帶相對表達量。各組細胞EC-SOD DNA甲基化程度方法同上。

1.6 統(tǒng)計學方法

采用SPSS19.0軟件進行數(shù)據(jù)處理,計量資料用均數(shù)±標準差(±s)表示,采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結果

2.1 血脂水平變化

第 8、12、16、20周,ApoE-/-組 TC(見圖 1A)、LDL(見圖1B)、TG(見圖1C)呈升高趨勢(F=3.140、4.183 和 4.920,P=0.041、0.033 和 0.029),HDL(見圖1D)無明顯變化(F=0.735,P=0.955);各時段ApoE-/-組TC、LDL、TG高于WT組,HDL低于WT組(P<0.05)。

圖1 兩組血脂比較

2.2 主動脈病理形態(tài)變化

第16、20周,WT組動脈組織內(nèi)皮細胞結構規(guī)則有序,平滑肌細胞排列整齊,內(nèi)皮下無炎癥細胞或脂質(zhì)沉積;ApoE-/-組主動脈內(nèi)膜明顯增厚,血管壁伴有彌漫性隆起,平滑肌細胞排列無序,內(nèi)皮下伴有炎癥浸潤和脂質(zhì)沉積。見圖2。

2.3 氧化應激指標變化

第 8、12、16、20周,ApoE-/-組MDA(見圖 3A)、ROS(見圖3B)呈升高趨勢(F=8.143和9.224,P=0.021和0.019),各時段ApoE-/-組MDA、ROS高于 WT 組(P<0.05)。

2.4 EC-SOD、DNMT1 mRNA及 EC-SOD甲基化水平變化

第 8、12、16、20 周,ApoE-/-組 EC-SOD mRNA(見圖4A)表達水平低于WT組(F=17.320,P=0.000),DNMT1 mRNA表達水平(見圖4B)和EC-SOD甲基化水平(見圖4C)高于WT組(F=16.477和4.965,P=0.001和 0.024)。

2.5 pEGFP-N1-DNMT1轉 染 后EC-SOD、DNMT1蛋白及EC-SOD甲基化水平變化

pEGFP-N1-DNMT1組DNMT1蛋白表達(見圖5A)及EC-SOD甲基化水平(見圖5C)高于pEGFPN1組(F=7.884和6.329,P=0.028和0.037)和NC組(F=7.955和6.059,P=0.004和0.019),EC-SOD蛋白表達水平(見圖5B)低于pEGFP-N1組(F=15.365,P=0.000)和NC 組(F=6.331,P=0.037),pEGFP-N1組和NC組EC-SOD、DNMT1蛋白表達水平及ECSOD甲基化水平比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

圖2 兩組主動脈病理形態(tài)變化

圖3 兩組氧化應激指標比較

圖5 pEGFP-N1-DNMT1轉染后EC-SOD、DNMT1蛋白表達及EC-SOD甲基化水平比較

3 討論

正常情況下,機體處于氧化和抗氧化動態(tài)平衡,當平衡被打破后就會導致氧自由基生成、清除失衡,引起ROS蓄積,最終引起氧化應激損傷[7-9]。目前已證實氧化應激損傷與AS的發(fā)生和進展密切相關,氧化應激能通過誘導氧化作用,引起局部炎癥反應和細胞增殖,因此針對性的抗氧化治療成為AS防治的主要手段。ApoE-/-實驗小鼠是復制AS模型常用的動物,本研究利用高脂飼料喂養(yǎng)ApoE-/-小鼠,結果顯示ApoE-/-組TC、LDL、TG高于WT組,HDL低于WT組;主動脈根部切片染色顯示ApoE-/-組主動脈內(nèi)膜明顯增厚,WT組動脈組織內(nèi)皮細胞結構規(guī)則有序,證實AS小鼠模型復制成功。進一步分析兩組小鼠的氧化應激指標,結果顯示ApoE-/-組MDA、ROS呈升高趨勢,各時段ApoE-/-組MDA、ROS高于WT組,說明AS與氧化應激損傷密切相關。NOMIYA等[10]報道稱氧化應激能損傷血管內(nèi)皮細胞,進而誘發(fā)粥樣斑塊形成和脂質(zhì)沉積,這一過程亦是AS的始動因素。PEREIRA等[11]也證實高脂喂養(yǎng)的ApoE-/-小鼠血脂異常升高,ROS水平增加,證實高脂血癥也會誘導氧化應激反應。

機體發(fā)生氧化應激時,能夠啟動自身的抗氧化防御體系,其中EC-SOD唯一分布于細胞外的抗氧化酶,其通過與硫酸乙酰肝素結合,將氧自由基歧化為H2O2,保護組織避免發(fā)生自由基損傷,預防AS發(fā)生[12-13]。最新研究發(fā)現(xiàn)[14],EC-SOD還具有調(diào)節(jié)內(nèi)源性NO的作用,所產(chǎn)生的NO能夠擴張血管平滑肌、抑制血小板聚集,進而抑制AS發(fā)生和進展。本研究發(fā)現(xiàn)ApoE-/-組EC-SOD mRNA表達水平低于WT組,說明EC-SOD含量偏低引起的抗氧化防御體系功能減弱是導致AS的誘因之一。TEOH-FITZGERALD等[15]報道稱細胞外高濃度EC-SOD能夠有效清除氧自由基,減少超氧化亞硝基陰離子形成,進而保護細胞避免氧自由基損害,抑制AS的進程。BREAK等[16]也證實EC-SOD能夠抑制還原型輔酶Ⅱ(NADPH)和ROS增多而產(chǎn)生的氧自由基,將小鼠EC-SOD基因敲除后,小鼠發(fā)生AS的風險升高。

目前已經(jīng)明確EC-SOD是抗氧化的主要酶系,但是其在粥樣硬化過程中的作用機制仍存在一定爭議。隨著分子生物學的研究深入,人們逐漸認識到表觀遺傳在心血管疾病發(fā)病中的作用。作為表觀遺傳的典型標記,DNA甲基化在多種生物學功能中發(fā)揮著重要作用[17-18]。楊程等[19]對40例確診為AS的患者外周血基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制劑1(TIMP-1)進行檢測,結果發(fā)現(xiàn)AS患者外周血TIMP-1含量低于正常對照組,進一步發(fā)現(xiàn)其降低的機制與TIMP-1基因啟動子區(qū)的高甲基化密切相關,提示基因DNA甲基化也是導致AS形成的原因之一。本研究ApoE-/-組EC-SOD甲基化水平高于WT組,說明AS發(fā)病可能與EC-SOD甲基化水平增加,進而導致EC-SOD表達下調(diào)有關。DNMT1是維持基因DNA甲基化修飾狀態(tài)的主要酶系,也是調(diào)節(jié)基因DNA甲基化水平的關鍵[20];DNMT1表達與DNA甲基化程度正相關,與基因表達負相關[21]。本研究證實ApoE-/-組DNMT1表達水平高于WT組,成功轉染DNMT1的巨噬細胞DNMT1蛋白表達及EC-SOD甲基化升高,EC-SOD蛋白表達降低,說明DNMT1催化EC-SOD轉甲基反應,導致EC-SOD水平降低,進而加重氧化應激損傷,最終形成AS。這一結果也提示DNMT1可以作為AS靶向治療的1個潛在作用靶點。

綜上所述,EC-SOD甲基化程度升高,導致ECSOD表達降低,機體抵抗氧化應激反應能力減弱,最終發(fā)展成AS。

參 考 文 獻:

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