杜玄,趙燕英,劉驥,龍虎,王洪志,田萬(wàn)帆,唐俊妮
(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川成都 610041)
金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是一種重要的病原菌,極易污染食品并引發(fā)食物中毒,以及人或動(dòng)物的組織感染、敗血癥和肺炎等[1,2]。在我國(guó),由金黃色葡萄球菌引起的食物中毒占所有細(xì)菌性食物中毒的比例高達(dá)20%~25%[3]。金黃色葡萄球菌引發(fā)的食物中毒主要是由腸毒素引起的。目前已發(fā)現(xiàn)的金黃色葡萄球菌腸毒素有 22種,根據(jù)其被發(fā)現(xiàn)的先后順序,分別命名為傳統(tǒng)腸毒素SEA~SEE和新型腸毒素SEG-SET,SElU,SElU2,SElV[4]。
對(duì)于新發(fā)現(xiàn)的腸毒素目前還缺乏檢測(cè)方法?,F(xiàn)有的檢測(cè)金黃色葡萄球菌傳統(tǒng)腸毒素和部分新型腸毒素的方法有分子生物學(xué)檢測(cè)法、免疫學(xué)檢測(cè)法和生物傳感器法等[5],其中,大多是針對(duì)毒素基因水平的檢測(cè),如Letertre等[6]利用實(shí)時(shí)熒光PCR(polymerase chain reaction)成功檢測(cè)出了9種腸毒素基因,該檢測(cè)技術(shù)快速,但只能檢測(cè)核酸水平而不能檢測(cè)蛋白本身。
酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)是依靠抗原決定簇與抗體結(jié)合位點(diǎn)之間特異性進(jìn)行檢測(cè),如 Rahimi等[7]用ELISA方法檢測(cè)食品中的傳統(tǒng)腸毒素SEA-SED;Nagaraj等[8]利用雙抗夾心 ELISA(double-antibody sandwich-enzyme linked immunosorbent assay,DAS-ELISA)的方法檢測(cè)食品中的SEG;朱安妮等[9]利用雙抗夾心 ELISA建立檢測(cè)金黃色葡萄球菌新型腸毒素SEI;Zhao等[10]利用雙抗夾心ELISA檢測(cè)金黃色葡萄球菌新型腸毒素SEM。但目前還未見檢測(cè)新型腸毒素SEP的ELISA方法報(bào)道。
新型腸毒素 sep基因的核苷酸序列有 729 bp(NCBI登錄號(hào):YP_009113107.1),編碼286個(gè)氨基酸殘基的毒素蛋白SEP,分子量為27.89 ku。Hait等[11]在發(fā)生食物中毒事件的面包店中,檢測(cè)出金黃色葡萄球菌新型腸毒素sep基因。Calderwood等[12]的研究發(fā)現(xiàn)攜帶sep基因的MRSA菌株會(huì)增加敗血癥的風(fēng)險(xiǎn)。因此,研究腸毒素SEP的夾心ELISA檢測(cè)方法具有必要性,可為食品污染腸毒素SEP的風(fēng)險(xiǎn)識(shí)別提供技術(shù)支持。
SEP蛋白純品(1.8 mg/mL),SEP單克隆抗體(2.3 mg/mL),抗SEP兔血清(1.57 mg/mL),以及SEK、SEI和SEM蛋白均為本實(shí)驗(yàn)室自制;辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔 IgG(IgG/HRP)購(gòu)自北京博奧森生物技術(shù)有限公司;四甲基聯(lián)苯胺(TMB)底物溶液購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;Tween-20購(gòu)自美國(guó)Amresco公司;脫脂奶粉購(gòu)自英國(guó)Oxoid公司;96孔聚苯乙烯酶標(biāo)板購(gòu)自中國(guó)Costar公司;Elx-808型酶標(biāo)儀購(gòu)自美國(guó)Bio-Tek公司。
1.2.1 SEP的DAS-ELISA工作流程
以適當(dāng)稀釋的SEP單克隆抗體包被酶標(biāo)板,每孔100 μL,4 ℃包被過(guò)夜;倒出包被液,每孔加入含有Tween-20的磷酸鹽緩沖液(PBST),清洗3次;隨后,每孔加入200 μL的5%脫脂乳的磷酸鹽緩沖液(PBS),37 ℃封閉1~2 h,洗板3次;再加入SEP純品蛋白(20 μg/mL),每孔 100 μL,37 ℃孵育 45~90 min;加入抗SEP兔血清,100 μL/孔,37 ℃孵育 1 h;以羊抗兔IgG/HRP 為二抗,100 μL/孔,37 ℃孵育 30~60 min;洗板5次,加入TMB底物顯色溶液,每孔100 μL,避光顯色10~20 min;加入2 mol/L的硫酸溶液使反應(yīng)停止。測(cè)定450 nm處的OD值,并計(jì)算P/N值(其中P為檢測(cè)樣品的OD450nm值;N為陰性對(duì)照OD450nm值)。
1.2.2 最佳抗體質(zhì)量濃度確定
保持其余工作條件不變,采用1.2.1的流程分別對(duì)不同質(zhì)量濃度下的抗SEP單克隆抗體(1.64、3.28、6.56 μg/mL)、不同稀釋質(zhì)量濃度的抗 SEP兔血清(1.57、3.14、6.28 μg/mL)和不同稀釋度的IgG/HRP(稀釋度為 1:3000、1:6000)進(jìn)行檢測(cè)。陽(yáng)性孔用已知濃度的SEP蛋白純品作對(duì)照,陰性孔用PBS代替抗原,反應(yīng)結(jié)束,測(cè)定OD450nm值,并計(jì)算P/N值,根據(jù)P/N大小確定最佳抗SEP單克隆抗體和抗SEP兔血清濃度以及IgG/HRP最佳稀釋度。
1.2.3 最佳檢測(cè)條件確定
參照朱安妮[9]的方法,按照1.2.1的流程,在最佳抗體工作濃度的條件下,分別對(duì)不同種類的緩沖液(0.1 mol/L,pH 9.2碳酸鹽);1×PBS(pH 7.4)、封閉時(shí)長(zhǎng)(1、1.5、2 h)、抗原孵育時(shí)間(45、60、90 min)、羊抗兔IgG/HRP反應(yīng)時(shí)間(37 ℃:30、45、60 min)、TMB底物顯色時(shí)間(10、15、20 min)進(jìn)行 ELISA實(shí)驗(yàn)。檢測(cè)陽(yáng)性孔和陰性孔的OD450nm,計(jì)算并選擇最大P/N值為最佳條件。
1.2.4 制備DAS-ELISA標(biāo)準(zhǔn)曲線
按照ELISA的工作程序,用夾心ELISA法檢測(cè)不同質(zhì)量濃度SEP抗原(0.63、1.25、2.5、5、10、20 μg/mL),測(cè)定OD450nm值,并制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.5 靈敏度實(shí)驗(yàn)
利用DAS-ELISA法檢測(cè)不同質(zhì)量濃度的SEP蛋白(0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、1.8、2.0、2.2、2.4 μg/mL),測(cè)試 SEP檢測(cè)方法的靈敏度。判斷標(biāo)準(zhǔn):P/N>2.0為陽(yáng)性。
1.2.6 精密度實(shí)驗(yàn)[9,13]
參考文獻(xiàn)方法,批內(nèi)變異將陽(yáng)性對(duì)照組(20、10、5 μg/mL),陰性對(duì)照組分別作 5個(gè)孔,同時(shí)檢測(cè)其OD450nm值;批間變異將上述標(biāo)本連續(xù)5次檢測(cè)OD450nm值。變異系數(shù)的計(jì)算公式為CV=(SD/ˉx)×100%
1.2.7 DAS-ELISA方法的特異性分析
取實(shí)驗(yàn)室保存的 SEK、SEI和 SEM 純品(10 μg/mL)作為樣品檢測(cè)。判斷標(biāo)準(zhǔn):P/N>2.0為陽(yáng)性結(jié)果。
1.2.8 測(cè)定人工污染樣品中SEP回收率
SEP人工污染基質(zhì)采用LB肉湯、牛肉糜和熟米飯。通過(guò)添加,使基質(zhì)中SEP的含量分別為2.5、5、10和20 μg/mL。利用所建立的SEP的DAS-ELISA方法,分別測(cè)定樣品和陰性對(duì)照的OD450nm,計(jì)算樣品的回收率。
1.2.9 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
每個(gè)檢測(cè)樣品做三次重復(fù),數(shù)據(jù)采用 excel軟件進(jìn)行分析,實(shí)驗(yàn)結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
采用方陣滴定法來(lái)確定單克隆抗體和抗血清配對(duì)的最佳工作濃度,結(jié)果如表1所示。
當(dāng)單克隆抗體的包被質(zhì)量濃度為3.28 μg/mL,抗SEP兔血清的質(zhì)量濃度為3.14 μg/mL的時(shí)候,P/N值最大,達(dá)到9.44。
因此確定抗體的最佳配對(duì)濃度為單克隆抗體3.28μg/mL,抗血清3.14 mg/L。
表1 不同抗體濃度配對(duì)下的OD450 nm值Table 1 The OD450 nm values under different antibody concentrations
表2 不同羊抗兔IgG/HRP稀釋度下的OD450 nm值Table 2 The OD450 nm values of different goat anti-rabbit IgG /HRP dilutions
注:加粗字體為酶標(biāo)抗體的最佳稀釋度。在最佳配對(duì)抗體濃度的條件下(即單克隆抗體質(zhì)量濃度為 3.28μg/mL,抗SEP兔血清質(zhì)量濃度為3.14 μg/mL),測(cè)定酶標(biāo)抗體稀釋度的OD450nm值。如表2所示,當(dāng)酶標(biāo)抗體的稀釋度為1:3000 時(shí),P/N 值是9.68,因此,確定1:3000 為最佳IgG/HRP 稀釋度。
根據(jù)2.1和2.2的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,單克隆抗體的包被濃度為3.28 μg/mL,抗SEP兔血清的濃度為3.14 μg/mL,羊抗兔IgG/HRP的稀釋度為1:3000,在此體系下對(duì)包被緩沖液、封板時(shí)長(zhǎng)、抗原孵育時(shí)間、酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間和TMB顯色時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化,表3為實(shí)驗(yàn)結(jié)果。根據(jù)P/N值最大的標(biāo)準(zhǔn)選擇最優(yōu)條件。因此,最終選擇包被緩沖液為1×PBS(pH 7.4),封閉時(shí)間為1 h,抗原孵育時(shí)間為90 min,酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間為30 min,TMB顯色時(shí)間為15 min。
表3 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化Table 3 Optimization of experimental conditions
注:加粗字體為最佳實(shí)驗(yàn)條件。
圖1 SEP雙抗夾心酶聯(lián)免疫法的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of SEP double-antibody sandwich enzyme-linked immunoassay
根據(jù)2.1,2.2和2.3的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在最優(yōu)條件下,選取不同濃度的SEP純品蛋白制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,并進(jìn)行線性回歸分析,標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程是y=0.0313x+0.0262,R2=0.9946。SEP的DAS-ELISA方法適用檢測(cè)范圍是0.625~20 μg/mL。
采用所建立的實(shí)驗(yàn)方法,測(cè)定不同質(zhì)量濃度的SEP蛋白純品,測(cè)定OD450nm,并計(jì)算P/N值。結(jié)果如表4所示。當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.8 μg/mL時(shí),P/N值為2.03,根據(jù) P/N值大于 2的標(biāo)準(zhǔn),本研究建立的DAS-ELISA方法的實(shí)際檢測(cè)靈敏度為1.8 μg/mL。
SEP的DAS-ELISA檢測(cè)方法的精密度實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表5所示,由表5可以看出,批內(nèi)變異系數(shù)均小于6%,批間變異系數(shù)均小于15%,說(shuō)明此方法具有較好的重復(fù)性。
表4 檢測(cè)SEP的靈敏度實(shí)驗(yàn)Table 4 The sensitivity of SEP detection
表5 精密度實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 5 Precision experiment results
利用所建立的DAS-ELISA方法對(duì)實(shí)驗(yàn)室保存的金黃色葡萄球菌腸毒素K、I和M純品進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果如表6所示,P/N<2.0,檢測(cè)結(jié)果均為陰性,說(shuō)明該方法與金黃色葡萄球菌其他腸毒素蛋白之間不交叉。
表6 特異性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 6 Specific experimental results
通過(guò)將牛肉糜、熟米飯、LB肉湯中添加適當(dāng)濃度的SEP純品蛋白,采用建立的檢測(cè)方法檢測(cè)樣品中SEP的回收率。從表7可以看出,牛肉糜、熟米飯、LB肉湯樣品中SEP蛋白都具有較好的回收率,接近90%及以上。并且三種污染樣品中SEP的回收率隨著添加濃度的增加而增高,雖然存在樣品本身的差異性,但也能很好說(shuō)明建立的方法具有較高準(zhǔn)確度。
表7 人工污染樣品的回收率Table 7 Recovery of artificial contaminated samples
ELISA方法具有靈敏度高,特異性好,檢測(cè)成本低等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)在生物、化學(xué)、醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域有了廣泛應(yīng)用[14]。目前文獻(xiàn)報(bào)道的相關(guān)金黃色葡萄球菌腸毒素的檢測(cè)也采用了該方法,如Morissette等[15]建立檢測(cè)奶酪中腸毒素SEB的夾心ELISA方法,市場(chǎng)上也有相應(yīng)試劑盒銷售,經(jīng)過(guò)改良后其靈敏度可達(dá)到 0.5 ng/mL。又如Rahimi等[16]檢測(cè)生牛乳中金黃色葡萄球菌腸毒素A的時(shí)候采用了ELISA試劑盒,靈敏度達(dá)到了0.2 ng/mL。但是,這些方法的建立和試劑盒的應(yīng)用大部分集中在對(duì)傳統(tǒng)金黃色葡萄球菌腸毒素 A-D的檢測(cè)上。而針對(duì)新型腸毒素檢測(cè)方法的研究相對(duì)比較少。
隨著研究的不斷發(fā)展,開發(fā)針對(duì)新型腸毒素蛋白的檢測(cè)手段具有必要性。近年來(lái),Nagaraj等[8]、朱安妮等[9]和Zhao等[10]分別建立了檢測(cè)腸毒素SEG、SEI和SEM的夾心ELISA方法。這些方法不斷豐富了調(diào)查金黃色葡萄球菌腸毒素污染食品的檢測(cè)手段。
本研究也建立了一種檢測(cè)金黃色葡萄球菌腸毒素SEP的DAS-ELISA方法,該方法在0.625~20 μg/mL范圍內(nèi)都具有較好的線性關(guān)系,建立方法的靈敏度為1.8 μg/mL,通過(guò)批內(nèi)變異系數(shù)和批間變異系數(shù)以及人工加標(biāo)的回收率實(shí)驗(yàn),證實(shí)建立的方法具有較好的重復(fù)性和穩(wěn)定性,可用于金黃色葡萄球菌腸毒素P的定量檢測(cè),也將具有良好的應(yīng)用前景。
在進(jìn)行實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化時(shí),我們發(fā)現(xiàn)單抗和多抗的濃度并不是添加量越高效果就越好,抗體濃度過(guò)高,會(huì)增加體系中的非特異性反應(yīng),同時(shí)也會(huì)影響單抗的抗原表位,降低抗原抗體復(fù)合物的形成,使OD450nm降低。但如果抗體濃度過(guò)低,又會(huì)使抗原的結(jié)合位點(diǎn)減少,造成測(cè)量值比實(shí)際值低。本研究中使用的單克隆抗體的包被濃度為3.28 μg/mL,抗SEP兔血清的濃度為3.14 μg/mL。同時(shí),封閉時(shí)間、抗原孵育時(shí)間、二抗反應(yīng)時(shí)間和TMB底物顯色時(shí)間也會(huì)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生影響,一般來(lái)說(shuō)TMB顯色時(shí)間越長(zhǎng),顏色越深,OD450nm值越高。但如果延長(zhǎng)顯色時(shí)間也會(huì)使陰性孔的值升高,使P/N值反而降低,這與朱安妮等[9]的發(fā)現(xiàn)相似,本研究?jī)?yōu)化的顯色時(shí)間為15 min。另外,食品基質(zhì)的復(fù)雜性也會(huì)影響實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,在加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),對(duì)于牛肉糜和熟米飯這兩種基質(zhì)來(lái)說(shuō),SEP的濃度越高,回收率越好,而LB肉湯的回收率在不同SEP的濃度下都較好。以后可進(jìn)一步探索樣品的前處理手段和方法,以進(jìn)一步降低待測(cè)基質(zhì)本身對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果影響。還有在特異性實(shí)驗(yàn)中,我們把實(shí)驗(yàn)室保存的金黃色葡萄球菌腸毒素K、I和M蛋白進(jìn)行對(duì)照檢測(cè),發(fā)現(xiàn)腸毒素K、I和M與腸毒素P之間不存在交叉反應(yīng),這是一個(gè)很好的結(jié)果。但本研究也還存在一定的缺陷,建立的方法的檢測(cè)限不夠靈敏,在今后的研究中我們將進(jìn)一步優(yōu)化條件,并且將建立更加豐富的樣品評(píng)價(jià)方案。
綜上所述,本研究初步建立了一種檢測(cè)金黃色葡萄球菌腸毒素SEP的DAS-ELISA方法,該方法可用來(lái)檢測(cè)被金黃色葡萄球菌污染食品中的SEP含量,將具有一定的應(yīng)用前景和借鑒意義。
本研究建立了一種檢測(cè)金黃色葡萄球菌新型腸毒素P的雙抗夾心ELISA方法;該方法的回歸方程為y=0.0313x+0.0262,R2=0.9946;該方法檢測(cè)SEP毒素的靈敏度為1.8 μg/mL,精密度批內(nèi)變異低于6%,批間變異低于15%,對(duì)LB肉湯、牛肉糜和熟米飯回收率可達(dá)90%以上。
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