莫飛旭 喻會(huì)平 龍友華 吳小毛 黎曉茜 李磊
摘 要:為獲得對(duì)煙蚜具有感染作用的蟲(chóng)霉菌,從貴州不同煙區(qū)采集受霉菌感染的煙蚜蟲(chóng)尸標(biāo)本進(jìn)行菌株分離,在室內(nèi)進(jìn)行感染率測(cè)定篩選獲得優(yōu)勢(shì)菌株并通過(guò)rDNA-ITS序列測(cè)定,用菌絲生長(zhǎng)速度法探索適宜蟲(chóng)霉菌生長(zhǎng)的培養(yǎng)基、溫度、光照和pH條件。結(jié)果表明,采集分離獲得16株真菌,其中,感染作用較強(qiáng)的CM-4、CM-11和CM-15,在室內(nèi)施用15 d后,對(duì)煙蚜的感染率分別達(dá)68.07%、69.80%和72.05%;通過(guò)BLAST在線比對(duì)CM-4、CM-11和CM-15 3株蟲(chóng)霉菌分別與金色毛殼菌(Chaetomium aureum)、漸狹蠟蚧菌(Lecdanicillium attenuatum)和少根根霉菌(Rhizopus arrhizus)同源性最高;CM-11和CM-15適宜在培養(yǎng)基E,CM-4適宜在培養(yǎng)基A條件下培養(yǎng);CM-4和CM-15適宜溫度為25~30 ℃,適宜CM-4和CM-11的光照為半光照半黑暗,pH為6~7。研究表明,金色毛殼菌、漸狹蠟蚧菌和少根根霉菌對(duì)煙蚜具有較強(qiáng)的感染作用,可用于煙蚜的生物防治。
關(guān)鍵詞:煙蚜;蟲(chóng)霉菌;培養(yǎng)條件;生物防治;鑒定
中圖分類號(hào):S435.72 文章編號(hào):1007-5119(2018)06-0043-08 DOI:10.13496/j.issn.1007-5119.2018.06.007
煙蚜[Myzus persicae (sulzer)],又名桃蚜,是煙草重要的害蟲(chóng)之一,在世界范圍內(nèi)均有分布。煙蚜通過(guò)刺吸式口器吸取煙葉汁液,影響煙草正常的生理功能和生長(zhǎng),同時(shí)煙蚜還可排泄蜜露,引起霉菌滋生,污染葉片[1],此外,煙蚜是病毒的重要傳播媒介,可傳播CMV、PVY等病毒病,煙蚜為害可降低煙葉煙堿含量,減小煙葉面積,嚴(yán)重降低煙葉品質(zhì),給煙草生產(chǎn)帶來(lái)巨大的經(jīng)濟(jì)損失[2]。目前煙蚜的防治主要依賴于化學(xué)藥劑,使用不當(dāng)易引起污染等問(wèn)題,且長(zhǎng)期使用可造成煙蚜生理發(fā)生變異,產(chǎn)生可遺傳的抗藥性[3-4]。生物防治是一種清潔、綠色的防控技術(shù),煙蚜的生物防治主要通過(guò)使用生物農(nóng)藥、釋放天敵昆蟲(chóng)等手段[5-6],如利用瓢蟲(chóng)[7]和蚜繭蜂[8]。
蟲(chóng)霉菌是一類能寄生于害蟲(chóng)蟲(chóng)體,導(dǎo)致蟲(chóng)體感染、發(fā)病、死亡的真菌。利用蟲(chóng)霉菌防治害蟲(chóng)是一種綠色、安全的生物防治手段。目前該技術(shù)在多種害蟲(chóng)的防治上已得到廣泛使用,如白僵菌(Beauveria bassiana)防治甘薯象甲、玉米螟和馬尾松毛蟲(chóng),綠僵菌(Metarhizium)防治金龜子等[9]。而在煙蚜方面,目前有報(bào)道的煙蚜生防蟲(chóng)霉菌包括白僵菌、綠僵菌[10-14]、球毛殼菌(Chaetomium globosum)[15-17]、蠟蚧輪枝菌(Lecanicillium lecanii)[18]、Lecanicillium longisporum[19-20]、弗氏新接霉蚜霉菌[Neozygites fresenii (Nowakowski)][21]、耳霉菌(Conidiobolus major)[22]和青霉菌(Paecilomyces sp.)[23-26]。但目前尚無(wú)一種被廣泛應(yīng)用于煙蚜防控的蟲(chóng)霉菌,限制這一技術(shù)發(fā)展的主要因素包括煙蚜蟲(chóng)霉菌菌種資源較少、致病力弱且培養(yǎng)難度大,此外蟲(chóng)霉菌對(duì)田間環(huán)境條件的適應(yīng)性較差。基于此種情況,本試驗(yàn)從貴州不同煙區(qū)采集、分離和篩選對(duì)煙蚜具有較強(qiáng)致病力的生防優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌,以豐富煙蚜蟲(chóng)霉菌菌種資源,并通過(guò)室內(nèi)培養(yǎng)條件的初篩,為田間適用條件研究奠定基礎(chǔ)。以期為煙蚜蟲(chóng)霉菌的研究與開(kāi)發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)和技術(shù)參考。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)地點(diǎn)與材料
1.1.1 試驗(yàn)地點(diǎn) 貴州大學(xué)農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全實(shí)驗(yàn)室,貴州大學(xué)作物保護(hù)研究所。
1.1.2 供試材料 供試煙草:畢納1號(hào),2015—2016年栽培于貴州大學(xué)作物保護(hù)研究所試驗(yàn)溫棚內(nèi);供試煙蚜:當(dāng)年培育于畢納1號(hào)煙葉上的健康煙蚜。
1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
1.2.1 蟲(chóng)霉菌采集與分離 蟲(chóng)霉菌采集:分別從貴州省畢節(jié)、遵義、六盤(pán)水、安順和黔西南煙區(qū)采集受蟲(chóng)霉菌感染的煙蚜,其特征為已死煙蚜的蟲(chóng)尸上長(zhǎng)有菌絲,顏色一般為白色、灰色、黑色和黃色。蟲(chóng)霉菌分離:將受感染的煙蚜粘在含有PDA的培養(yǎng)皿蓋內(nèi)中央,將培養(yǎng)皿置于28 ℃恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)7 d,待PDA上長(zhǎng)出菌落后,根據(jù)顏色和長(zhǎng)勢(shì)不同,將菌株進(jìn)行純化培養(yǎng)。
1.2.2 菌懸液制作 將純化后的菌株挑到PDA平板上置于25 ℃恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)7 d,用打孔器取0.5 cm菌餅至含有150 mL不加瓊脂的PD液體培養(yǎng)基的三角瓶?jī)?nèi),將三角瓶置于25 ℃恒溫震蕩箱內(nèi)培養(yǎng)5 d備用。
1.2.3 優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌的篩選 挑30頭大小相似的健康無(wú)翅煙蚜置于15 cm×15 cm的煙葉背面,將煙葉置于培養(yǎng)皿內(nèi)保濕培養(yǎng)。將菌懸液用紗布過(guò)濾掉菌絲后,噴施于煙葉和蚜蟲(chóng)體上,噴至煙葉滴水。每個(gè)處理3次重復(fù),并設(shè)置CK對(duì)照(噴施無(wú)菌水)。觀察3 d和7 d后煙蚜蟲(chóng)尸是否長(zhǎng)出霉菌來(lái)判斷是否被感染(正常死亡的煙蚜,后期蟲(chóng)尸變黑色干扁,無(wú)霉菌)。從感染的蟲(chóng)尸中按照步驟1.2.1進(jìn)行霉菌分離,確認(rèn)感染前施用的菌株與感染后分離所得的菌株是否一致。
對(duì)具有感染作用的菌株進(jìn)行感染力測(cè)定:在室內(nèi)盆栽煙苗,待5葉時(shí)將30頭大小相似的健康無(wú)翅煙蚜接到煙葉背部,室溫下培育15 d。在將具有感染作用菌株菌懸液用紗布過(guò)濾掉菌絲后,噴施于煙葉和蚜蟲(chóng)體上,噴至煙葉滴水。每個(gè)處理3次重復(fù),并設(shè)置CK對(duì)照(噴施無(wú)菌水)。調(diào)查7 d、11 d和15 d后煙蚜的感染率。
感染率=感染蟲(chóng)口數(shù)/蟲(chóng)口總數(shù)×100%
1.2.4 蟲(chóng)霉菌的鑒定 采用Biomiga公司的Fungle gDNA Kit提取試劑盒提取DNA,選用ITS4/ITS5引物進(jìn)行ITS基因片段擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行序列測(cè)定,并將獲得的序列在NCBI中BLAST軟件進(jìn)行同源性比對(duì)。
1.2.5 蟲(chóng)霉菌適宜培養(yǎng)基的篩選 用表1中的培養(yǎng)基在28 ℃下對(duì)篩選得出的優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌進(jìn)行培養(yǎng),每種培養(yǎng)基設(shè)3次重復(fù),用“十字交叉法”每隔24 h測(cè)量蟲(chóng)霉菌菌落直徑,并計(jì)算菌絲生長(zhǎng)速度。
生長(zhǎng)速度(cm/h)=菌落直徑(cm)/培養(yǎng)時(shí)間(h)
1.2.6 蟲(chóng)霉菌適宜溫度條件的篩選 用PDA培養(yǎng)基在10、15、20、25、30、35 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中對(duì)蟲(chóng)霉菌進(jìn)行培養(yǎng)。每種溫度條件設(shè)3次重復(fù),并每隔24 h測(cè)量蟲(chóng)霉菌菌落直徑,計(jì)算菌絲生長(zhǎng)速度。
1.2.7 蟲(chóng)霉菌適宜光照條件的篩選 設(shè)置全光照、全黑暗、12 h光照12 h黑暗的光照條件且溫度為28 ℃恒溫的培養(yǎng)條件,用PDA培養(yǎng)基對(duì)蟲(chóng)霉菌進(jìn)行培養(yǎng)。每種光照條件設(shè)3次重復(fù),每隔24 h測(cè)量蟲(chóng)霉菌菌落直徑,計(jì)算菌絲生長(zhǎng)速度。
1.2.8 蟲(chóng)霉菌適宜pH條件的篩選 將蟲(chóng)霉菌置于PDA平板上培養(yǎng)7 d,配制pH值分別3、4、5、6、7、8、9、10的PDA液體培養(yǎng)基各150 mL于三角瓶?jī)?nèi),將平板上的蟲(chóng)霉菌用打孔器取直徑0.5 cm的菌餅(CK為無(wú)菌PDA小塊),將菌餅分別放入不同pH值的液體培養(yǎng)基中,每個(gè)pH處理設(shè)3次重復(fù),三角瓶封口后,置于28 ℃恒溫和150 r/min的震蕩箱中培養(yǎng)5 d。5 d后,將三角瓶?jī)?nèi)的菌液用紗布進(jìn)行過(guò)濾,后將裝有濾渣的紗布置于80 ℃的烘箱內(nèi)烘干8 h,取出烘干后帶有濾渣的紗布進(jìn)行稱量,計(jì)算出平均菌株干物質(zhì)重量。
1.3 數(shù)據(jù)分析
采用Microsoft Excel 2007和Dps 7.05數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,采用Duncans新復(fù)極差法進(jìn)行差異顯著性分析。
2 結(jié) 果
2.1 蟲(chóng)霉菌的采集、分離與篩選
2015—2016年間從貴州省畢節(jié)市、遵義市、六盤(pán)水市、安順市和黔西南州煙區(qū)共采集得感染煙蚜標(biāo)本11個(gè),分離獲得真菌菌株16株,按照采集順序標(biāo)記為CM-1、CM-2、CM-3…CM-16。通過(guò)感染作用測(cè)定發(fā)現(xiàn)(表2),施用菌懸液3 d后僅有CM-4、CM-6、CM-9、CM-11和CM-15具有感染作用,7 d后CM-4、CM-5、CM-6、CM-9、CM-11、CM-14和CM-15等7株菌株對(duì)煙蚜具有感染作用,其他菌株均無(wú)感染作用。
將具有感染作用的7株菌株進(jìn)行感染力測(cè)定。
結(jié)果如表3所示,隨施用時(shí)間的延長(zhǎng),各菌株處理對(duì)煙蚜的感染率不斷增大。施用菌懸液7 d后,所 有菌株對(duì)煙蚜的感染率均大于15%,其中菌株 CM-11的感染率達(dá)到22.62%。11 d后菌株CM-11 的感染率達(dá)到56.15%,高于其他菌株處理,菌株 CM-15次之,達(dá)52.33%,其次為CM-4為51.34%, 該3株菌株感染率顯著高于其他處理。15 d菌株 CM-15、CM-11和CM-4對(duì)煙蚜的感染率分別達(dá)到 了72.05%、69.80%和68.07%,均顯著高于其他菌 株,且同CK相比差異極顯著。試驗(yàn)結(jié)果表明,菌株CM-4、CM-11和CM-15為感染力較強(qiáng),是具有較高生防潛力的優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌。
2.2 優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌的鑒定
蟲(chóng)霉菌CM-4、CM-11和CM-15在PDA平板上的菌落形態(tài)分別如圖1A、圖1B和圖1C所示。CM-4
菌絲體呈金黃色,培養(yǎng)基因菌體產(chǎn)生滲出物而變?yōu)樽霞t色,菌落背面呈暗紫色,如圖1D所示,其孢子呈舟形、紡錘形或卵形,灰褐色,大小為9~12 μm×
5~6.5 μm;CM-11菌絲緊密,呈乳白色,背面呈米黃色(圖1E),經(jīng)過(guò)多種不同條件培養(yǎng),均未發(fā)現(xiàn)該菌株產(chǎn)孢;CM-15菌絲棉絮狀,褐色,孢子球形、近球形或卵形(圖1F),直徑3.5~6 μm,為無(wú)色或淺灰色。
將序列測(cè)定所獲得的序列與GenBank中已有序列進(jìn)行同源性比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn),CM-4與金色毛殼菌(Chaetomium aureum)的同源性為100%,CM-11與漸狹蠟蚧菌(Lecdanicillium attenuatum)同源性為99%,CM-15與少根根霉( Rhizopus arrhizus)同源性為100%。根據(jù)病菌形態(tài)學(xué)鑒定以及該 DNA序列在NCBI進(jìn)行同源性對(duì)比雙重結(jié)果,最終確認(rèn)優(yōu)勢(shì)蟲(chóng)霉菌菌株CM-4為金色毛殼菌,CM-11為漸狹蠟蚧菌,CM-15為少根根霉菌或稱米根霉菌。
2.3 不同培養(yǎng)基對(duì)蟲(chóng)霉菌生長(zhǎng)的影響
由圖2可以看出,菌株CM-15在各個(gè)培養(yǎng)基中的生長(zhǎng)速度明顯高于菌株CM-4和CM-11。不同蟲(chóng)霉菌在不同培養(yǎng)基中的生長(zhǎng)速度均不相同,其中菌株CM-4在培養(yǎng)基A中的生長(zhǎng)速度顯著高于其他培養(yǎng)基,達(dá)到0.032 9 cm/h;菌株CM-11在培養(yǎng)基E中的生長(zhǎng)速度0.018 1 cm/h,高于其他培養(yǎng)基處理;菌株CM-15適應(yīng)力較強(qiáng),在所有供試培養(yǎng)基中均保持高速生長(zhǎng),其中在培養(yǎng)基E中的生長(zhǎng)速度最大,達(dá)0.354 2 cm/h。試驗(yàn)表明,在供試的7種培養(yǎng)基中,菌株CM-15的生長(zhǎng)力較強(qiáng),而菌株CM-11較弱。適宜CM-4生長(zhǎng)的培養(yǎng)基為培養(yǎng)基A,而適宜CM-11和CM-15生長(zhǎng)培養(yǎng)基為培養(yǎng)基E。
2.4 不同溫度對(duì)蟲(chóng)霉菌生長(zhǎng)的影響
不同溫度條件下蟲(chóng)霉菌的生長(zhǎng)速度如圖3所示,菌株CM-4在10 ℃時(shí)生長(zhǎng)停止,當(dāng)溫度為25 ℃時(shí)
生長(zhǎng)速度達(dá)到最大,達(dá)0.018 2 cm/h;菌株CM-11在10~35 ℃條件下均能生長(zhǎng),在溫度為25 ℃時(shí)生長(zhǎng)速度達(dá)0.010 6 cm/h,在20 ℃時(shí)達(dá)0.009 6 cm/h,兩者均顯著高于其他溫度處理;菌株CM-15在10~35 ℃條件下生長(zhǎng)速度出現(xiàn)2次峰,第1次出現(xiàn)在15 ℃時(shí),第2次在30 ℃,該菌株在30 ℃條件下生長(zhǎng)速度達(dá)到最大的0.391 5 cm/h,其次為25 ℃時(shí)的0.298 3 cm/h。結(jié)果表明,蟲(chóng)霉菌菌株CM-4、CM-11和CM-15適宜培養(yǎng)的溫度條件分別為25~30 ℃、20~25 ℃和25~30 ℃。
2.5 不同光照條件對(duì)蟲(chóng)霉菌生長(zhǎng)的影響
如表4所示,不同光照條件下蟲(chóng)霉菌的生長(zhǎng)具有差異。其中,菌株CM-4和CM-11在12 h光照12 h黑暗下生長(zhǎng)速度達(dá)到最大分別為0.020 7 cm/h 和0.009 0 cm/h,但菌株CM-4和CM-11在不同光照條件下的生長(zhǎng)速度差異不顯著,表明CM-4和CM-11的光照條件適應(yīng)能力較強(qiáng);菌株CM-15在不同光照條件下的生長(zhǎng)速度差異顯著,其在全黑暗條件下生長(zhǎng)速度最大,達(dá)0.281 2 cm/h。由此可見(jiàn),菌株CM-4和CM-11可適應(yīng)不同光照條件下培養(yǎng),而菌株CM-15適宜在全黑暗條件下培養(yǎng)。
2.6 不同pH對(duì)蟲(chóng)霉菌生長(zhǎng)的影響
如圖4所示,菌株CM-4和CM-11在pH值為7時(shí),產(chǎn)生干物質(zhì)分別達(dá)到最大,其次為pH 6時(shí),且二者均顯著高于其他pH處理,其中CM-11在pH為3時(shí)停止生長(zhǎng)。表明pH 6~7是菌株CM-4和CM-11的適宜培養(yǎng)酸堿條件。CM-15在pH 5時(shí)干物質(zhì)達(dá)到最大,達(dá)0.39 g,其次為6時(shí)的0.37 g,均顯著高于其他pH條件。綜上表明菌株CM-4和CM-11喜好酸堿度為中偏酸的環(huán)境條件;CM-15適宜在偏酸條件下培養(yǎng)。
3 討 論
毛殼菌屬(Chaetomium sp.)真菌中,球毛殼菌(Chaetomium globosum)對(duì)蚜蟲(chóng)等多種害蟲(chóng)具有防控作用[27],而金色毛殼菌(Chaetomium aureum)此前多報(bào)道用于病害防控,其與辣椒疫霉病、灰霉病和黃瓜灰霉病有拮抗作用[28-30],而用于煙蚜防治尚無(wú)相關(guān)報(bào)道;KIM等[31]曾從蚜蟲(chóng)蟲(chóng)體中分離獲得漸狹蠟蚧菌(Lecdanicillium attenuatum),并發(fā)現(xiàn)其對(duì)煙蚜、棉蚜等具有寄生致死作用,本試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證該菌株的致病力,此外,漸狹蠟蚧菌還可用于防控柑橘粉虱[32]、茶小綠葉蟬[33]和南方根結(jié)線蟲(chóng)[34];少根根霉菌(Rhizopus arrhizus)作為醫(yī)學(xué)病原菌,可引起人體多種皮膚病[35],因此其安全性尚需進(jìn)一步探究。
關(guān)于蟲(chóng)霉菌對(duì)蚜蟲(chóng)的致死機(jī)理,臧建成[36]認(rèn)為暗孢耳霉(C.obscurus)通過(guò)菌絲侵入蚜蟲(chóng)體內(nèi),利用寄主體內(nèi)營(yíng)養(yǎng)進(jìn)行生長(zhǎng)繁殖所致;李武高[21]等報(bào)道弗氏新接霉通過(guò)體壁穿透和機(jī)械壓力的方式殺死蚜蟲(chóng);GURULINGAPPA等[37]發(fā)現(xiàn)蠟蚧輪枝菌(Lecanicillium lecanii)菌絲體能產(chǎn)生對(duì)棉蚜具有毒力作用的乙酸乙酯和甲醇等毒素。GLISZCZYNSK等[38]認(rèn)為將生防菌基因進(jìn)行轉(zhuǎn)化可增強(qiáng)其致病力。本試驗(yàn)尚未對(duì)篩選出的3株致病霉菌進(jìn)行相關(guān)致病因子探索。
生防蟲(chóng)霉菌使用技術(shù)的另一難點(diǎn)在于菌株的田間條件適應(yīng)性能,一般自然條件適應(yīng)力較強(qiáng)的菌株更具有開(kāi)發(fā)利用前景[39-40]。除菌株天然的適應(yīng)力外,還可通過(guò)人工馴化、基因轉(zhuǎn)化[38]或定殖于植物中[41]等措施來(lái)提高菌株適應(yīng)力,本試驗(yàn)對(duì)所獲得的3株蟲(chóng)霉菌進(jìn)行培養(yǎng)條件初篩,可為菌株適應(yīng)力及田間施用條件研究奠定基礎(chǔ),但要確定培養(yǎng)基、溫度、光照、pH等條件的互作關(guān)系,明確適宜的培養(yǎng)條件,仍需要做進(jìn)一步的互作試驗(yàn)探究。
4 結(jié) 論
試驗(yàn)篩選獲得了金色毛殼菌(Chaetomium aureum)、漸狹蠟蚧菌(Lecdanicillium attenuatum)和少根根霉菌 (Rhizopus arrhizus) 3株對(duì)煙蚜具有較強(qiáng)致病力的生防蟲(chóng)霉菌株,其中金色毛殼菌和少根根霉對(duì)煙蚜的感染作用屬首次報(bào)道,豐富了煙蚜生防菌資源。
通過(guò)初步篩選分別獲得了適宜3株菌株生長(zhǎng)的溫度、pH和光照條件,為該菌株培養(yǎng)保存和田間施用技術(shù)研究奠定基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn)
[1] 藺忠龍,郭怡卿,浦勇,等. 病蟲(chóng)害生物防治技術(shù)最新研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)煙草學(xué)報(bào),2011,17(2):90-94.
LIN Z L, GUO Y Q, PU Y, et al. Recent advances in research in biological control of tobacco diseases and
pests[J]. Acta Tabacaria Sinica, 2011, 17(2): 90-94.
[2] 陳杰,付繼剛,楊天沛,等. 我國(guó)煙蚜防治研究進(jìn)展[J].
作物雜志,2015(6):21-26.
CHEN J, FU J G, YANG T P, et al. The research progress of Myzus Persicae control in China[J]. Crops, 2015(6): 21-26.
[3] 李勇,何林. 煙蚜抗藥性機(jī)制的研究進(jìn)展[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2016(7):44-48.
LI Y, HE L. Advances in insecticide resistance mechanism of Myzus persicae[J]. Guizhou Agricultural Sciences, 2016(7): 44-48.
[4] 吳興富,鄧建華,王德俊,等. 農(nóng)藥連用對(duì)煙蚜抗藥性發(fā)展的影響[J]. 中國(guó)煙草學(xué)報(bào),2004(5):42-46.
WU X F, DENG J H, WANG D J, et al. The effct of continually spraying pesticides on the development of resistance in Myzus nicotianae (Blackman)[J]. Acta Tabacaria Sinica, 2004(5): 42-46.
[5] 張玉玲,朱艱,楊程,等. 生物防治在煙草病蟲(chóng)害防治中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 中國(guó)煙草科學(xué),2009,30(4):81-85.
ZHANG Y L, ZHU J, YANG C, et al. Advance in Biological Control to Tobacco Diseases and Pests[J]. Chinese Tobacco Science, 2009, 30(4): 81-85.
[6] 董志堅(jiān),程道全,董順德,等. 植物源農(nóng)藥在煙草病蟲(chóng)害防治上的研究與應(yīng)用[J]. 中國(guó)煙草學(xué)報(bào),2004(4):45-50.
DONG Z J, CHENG D Q, DONG S D, et al. Research and application of plant-based pesticides to control tobacco diseases and pests[J]. Acta Tabacaria Sinica, 2004(4): 45-50.
[7] FAGAN L L, MCLACHLAN A, TILL C M, et al. Synergy between chemical and biological control in the IPM of currant-lettuce aphid (Nasonovia ribisnigri) in Canterbury, New Zealand[J]. Bulletin of Entomological Research, 2009(2): 21-23.
[8] WEI J N, LI T F, KUANG R P, et al. Mass rearing of Aphidius gifuensis (Hymenoptera: Aphididae) for biological control of Myzus persicae (Homoptera: Aphididae)[J]. Biocontrol Science and Technology, 2003(1): 87-97.
[9] 李增智. 我國(guó)利用真菌防治害蟲(chóng)的歷史、進(jìn)展及現(xiàn)狀[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2015,31(5):699-711.
LI Z Z. History, progress and current status of the application of fungi against pest insects in China[J]. Chinese Journal of Biological Control, 2015, 31(5): 699-711.
[10] AKMAL M, FREED S, MALIK M N, et al. Efficacy of Beauveria bassiana (Deuteromycotina: Hypomycetes) against different aphid species under laboratory conditions[J]. Pakistan Journal of Zoology, 2013, 45(1): 71-78.
[11] BAYISSA W, EKESI S, MOHAMED S A, et al. Selection of fungal isolates for virulence against three aphid pest species of crucifers and okra[J]. Journal of Pest Science, 2017, 90: 355-368.
[12] YUN H G, KIM D J, GWAK W S, et al. Entomopathogenic fungi as dual control agents against both the Pest Myzus persicae and phytopathogen Botrytis cinerea[J]. Mycobiology, 2017, 45(3): 192-198.
[13] SHAN L T, FENG M G. Evaluation of the biocontrol potential of various Metarhizium isolates against green peach aphid Myzus persicae (Homoptera: Aphididae)[J]. Pest Management Science, 2010, 66: 669-675.
[14] JANDRICIC S E, FILOTAS M, SANDERSON J P, et al. Pathogenicity of conidia-based preparations of entomopathogenic fungi against the greenhouse pest aphids Myzus persicae, Aphis gossypii, and Aulacorthum solani (Hemiptera: Aphididae)[J]. Journal of Invertebrate Pathology, 2014, 118(4): 34-36.
[15] HESKETH H, ALDERSON P G, PYE B J, et al. The development and multiple uses of a standardised bioassay method to select hypocrealean fungi for biological control of aphids[J]. Biological Control, 2008, 46: 242-255.
[16] ZHAO S S, LI Y Y, YAN W, et al. Chaetomium globosum CDW7, a potential biological control strain and its antifungal metabolites[J]. FEMS Microbiology Letters, 2017, 364(3): 287-292.
[17] QI G, LAN N, MA X, et al. Controlling Myzus persicae with recombinant endophytic fungi Chaetomium globosum expressing Pinellia ternate agglutinin using recombinant endophytic fungi to control aphids[J]. Journal of Applied Microbiology, 2011, 110(5): 1314-1322.
[18] DIAZ B Z, OGGERIN M, CLAUDIA C, et al. Characterization and virulence of Lecanicillium lecanii against different aphid species[J]. BioControl, 2009, 54: 825-835.
[19] DOWN R E, ANDREW G S, CUTHBERTSON, et al. Dissemination of the entomopathogenic fungi, Lecanicillium longisporum and L. muscarium, by the predatory bug, Orius laevigatus, to provide concurrent control of Myzus persicae, Frankliniella occidentalis and Bemisia tabaci[J]. Biological Control, 2009, 50: 172-178.
[20] RODITAKIS E, COUZIN I D, FRANKS N R, et al. Effects of Lecanicillium longisporum infection on the behaviour of the green peach aphid Myzus persicae[J]. Journal of Insect Physiology, 2008, 54: 128-136.
[21] 李武高,趙惠燕,李隨院,等. 殺蟲(chóng)真菌——弗氏新接霉蚜霉菌研究進(jìn)展[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究,2003(3):141-144,151.
LI W G, ZHAO H Y, LI S Y, et al. Advance in the study on entomogenous fungi——Neozygites fresenii (Nowakowski)[J]. Agricultural Research in the Arid Areas, 2003(3): 141-144, 151.
[22] 劉明暉,陳家驊,張玉珍,等. 耳霉菌分生孢子對(duì)煙草蚜蟲(chóng)的毒力研究[J]. 福建農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),1991(2):150-152.
LIU M H, CHEN J H, ZHANG Y Z, et al. The conditional toxicity to the tobacco aphid of the conidiobolus[J]. Journal of Fujian Agricultural College, 1991(2): 150-152.
[23] VU V H, HONG S I, KIM K. Selection of entomopathogenic fungi for aphid control[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2007, 104(6): 498-505.
[24] 鄧建華,吳興富,莊輝,等. 兩種擬青霉對(duì)煙蚜感染作用試驗(yàn)[J]. 煙草科技,2005(3):46-48.
DENG J H, WU X F, ZHUANG H, et al. Infection Effect of Paecilomyces sp. on Myzus nicotianae (Blackman)[J]. Tobacco Science &Technology, 2005(3): 46-48.
[25] 楊斌,李桐森,王曉波,等. 2種擬青霉代謝產(chǎn)物對(duì)煙蚜乙酰膽堿酯酶和羧酸酯酶的影響[J]. 云南大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2005(2):166-169,175.
YANG B, LI T S, WANG X B, et al. Impacts of metabolites from Paecilomyces farinosou and P. fumosoroseus on acetyicholinesterase and carboxylesterase of tobacco aphides[J]. Journal of Yunnan University (Natural Sciences Edition), 2005(2): 166-169, 175.
[26] 楊斌,王曉波,何美軍. 玫煙色擬青霉代謝產(chǎn)物對(duì)煙蚜的毒殺活性[J]. 西南林學(xué)院學(xué)報(bào),2004(4):38-41.
YANG B, WANG X B, HE M J. Insecticidal activity of metabolites produced by Paecilomyces fumosoroseus to tobacco aphides[J]. Journal of Southwest Forestry University, 2004(4): 38-41.
[27] ZHOU W Q, STARR J L, KRUMM J L, et al. The fungal endophyte Chaetomium globosum negatively affects both above- and belowground herbivores in cotton[J]. Fems Microbiology Ecology, 2016, 92(10): 158.
[28] 滕懷麗. 金色毛殼菌HTC生物學(xué)特性研究及其抑菌活性檢測(cè)[D]. 泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
TENG H L. Research on the bionomics of Chaetomium aureum HTC and detection on its antibacterial activity[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2014.
[29] 焦晨瀟. 金色毛殼菌HTC菌株及其發(fā)酵液理化性質(zhì)、安全性和防病作用初探[D]. 泰安,山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2015.
JIAO C X. Physic-chemical characteristic, safety and antifungal activity of fermentation liquid of Chaetomium aureum strain HTC[D]. Tai'an: Shandong Agricultural University, 2015.
[30] 劉永亮. 辣椒疫霉拮抗真菌毛殼菌和青霉菌的分離鑒定及其生防潛力的研究[D]. 泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.
LIU Y L. Isolation and identification of fungal antagonist Cheatomium and Pemcillium against Phytophthora capsici and studies on their potential of biocontrol[D]. Tai'an: Shandong Agricultural University, 2013.
[31] KIM J J, GOETTEL M S, GILLESPIE D R. Potential of Lecanicillium species for dual microbial control of aphids and the cucumber powdery mildew fungus, Sphaerotheca fuliginea[J]. Biological Control, 2007, 40: 327-332.
[32] 丁莉莉,羅忍,潘琦,等. 柑桔粉虱寄生性真菌漸狹蠟蚧菌TN002菌株培養(yǎng)條件探究[J]. 中國(guó)南方果樹(shù),2017,46(2):58-62.
DING L L, LUO R, PAN Q, et al. Study on the culture conditions of Lecdanicillium attenuatum TN002, a parasitic fungus of Dialeurodes citri[J]. South China Fruits, 2017, 46(2): 58-62.
[33] 周葉鳴,鄒曉,瞿嬌嬌,等. 一種寄生茶小綠葉蟬蠟蚧菌的鑒定及產(chǎn)孢條件優(yōu)化[J]. 微生物學(xué)通報(bào),2016,43(5):935-941.
ZHOU Y M, ZOU X, QU J J, et al. Identification of a parasitic Lecanicillium of tea lesser leafhopper and optimization of sporulation conditions[J]. Microbiology China, 2016, 43(2): 935-941.
[34] 趙洋,陳德鑫,黃化剛,等. 漸狹蠟蚧菌Lecanicillium attenuatum產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的活性及對(duì)南方根結(jié)線蟲(chóng)卵孵化的抑制作用[J]. 植物保護(hù)學(xué)報(bào),2014,41(5):547-554.
ZHAO Y, CHEN D X, HUANG H G, et al. Inhibition of chitinase-producing fungus Lecanicillium attenuatum on egg-hatching of root-knot nematode Meloidogyne incognita[J]. Journal of Plant Protection, 2014, 41(5): 547-554.
[35] 張思平,劉蔚,胡白. 少根根霉所致皮膚毛霉病3例[J]. 臨床皮膚科雜志,2012,41(3):163-165.
ZHANG S P, LIU W, HU B. Cutaneous mucormycosis due to Rhizopus arrhizus: report 3 cases[J]. Journal of Clinical Dermatology, 2012, 41(3): 163-165.
[36] 臧建成. 暗孢耳霉菌生物學(xué)特性及對(duì)甘藍(lán)蚜致病機(jī)理的研究[D]. 蘭州,甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué),2005.
ZANG J C. Studied on the biological character and the pathogenic mechanisms to Brevicorvne brassicae of Conidiobolus obscurus[D]. Lanzhou: Gansu Agricultural University, 2005.
[37] GURULINGAPPA P, MCGEE P A, SWORD G. Endophytic Lecanicillium lecanii and Beauveria bassiana reduce the survival and fecundity of Aphis gossypii following contact with conidia and secondary metabolites[J]. Crop Protection, 2011, 30: 349-353.
[38] GLISZCZYNSK A, GLADKOWSK W, DANCEWICZ K, et al. Transformation of β-damascone to (+)-(S)-4-hydroxy-β-damascone by fungal strains and its evaluation as a potential insecticide against aphids Myzus persicae and lesser mealworm Alphitobius diaperinus Panzer[J]. Catalysis Communications, 2016, 80: 39-43.
[39] 李凱,袁鶴. 植物病害生物防治概述[J]. 山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2012(7):807-810.
LI K, YUAN H. Review on biological control of plant diseases[J]. Journal of Shanxi Agricultural Sciences, 2012(7): 807-810.
[40] 薛登民,劉安典,張瓊瑤,等. 流行性蚜霉菌的安全性研究[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),1989(1):81-87.
XUE D M, LIU A D, ZHANG Q Y, et al. Studies of safety of Entomophthora fresenii[J]. Journal of Northwest A&F University(Natural Science Edition), 1989(1): 81-87.
[41] GURULINGAPPA P, SWORD G A, MURDOCH G, et al. Colonization of crop plants by fungal entomopathogens and their effects on two insect pests when in planta[J]. Biological Control, 2010, 55: 34-41.