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太行青山羊附睪頭細胞系的建立

2018-05-25 06:10邰苗苗郭永娟任有蛇張春香
中國草食動物科學 2018年2期
關鍵詞:傳代附睪原代

邰苗苗,郭永娟,任有蛇,張春香

(山西農業(yè)大學動物科技學院,太谷 030801)

上世紀動物細胞培養(yǎng)開始出現,現今已經成為醫(yī)學及生物學中廣泛采用的技術方法之一。對于附睪細胞的培養(yǎng)是在上世紀90年代初才逐漸被重視的[1]。目前,附睪細胞原代培養(yǎng)的方法主要有兩種:一種方法是將無菌附睪剔除脂肪后,將組織塊用胰蛋白酶消化,形成細胞團后,重懸于含5%胎牛血清的培養(yǎng)液[2];另外一種方法是胡向農等[1]報道的方法。無菌取出大鼠附睪,用眼科剪將組織剪成1~2mm3的小塊,用胰蛋白酶和膠原酶I消化后,將收集后的細胞重懸于含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中,在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。然而,關于山羊附睪頭細胞培養(yǎng)的研究報道還較少。因此,本試驗擬在上述原代附睪細胞培養(yǎng)方法的基礎上加以改進,實現對太行青山羊附睪頭細胞原代培養(yǎng)和凍存,為山羊附睪特異表達蛋白功能的研究提供第一手材料。

1 材料與方法

1.1 材料

本試驗選取15日齡太行青山羊公羔附睪頭組織作為試驗材料,試驗動物選自山西農業(yè)大學動物科技學院試驗基地。

1.2 主要試劑

細胞培養(yǎng)基DMEM/F12、無菌PBS、姬姆薩染液、胰蛋白酶購自博士德生物公司。Guava ViaCount Reagent、GuavaInstrument Cleaning Fluid購自北京強欣博瑞生物技術有限公司。秋水仙素購自TaKaRa公司。胎牛血清(Gibco)、膠原酶I及青霉素鏈霉素混合液(雙抗)購自北京博雅宏興科技發(fā)展有限公司。KCl、NaCl、冰醋酸、甲醇等常用試劑均購自康為世紀生物科技有限公司。二甲基亞砜(DMSO)購自北京索萊寶科技有限公司。

1.3 山羊附睪頭組織的獲取

選取15日齡公山羊,剪去陰囊周圍羊毛,消毒陰囊及腹部皮膚,無菌去勢,取出附睪和睪丸組織,用含雙抗的溫熱無菌PBS沖洗,然后用無菌剪刀取下附睪頭部組織并浸泡入37℃預熱的含雙抗無菌PBS中,盡快帶回實驗室。

1.4 附睪頭細胞原代培養(yǎng)

采用酶消化培養(yǎng)法。用37℃預熱的含雙抗無菌PBS沖洗附睪頭組織,去除被膜及血管,洗凈血污。然后用眼科剪將附睪頭組織剪成1mm3大小,移入離心管中,加入0.25%的胰蛋白酶5mL,37℃、80 r/min振蕩30min。終止消化后離心5min,吸去上清,留沉淀。加入2mg/mL的膠原酶I3mL,37℃、80 r/min振蕩60min。用200目細胞篩過濾,再用無血清細胞培養(yǎng)液洗滌2~3次,吸去上清。用0.22μm濾器過濾的含血清細胞培養(yǎng)液(88%DMEM/F12,10%胎牛血清,2%雙抗)重懸細胞,移入25 cm2培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。之后,在顯微鏡下觀察細胞生長狀況并根據細胞的生長代謝情況更換培養(yǎng)液。

1.5 附睪頭細胞傳代和凍存

圖1 山羊附睪頭細胞原代培養(yǎng)生長情況(100×)

當培養(yǎng)瓶中細胞匯合達到90%以上后棄掉舊液,用PBS洗滌2次;加入37℃預熱的0.25%胰蛋白酶2mL,37℃消化3~5min,輕輕拍打,顯微鏡下觀察,待細胞變圓、脫壁時,立即用含血清培養(yǎng)基終止消化。將細胞懸液吸出放入離心管中,離心去上清。傳代的細胞加入含血清培養(yǎng)液重懸細胞,分別接種至2個培養(yǎng)瓶中,放入細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng);凍存的細胞加入1mL細胞冷凍保護液(70%DMEM/F12,20%胎牛血清,10%DMSO)重懸細胞后,4℃放置 40min,-20℃放置 90min,-80℃放置過夜,投入液氮中。

1.6 附睪頭細胞復蘇

細胞復蘇方法參照劉海濤等[3]所報道的棄去凍存液后換上新鮮的完全培養(yǎng)基。此后,根據細胞的生長代謝情況更換培養(yǎng)液,顯微鏡下觀察細胞生長狀況。

1.7 附睪頭細胞生物學特性觀察

1.7.1 形態(tài)學觀察 每隔1天觀察并記錄附睪頭上皮細胞生長狀況。

1.7.2 生長曲線繪制 用傳至第3代的附睪頭細胞進行生長曲線的繪制。取附睪頭細胞,用Guava EasyCyte進行計數,調整細胞濃度為1×105個/mL,接種于24孔培養(yǎng)板,每孔約50 000個細胞,放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每隔24小時用胰蛋白酶隨機消化收集3個孔中的細胞,取細胞懸液50μL,加入450μLGuava ViaCountReagent,混勻,室溫避光10min,用Guava EasyCyte進行計數,求平均值,連續(xù)記錄8 d。依據試驗數據,繪制生長曲線。24孔板其余孔每2天更換培養(yǎng)液一次。

1.7.3 染色體分析 按照常規(guī)方法進行染色體制片,姬姆薩染液染色后自然干燥,封片,油鏡下觀察并拍照。

2 結果與分析

2.1 山羊附睪頭細胞原代培養(yǎng)結果

組織塊消化后,細胞密度較大,細胞剛從組織塊中消化分離出,體積較小,形態(tài)多呈圓形。原代培養(yǎng)1 d后,顯微鏡下觀察,還存在部分細胞團,沒有完全消化,細胞貼于培養(yǎng)瓶底壁,且均處于生長狀態(tài)。培養(yǎng)2 d后,細胞生長狀態(tài)很好,融合度達到90%以上,可以看出還有部分細胞團(圖1)。

2.2 傳代培養(yǎng)結果

圖2 山羊附睪頭細胞傳代培養(yǎng)生長情況(100×)

附睪頭細胞經過連續(xù)傳代后,細胞生長狀態(tài)仍良好,下圖分別為原代細胞傳至第1代和5代后第2天的細胞形態(tài),可以看出細胞能夠穩(wěn)定地傳代,大的細胞團明顯消失,傳代后的細胞能夠保持原有的細胞形態(tài),維持之前的生長速度,2 d左右細胞基本匯合。

2.3 山羊附睪頭細胞復蘇培養(yǎng)結果

圖3 山羊附睪頭細胞復蘇后生長情況(100×)

山羊附睪頭細胞經過凍存、復蘇后,細胞生長狀態(tài)仍良好,細胞形態(tài)與原代細胞形態(tài)相似,3 d左右細胞基本匯合(圖3)。

2.4 山羊附睪頭細胞生長曲線

根據每次記錄的細胞數量,以培養(yǎng)天數為橫坐標,細胞數量為縱坐標,繪制山羊附睪頭細胞生長曲線(圖4)。細胞接種第1天,細胞數量低于初始接種數量;從第2~3天開始,細胞進入對數生長期;從第5天開始,細胞生長速度減慢;從第6天開始,細胞進入平臺期。結果表明,培養(yǎng)的山羊附睪頭細胞生長趨勢整體呈“S”型,符合細胞生長規(guī)律。

圖4 山羊附睪頭細胞生長曲線

2.5 染色體分析結果

對山羊附睪頭的傳代細胞進行染色體數目分析(圖5)。結果表明,山羊附睪頭細胞的染色體數目為2n=60,說明山羊附睪頭細胞經過傳代后染色體數目正常,細胞狀態(tài)良好。

圖5 山羊附睪頭細胞染色體(400×)

3 討論

附睪結構和功能分成若干段不同的區(qū)域性管腔環(huán)境,附睪在胎兒剛出生的時候是不成熟的,上皮細胞在出生后的一段時間內才能獲得完全分化的表型[4]。郭麗娜等[5]在對山羊附睪特異蛋白β防御素104a定位時發(fā)現,7日齡的山羊附睪頭上皮細胞未分化,而60日齡的上皮細胞開始出現明顯的分化,細胞呈桿柱狀,游離端出現少量短而粗的微纖毛,管腔增大。本試驗采用的15日齡的山羊附睪頭組織并未分化出上皮細胞,是以低柱狀細胞存在,故而沒有對細胞進行區(qū)分,保留了所有附睪頭組織的貼壁細胞。

動物細胞原代培養(yǎng)主要有組織塊貼壁法和胰蛋白酶消化法[6]。范曉梅等[7]在對絨山羊附睪上皮細胞培養(yǎng)的過程中發(fā)現,兩種方法得到的細胞形態(tài)無差別,界限清晰,具有良好的分化能力。而組織塊消化法建立細胞系周期較長,相同時間內獲得的細胞數少于胰蛋白酶消化法。采用胰蛋白酶消化法改進后對原代細胞進行獲取,采用37℃恒溫振蕩、分階段胰蛋白酶和I型膠原酶消化法,既減少了傳統(tǒng)酶消化法每隔一段時間需要進行震蕩的步驟,又避免了酶消化時間過長對細胞造成的傷害,提高了酶的消化率和細胞的產出量[8]。胡向農等[1]和范曉梅等[7]建立附睪上皮細胞系時使用的基礎培養(yǎng)基為RPMI1640培養(yǎng)基,但由于RPMI1640不含無機鹽和次黃嘌呤等物質,可能會導致細胞生長緩慢[9],故本研究選用了營養(yǎng)豐富的DMEM/F12培養(yǎng)基作為細胞基礎培養(yǎng)基,試驗結果證明細胞生長狀態(tài)良好,2~3 d基本融合。原代細胞培養(yǎng)最關鍵的部分就是如何避免細胞污染:從手術去勢開始,所有使用的器械均高溫高壓滅菌后再使用,采取附睪頭組織的刀片和剪刀均經過無菌處理,提前準備好添加了青鏈霉素的溫熱PBS沖洗組織,培養(yǎng)基中也添加了青鏈霉素混合液,組織塊的剪切和細胞過濾等試驗均在超凈臺操作,這樣可以確保每個環(huán)節(jié)都能夠減少細菌侵染細胞的機會,做到無菌培養(yǎng)。

一般的形態(tài)學觀察之外,本試驗還通過細胞連續(xù)傳代,凍存和復蘇,生長曲線測定以及細胞染色體分析等方面進行了細胞的生物學驗證,傳代細胞貼壁較快,呈“S”型曲線增長,復蘇后死細胞較少,能夠快速生長起來并且傳代,細胞的染色體數目正常,狀態(tài)良好,具有正常的生長速率和核型,呈現接觸抑制和錨定依賴性[2]。

4 結論

本研究成功建立了太行青山羊附睪頭細胞系,并對其進行了生長曲線測定和細胞染色體分析等生物學驗證。應用本研究所建立的太行青山羊附睪頭細胞培養(yǎng)體系可以在體外保持其原形態(tài)特征近1個月。表明,此研究所建立的方法適合太行青山羊附睪頭細胞的生長。

[1] 胡向農,張忠林,楊建軍.大鼠附睪上皮細胞的體外培養(yǎng)與研究[J].南京鐵道醫(yī)學院學報,1999(1):3-5.

[2] 石慧,李建遠.附睪上皮細胞體外培養(yǎng)模式綜述[J].中外醫(yī)學研究,2011(9):120-121.

[3] 劉海濤,舒端陽.動物細胞培養(yǎng)問題研究[J].實驗教學與儀器,2017(Z1):86-87.

[4] Breton S,Ruan Y C,Park Y J,etal.Regulation of epithelial function,differentiation,and remodeling in the epididymis[J].Asian JAndrol,2016,18(1):3-9.

[5] 郭麗娜,張國林,任有蛇,等.β防御素104a在不同日齡雄性山羊睪丸與附睪中的定位及表達特性[J].山西農業(yè)大學學報(自然科學版),2017(12):866-871.

[6] 馬紅.大白豬仔豬皮膚成纖維細胞系建立及生物學特征[J].華北農學報,2009(S1):96-98.

[7] 范曉梅,張通,栗瑞蘭,等.絨山羊附睪上皮細胞培養(yǎng)方法的建立及其生長特性[J].畜牧獸醫(yī)學報,2017(7):1212-1220.

[8] 楊森,馮付明,王銀輝.乳兔成骨細胞原代培養(yǎng)與鑒定:改良膠原酶與胰酶的分段消化[J].中國組織工程研究,2014(38):6129-6135.

[9] 陳東風,劉為紋,房殿春,等.人膽囊上皮細胞的分離、培養(yǎng)及鑒定[J].第三軍醫(yī)大學學報,2001(9):1109-1111.

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