鄭朝朝,劉云濤,李倬,鄒立宏,郁宏偉*
(1.瑞普(保定)生物藥業(yè)有限公司,河北保定071000;2.河北省獸醫(yī)生物技術(shù)工程技術(shù)研究中心,河北保定071000;3.吉林省進(jìn)出口檢驗(yàn)檢疫局,長(zhǎng)春130062)
豬瘟病毒和豬瘟疫苗效力檢驗(yàn)主要依靠兔體定型熱反應(yīng)方法(RID)[1],試驗(yàn)成本較高、操作繁瑣、試驗(yàn)周期較長(zhǎng),且受實(shí)驗(yàn)動(dòng)物個(gè)體差異和環(huán)境因素等多方面影響,檢測(cè)結(jié)果不夠準(zhǔn)確,造成疫苗成品質(zhì)量不穩(wěn)定[2-3],甚至免疫失敗。
相關(guān)文獻(xiàn)中有很多關(guān)于免疫熒光檢測(cè)法(FA)[4]、酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)[5-6]、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)法(PCR)[7]和實(shí)時(shí)熒光定量PCR法(Realtime PCR)[8-9]等檢測(cè)豬瘟活疫苗效力的報(bào)道[10],但都有各自的缺陷,如不能有效區(qū)分活病毒與失活病毒、重復(fù)性差、操作復(fù)雜等,最終未能全面推廣。本研究建立了一種快速、準(zhǔn)確、穩(wěn)定檢測(cè)豬瘟病毒含量及疫苗效力的間接免疫熒光法(IFA),以便能更加準(zhǔn)確評(píng)價(jià)豬瘟活疫苗效力和豬瘟半成品病毒含量,滿(mǎn)足規(guī)?;a(chǎn)的需求。
1.1 材料
1.1.1 試劑 豬瘟抗體陽(yáng)性血清(一抗),購(gòu)自中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,批號(hào)2009002;FITC標(biāo)記的兔抗豬熒光抗體(二抗),購(gòu)自SIGMA公司,批號(hào)2015002;甲醇、丙酮、PB、氯化鉀、氯化鈉等試劑,均為分析純,購(gòu)自北京益利化學(xué)試劑公司。
1.1.2 細(xì)胞 豬睪丸細(xì)胞(ST),由瑞普(保定)生物藥業(yè)有限公司種毒室提供。
1.1.3 樣品 瑞普(保定)生物藥業(yè)有限公司2013-2014年生產(chǎn)的豬瘟活疫苗成品20批、半成品90批。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞復(fù)蘇、培養(yǎng) 常規(guī)方法復(fù)蘇ST細(xì)胞,培養(yǎng)至細(xì)胞長(zhǎng)成良好單層后用0.25%胰酶消化分散,并用細(xì)胞生長(zhǎng)液重懸,接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,置于37℃,5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,備用。
1.2.2 效價(jià)檢測(cè)
1.2.2.1 兔體定型熱反應(yīng)檢測(cè) 按照國(guó)標(biāo)中豬瘟活疫苗效力檢驗(yàn)方法對(duì)被檢疫苗進(jìn)行稀釋?zhuān)肦ID法檢測(cè)被檢樣品的效力。
1.2.2.2 熒光檢測(cè) 倍比稀釋各被檢樣品,制備成不同稀釋度的病毒液備用。棄去96孔板內(nèi)細(xì)胞生長(zhǎng)液,用0.01 mol/L的PBS沖洗一遍后將0.1 mL病毒液與PB液(1∶1)混勻加入96孔培養(yǎng)板,每個(gè)稀釋度設(shè)6個(gè)復(fù)孔。同時(shí)設(shè)置不加PB液的對(duì)照孔及陰性、陽(yáng)性對(duì)照孔。接毒后細(xì)胞培養(yǎng)板置于37℃孵育2.5 h,孵育結(jié)束后棄去病毒液,用0.01 mol/L的PBS沖洗一遍,補(bǔ)充維持液繼續(xù)培養(yǎng)3 d,采用IFA法檢測(cè)樣品的TCID50。
1.2.3 重復(fù)性試驗(yàn) 隨機(jī)抽取豬瘟活疫苗成品、半成品樣品各5批次,應(yīng)用本研究中建立的檢測(cè)方法和RID法進(jìn)行效力檢測(cè),均重復(fù)兩次,統(tǒng)計(jì)檢測(cè)結(jié)果。
2.1 與常規(guī)熒光檢測(cè)方法對(duì)比 本研究中IFA法檢測(cè)豬瘟病毒效力時(shí)加入了PB,明顯提高了豬瘟病毒對(duì)細(xì)胞的感染率:本法中樣品稀釋16000倍接種96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,培養(yǎng)3 d后,特異性熒光孔數(shù)多,單孔熒光廣泛(圖1),較常規(guī)免疫熒光法(圖2)明顯提高。PB單獨(dú)處理空白細(xì)胞不會(huì)產(chǎn)生特異性熒光(圖 3)。
圖1 本研究IFA檢測(cè)結(jié)果Fig 1 Results of IFA detection by this method
圖2 常規(guī)FA檢測(cè)結(jié)果Fig 2 Conventional FA detection results
圖3 PB處理空白細(xì)胞IFA結(jié)果Fig 3 IFA results of blank cells treated with PB
2.2 與兔體定型熱反應(yīng)檢測(cè)法的相關(guān)性 通過(guò)對(duì)20個(gè)豬瘟活疫苗成品、90個(gè)豬瘟活疫苗半成品的效力檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)得出了IFA法與RID法對(duì)應(yīng)關(guān)系圖(圖4和圖5)。
圖4顯示,兔體檢測(cè)7500 RID/mL的樣品,熒光檢測(cè)TCID50/0.1mL集中在28.8以上;兔體檢測(cè)1.5×104RID/mL的樣品 TCID50/0.1mL集中在28.8至29.8之間;兔體檢測(cè)3.0×104RID/mL的樣品TCID50/0.1mL集中在29.7以上。
圖5表明,兔體檢測(cè)1.0×105~3.0×105RID/mL的半成品樣品,TCID50/0.1mL集中在212.11以上,3.0×105~5.0×105RID/mL樣品TCID50/0.1mL集中在213.03至213.96;兔體檢測(cè)5.0×105~8.0×105RID/mL樣品,熒光檢測(cè) TCID50/0.1mL集中在213.34至214.46;兔體檢測(cè)8.0×105RID/mL以上合格樣品,熒光檢測(cè)TCID50/0.1mL集中在214.4以上。
圖4 成品檢測(cè)結(jié)果Fig 4 Results of product
圖5 半成品檢測(cè)結(jié)果Fig 5 Results of Semi-finished product
2.3 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果 應(yīng)用本研究IFA法和RID法分別對(duì)豬瘟活疫苗成品、半成品進(jìn)行效力檢測(cè),統(tǒng)計(jì)兩次檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)表1和表2。
表1 兩種方法檢測(cè)成品結(jié)果比較Tab 1 Results of product by two detection methods
表2 兩種方法檢測(cè)半成品結(jié)果比較Tab 2 Results of Semi-finished product by two detection methods
如表1所示,用IFA和RID兩種效力檢測(cè)方法對(duì)5個(gè)批次的成品進(jìn)行復(fù)核檢驗(yàn),IFA法兩次結(jié)果復(fù)核率為100%,而RID法兩次結(jié)果復(fù)核率為80%。
如表2所示,用IFA和RID兩種效力檢測(cè)方法對(duì)5個(gè)批次的半成品進(jìn)行復(fù)核檢驗(yàn),IFA法兩次結(jié)果復(fù)核率為100%,而 RID法兩次結(jié)果復(fù)核率為73%。
通過(guò)上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,本研究中所建立的IFA法與RID法有良好的對(duì)應(yīng)關(guān)系,能夠準(zhǔn)確、快速檢測(cè)豬瘟疫苗成品、半成品效力。
本研究所建立的IFA法較常規(guī)免疫熒光法敏感性更高,通過(guò)在病毒液中增加促細(xì)胞感染劑PB定向增加豬瘟病毒與寄主細(xì)胞接觸面積,從而提高了病毒對(duì)細(xì)胞的感染率,提高了疫苗檢測(cè)的敏感性。解決了常規(guī)免疫熒光法因細(xì)胞感染率不高所導(dǎo)致的不穩(wěn)定、重復(fù)性差的問(wèn)題,同時(shí)避免了RID法中因兔體差異、環(huán)境因素、操作繁復(fù)所造成的誤差。
本研究中IFA法的建立是以RID法為基礎(chǔ),而檢測(cè)準(zhǔn)確度、可重復(fù)性高于RID法。如RID法檢測(cè)140703批成品疫苗時(shí),出現(xiàn)了7500 RID/mL兩次檢測(cè)均不合格,而1.5×104、3.0×104RID/mL檢測(cè)均合格的情況;檢測(cè)半成品疫苗時(shí),也多次出現(xiàn)了低倍數(shù)稀釋半成品疫苗效力檢驗(yàn)不合格,而高倍數(shù)稀釋效力檢驗(yàn)合格的情況。而IFA法檢測(cè)結(jié)果更為準(zhǔn)確,兩次檢測(cè)結(jié)果復(fù)核率可達(dá)到100%。
本研究將IFA法應(yīng)用于檢測(cè)豬瘟活疫苗成品、半成品效力,理論上來(lái)說(shuō)其檢測(cè)結(jié)果(TCID50)與疫苗效力應(yīng)當(dāng)有良好的直線(xiàn)對(duì)應(yīng)關(guān)系,但實(shí)際成品檢測(cè)結(jié)果各檢測(cè)梯度間TCID50相差不大,而半成品檢測(cè)結(jié)果中相鄰的檢測(cè)梯度間也有較大的重疊區(qū),這可能是RID法檢測(cè)各樣品時(shí)并未檢測(cè)至終點(diǎn)(疫苗實(shí)際效力高于檢測(cè)值),導(dǎo)致與之對(duì)應(yīng)的TCID50偏高。因此本研究仍需要更多數(shù)據(jù)建立IFA檢測(cè)結(jié)果與疫苗實(shí)際效力的直線(xiàn)對(duì)應(yīng)關(guān)系,進(jìn)一步提高檢測(cè)的準(zhǔn)確性。