孟軒羽，梁小弟，努爾比耶·努爾麥麥提，焦誼，劉杰，胡婷婷，高佳樂，徐尤宗盛，張玲，關(guān)亞群

(新疆醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院，烏魯木齊830011)

肥胖是引起2型糖尿病、高血壓、非酒精性脂肪肝等代謝性疾病的重要原因之一[1～4]，脂肪細胞的異常分化和過度增殖是導致肥胖的細胞生物學基礎。脂肪細胞分化涉及一個復雜的調(diào)控網(wǎng)絡，包括表觀遺傳學、轉(zhuǎn)錄水平、轉(zhuǎn)錄后水平、翻譯及翻譯后水平[5]；在轉(zhuǎn)錄水平中，過氧化物酶體增殖劑激活受體(PPARγ)不僅是調(diào)控脂肪組織中前體脂肪細胞分化的關(guān)鍵因子，而且在調(diào)節(jié)脂類代謝中扮演重要的角色[6]。在轉(zhuǎn)錄后水平中，RNA結(jié)合蛋白起著重要的調(diào)節(jié)作用[7]。Cho等[8]發(fā)現(xiàn)，雙鏈RNA結(jié)合蛋白STAU1在小鼠脂肪細胞3T3-L1的分化過程中高表達。前期我們通過生物信息學方法預測發(fā)現(xiàn)，STAU1可以與PPARγ結(jié)合。2018年7～9月，我們在人脂肪組織及人脂肪間充質(zhì)干細胞(hADSCs)成脂分化中檢測STAU1的表達水平，并于hADSCs中敲低STAU1表達后檢測細胞成脂情況及PPARγ表達水平變化，初步探討STAU1在人脂肪組織及hADSCs成脂分化中的可能作用。

1 材料與方法

1.1 主要試劑與儀器 低糖培養(yǎng)基(DMEM)、胎牛血清(FBS)購自Hyclone；無血清培養(yǎng)基(Opti-MEM)購自Gibco-BRL；LipofectamineTM3000轉(zhuǎn)染試劑、TRIzol RNA提取試劑購自Invitrogen；SYBR Green Real time PCR試劑盒購自Takala；RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Thermo Scientific；Anti-actin、Anti-STAU1、Anti-PPARγ抗體購自Abcam；STAU1 siRNA購自廣州瑞博。熒光定量PCR儀(ABI 7500)核酸微量檢測儀購自NanoDrop；低溫高速離心機購自Thermo，熒光倒置顯微鏡購自Leica；全波長酶標儀、凝膠成像儀購自Bio-Rad；電熱恒溫培養(yǎng)箱購自Thermo。

1.2 實驗方法

1.2.1 人脂肪組織的獲取與臨床資料收集 選取2016年9月～2018年5月新疆維吾爾自治區(qū)人民醫(yī)院慢性膽囊結(jié)石和腹股溝疝擇期手術(shù)患者56例，均無動脈或外周血管疾病、甲狀腺功能紊亂、急性炎癥性疾病、創(chuàng)傷和其他需要緊急治療的病癥、惡性腫瘤、酒精或藥物濫用史者，術(shù)中留取網(wǎng)膜和皮下脂肪組織。將患者根據(jù)BMI分為肥胖組(BMI≥28 kg/m2)27例和非肥胖組(BMI<24 kg/m2)29例，兩組年齡、BMI、腰圍、臀圍、血壓、血糖、血脂比較，見表1。本研究均經(jīng)醫(yī)院倫理委員會批準，患者均簽署知情同意書。

表1 兩組年齡、BMI、腰圍、臀圍、血壓、血糖、血脂比較

注：與非肥胖組比較，*P<0.05。

1.2.2 hADSCs的獲取 取人網(wǎng)膜脂肪組織約2 g，用含1 000 U/mL青霉素和鏈霉素的PBS清洗3遍；用眼科剪將脂肪組織剪至1 mm3大小，在37 ℃水浴中與1 mg/mL的Ⅰ型膠原酶一起溫育60 min，輕微搖晃直至看不到組織塊為止。加入20 mL PBS終止消化，將組織液以600 r/min離心10 min。棄去上清液后，將沉淀重懸于含有10% FBS和1 000 U/mL青霉素和鏈霉素的低糖DMEM中。將細胞懸浮液接種在10 cm細胞培養(yǎng)皿上，在37 ℃培養(yǎng)箱中用5% CO2培養(yǎng)；48 h換1次液，直至細胞融合率為80%，用胰酶消化傳代。傳代后收集細胞懸液，分為陰性對照及同型對照，分別加單克隆抗體CD44-FITC、CD105-PE在4 ℃冰箱避光孵育30 min；用PBS清洗5遍，洗掉多余的抗體后上流式細胞儀檢測細胞表面抗原。結(jié)果顯示，間充質(zhì)干細胞標記抗原CD44、CD105呈陽性表達，表明分離的細胞為hADSCs。

1.2.3 hADSCs成脂分化誘導與甘油三酯形成情況觀察 當細胞融合率達85%時，將含10%FBS、1 μmol/L地塞米松、10 μmol/L胰島素、0.5 mmol/L 3-異丁基-1-甲基黃嘌呤和200 μmol/L吲哚美辛的成脂誘導液處理hADSCs；每3 d更換培養(yǎng)基1次，持續(xù)8 d。分別于0、2、4、6、8 d，取上述細胞樣品；PBS清洗后以4%多聚甲醛固定30 min，用油紅O染料染色25 min。PBS清洗3遍后，加入ddH2O放在倒置顯微鏡下觀察細胞成脂情況；最后用異丙醇洗脫培養(yǎng)皿提取油紅O染料，在波長520 nm下測量光密度，以此表示甘油三酯生成量。

1.2.4 脂肪組織STAU1基因和hADSCs成脂分化中STAU1、PPARγ基因表達檢測 采用RT-qPCR法。PBS洗滌3.5 cm培養(yǎng)皿3次后(脂肪組織用研缽碾成粉末)，加入TRIzol 1 mL吹打勻漿細胞和組織；采用異丙醇氯仿方法提取細胞及組織內(nèi)RNA，通過分光光度法測量RNA濃度及A260/A280，確保RNA的質(zhì)量。使用Revert Aid First Strand cDNA Synthesis試劑盒將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA后，在ABI 7500系統(tǒng)下使用SYBR Select Master Mix試劑進行PCR擴增。STAU1基因上游引物5′-TGCTGGGGTTTGTTGTGATG-3′、下游引物5′-TGAGTGAGCCAGCTTGAGAA-3′，PPARγ基因上游引物5′-AAATGCGAGAGTGGGAAGGA-3′、下游引物5′-AGGGTCTTGCTATGTTGCCT-3′，由上海生工生物有限公司設計并合成。以HSP90為內(nèi)參，用2-ΔΔCt法計算STAU1基因相對表達量。

1.2.5 脂肪組織STAU1蛋白和hADSCs成脂分化中STAU1、PPARγ蛋白表達檢測 采用Western blotting法。將hADSCs細胞用PBS清洗3遍后(網(wǎng)膜脂肪組織研磨成粉末)，在RIPA中裂解后用BCA工作液對蛋白進行定量；在10%的SDS-PAGE膠上樣電泳后轉(zhuǎn)移至PVDF膜，在5% BSA中室溫孵育2 h；將膜和一抗Anti-STAU1、Anti-HSP90、Anti-PPARγ(1∶1 000)置于5 mL一抗稀釋緩沖液中，4 ℃搖床上孵育過夜。用15 mL TBST洗滌3次，每次15 min；將二抗(1∶5 000)HRP-Anti-rabbit室溫孵育1 h，再用15 mL TBST洗滌3次，每次15 min。ECL底物進行顯色，以Image Lab軟件進行光密度分析。以HSP90為內(nèi)參，用目的蛋白與內(nèi)參吸光度比值表示目的蛋白相對表達量。

1.2.6 敲低STAU1對hADSCs中甘油三酯生成及PPARγ表達影響的觀察 將4×105個細胞接種于3.5 cm皿中，待融合率為60%時，加入基礎培養(yǎng)基2 mL饑餓8 h后；將細胞分為3組，干擾1、2組分別轉(zhuǎn)染siRNA STAU1-homo-718、STAU1-homo-923，對照組不轉(zhuǎn)染。加無血清培養(yǎng)基Opti-MEM 250 μL稀釋10 μL LipofectamineTM3000，室溫孵育5 min；加入5 μL siRNA用250 μL Opti-MEM進行稀釋，將脂質(zhì)體LipofectamineTM3000與siRNA混合液室溫孵育30 min；加入培養(yǎng)皿中在37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中孵育1 h后換成DMEM低糖完全培養(yǎng)基，每2 d換液1次。轉(zhuǎn)染后2、4 d，分別檢測甘油三酯生成情況、STAU1和PPARγ基因及蛋白質(zhì)表達水平，方法分別同1.2.3、1.2.4、1.2.5。siRNA由廣州博瑞設計并合成，引物序列見表2。

表2 STAU1 siRNA引物序列

2 結(jié)果

2.1 肥胖組與非肥胖組脂肪組織中STAU1基因及蛋白表達情況 肥胖組網(wǎng)膜脂肪組織中STAU1基因相對表達量高于非肥胖組(P<0.05)，兩組皮下脂肪組織中STAU1基因相對表達量差異無統(tǒng)計學意義，見表3。肥胖組網(wǎng)膜脂肪組織中STAU1蛋白相對表達量為2.68±0.28，高于非肥胖組的1.32±0.36(P<0.05)。

表3 肥胖組與非肥胖組脂肪組織中STAU1基因表達比較

注：與非肥胖組同型脂肪組織比較，*P<0.05。

2.2 肥胖組網(wǎng)膜脂肪組織中STAU1基因表達水平與患者臨床特征的關(guān)系 相關(guān)性分析顯示，肥胖組網(wǎng)膜脂肪組織中STAU1基因表達水平與患者的腰圍、臀圍、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、空腹血糖無明顯相關(guān)性(r分別為0.169、0.176、0.173、0.164、0.171，P均>0.05)，與BMI、甘油三酯呈正相關(guān)(r分別為0.777、0.795，P均<0.01)。

2.3 hADSCs成脂分化過程中甘油三酯生成及STAU1、PPARγ表達水平變化 隨著誘導分化天數(shù)增加，hADSCs中甘油三酯生成增多，STAU1、PPARγ表達水平逐漸升高(P均<0.05)。見表4。

表4 hADSCs成脂分化過程中甘油三酯生成及STAU1、PPARγ表達水平變化

注：與成脂分化誘導0 d時比較，*P<0.05。

2.4 敲低STAU1對hADSCs中甘油三酯生成及PPARγ表達的影響 與對照組比較，干擾1、2組轉(zhuǎn)染2、4 d時hADSCs中STAU1表達降低，甘油三酯生成及PPARγ表達減少(P均<0.05)。見表5。

表5 各組hADSCs中甘油三酯生成及STAU1、PPARγ表達比較

注：與對照組同時點比較，*P<0.05。

3 討論

隨著社會發(fā)展及生活方式的改變，肥胖得到人們越來越多的關(guān)注，其發(fā)病率在全球范圍內(nèi)迅速上升[9～12]。研究發(fā)現(xiàn)，脂肪細胞的異常分化是導致肥胖的重要原因之一。因此，研究脂肪細胞的分化及其機制對預防和治療肥胖及相關(guān)疾病具有重要意義。脂肪細胞分化可以分為兩個階段：第一個階段為多潛能的干細胞轉(zhuǎn)變?yōu)榍绑w脂肪細胞；第二個階段為前體脂肪細胞終末分化為成熟的脂肪細胞[13]。脂肪細胞分化存在復雜的調(diào)控網(wǎng)絡，如PPARγ和CEBPα轉(zhuǎn)錄因子介導的轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)節(jié)[14]。PPARγ通過調(diào)控下游與脂代謝相關(guān)基因的表達，促進脂肪細胞的分化、增加脂肪細胞的數(shù)量，對脂肪的生成、轉(zhuǎn)運及脂肪的貯存和氧化等都起著重要作用，是脂肪細胞形成和代謝的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子[15]。另外，轉(zhuǎn)錄后水平也在脂肪細胞分化過程中發(fā)揮著重要作用，其中RNA結(jié)合蛋白可以參與RNA前體的剪接、RNA的細胞定位、RNA穩(wěn)定性等多種轉(zhuǎn)錄后調(diào)控[16]。STAU1是重要的RNA結(jié)合蛋白，又稱STAU1人源全長重組蛋白。Cho等[17]報道，在前體脂肪細胞3T3-L1分化中，RNA結(jié)合蛋白STAU1可以通過與Kruppel樣因子2(KLF2)基因上的局部雙連結(jié)合，影響KLF2基因穩(wěn)定性，使KLF2下游靶基因PPARγ表達水平升高，進而促進3T3-L1細胞內(nèi)甘油三脂的生成。

本實驗在hADSCs成脂分化過程中，STAU1、PPARγ表達水平隨著誘導分化天數(shù)增加而增加，油紅O染色結(jié)果顯示成脂加快。生物信息學方法預測顯示STAU1可以與PPARγ結(jié)合，而PPARγ是脂肪細胞分化重要的轉(zhuǎn)錄因子。本研究結(jié)果顯示，在脂肪細胞中敲低STAU1后PPARγ的蛋白及基因水平降低，推測STAU1可能通過上調(diào)PPARγ的表達水平進而加速甘油三酯的生成,此外，在人脂肪組織中發(fā)現(xiàn)STAU1基因和蛋白水平在肥胖患者網(wǎng)膜脂肪組織中表達升高，差異有統(tǒng)計學意義，而在皮下脂肪組織中無統(tǒng)計學意義。Serralde-Zúniga等[18]研究發(fā)現(xiàn)，脂肪組織在脂代謝和病理生理方面有明顯的部位特異性，網(wǎng)膜脂肪的積聚較皮下脂肪對人體危害更加明顯。因此，STAU1在網(wǎng)膜脂肪組織高表達可能與內(nèi)臟肥胖導致的代謝性疾病相關(guān)。相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)，網(wǎng)膜脂肪組織中STAU1基因表達與肥胖組BMI和甘油三酯呈正相關(guān)。甘油三酯是組成脂質(zhì)的主要成分，脂肪酸作為合成甘油三酯的直接底物，脂肪酸合成增多直接加速了甘油三酯的合成；PPARγ可以通過調(diào)節(jié)脂肪酸合成酶的速率，加速脂肪酸合成的進程，進而增加了甘油三酯的合成[19，20]。這提示STAU1在脂肪組織及脂肪細胞中可能通過上調(diào)PPARγ的表達，促進甘油三酯的生成，從而導致肥胖的發(fā)生。

綜上所述，雙鏈RNA結(jié)合蛋白STAU1，在人網(wǎng)膜脂肪組織及hADSCs成脂分化過程中高表達，STAU1可通過調(diào)節(jié)PPARγ表達水平來影響人體脂肪的形成，從而在肥胖的發(fā)生發(fā)展中起重要作用，但具體調(diào)控機制還有待進一步研究。