張鈺皎，胡煒東，孫子羽，滿都拉，黃海英，趙雪平，陳忠軍，*

（1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院，內(nèi)蒙古呼和浩特010018；2.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)職業(yè)技術(shù)學(xué)院，內(nèi)蒙古包頭014109）

細(xì)菌生物被膜（biofilm）是菌體黏附于接觸表面后，通過分泌大量多糖、蛋白質(zhì)和核酸等胞外基質(zhì)將自身包裹在其中而形成的微生物聚集物[1]。食源性病原菌可以黏附于食品接觸表面生長繁殖而形成生物被膜，食源性病原菌生物被膜會(huì)對(duì)食品安全造成巨大隱患。在自然條件下，大多數(shù)生物被膜是由多種病原菌形成的混合病原菌生物被膜[2-3]。金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）、大腸桿菌（Escherichia coli）和沙門氏菌（Salmonella）在食品加工過程中極易聯(lián)合作用而形成混合菌生物被膜[4]。混合病原菌生物被膜中的微生物相互交叉感染，導(dǎo)致微生物的多樣性增加，進(jìn)而使得其對(duì)外界的抵抗能力加強(qiáng)，更難以被抗生素等抑菌劑殺滅清除[5]。

乙二胺四乙酸（ethylenediaminetetraacetic acid，EDTA）是一種具有強(qiáng)配位能力的有機(jī)螯合-絡(luò)合劑，能和金屬離子形成穩(wěn)定的水溶性絡(luò)合物[6]。乙二胺四乙酸及其金屬鹽被廣泛應(yīng)用于各個(gè)領(lǐng)域，在工業(yè)生產(chǎn)中EDTA 常被用作掩蔽劑以控制金屬離子濃度并抑制催化反應(yīng)；在醫(yī)學(xué)衛(wèi)生中EDTA 可與人體中放射性金屬配位從而起到解毒作用；在食品加工中添加其金屬鹽不僅可以提高油脂的抗氧化能力，還能起到殺菌作用[7-9]。目前大多研究集中于乙二胺四乙酸及其金屬鹽對(duì)食源性病原菌單一生物被膜的抑制作用，對(duì)混合菌生物被膜的研究鮮少。

本文探究乙二胺四乙酸及其金屬鹽對(duì)食源性病原菌（金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和沙門氏菌）形成的混合菌生物被膜的抑制作用，為有效控制食品加工環(huán)境中的混合菌生物被膜提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 菌株

大腸桿菌（Escherichia coli）ATCC 11775-3、金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）CMCC 26003-3、沙門氏菌（Salmonella）ATCC 14028、哈維弧菌（V.harveyi BB170）：中國普通微生物菌種保藏管理中心。

1.1.2 試劑

結(jié)晶紫、氯化鈉、氯化鉀、磷酸氫二鉀、磷酸氫二鈉、草酸銨、無水甲醇、33 %冰醋酸、無水乙醇（分析純）：上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；胰蛋白胨大豆肉湯培養(yǎng)基（tryptone soy broth，TSB）：北京陸橋生物技術(shù)有限公司；AB 培養(yǎng)基：0.3 mol NaCL，0.05 mol MgSO4，0.2%酸水解酪蛋白用KOH 調(diào)節(jié)pH7.5，121℃高壓滅菌20 min，冷卻后每100 mL 培養(yǎng)基中加入以下無菌物質(zhì)：1 mL 1 mol 磷酸鹽緩沖液（phosphate buffer saline，PBS），1 mL 0.1 mol 精氨酸和 2 mL 50%甘油。

1.2 儀器與設(shè)備

Synergy H1 全功能微孔板檢測(cè)儀：美國伯騰儀器有限公司；LDZX 全自動(dòng)高壓滅菌鍋：上海申安醫(yī)療器械廠；JY 系列電子天平：上海浦春計(jì)量儀器有限公司；SW-CJ-2DF 雙人單面凈化工作臺(tái)：蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司；GHP 隔水式恒溫培養(yǎng)箱：上海一恒科學(xué)儀器有限公司；XH-C 漩渦混勻器：常州未來儀器制造有限公司；TM4000 plus 掃描電鏡：日本株式會(huì)社日立高新技術(shù)那珂事業(yè)所。

1.3 方法

1.3.1 食源性病原菌生物被膜的制備

將活化后的大腸桿菌、金黃色葡萄球菌和沙門氏菌分別接種于TSB 培養(yǎng)基中，于恒溫振蕩培養(yǎng)箱（37 ℃、120 r/min）培養(yǎng)過夜，將菌懸液稀釋至OD600nm=0.1（約為1.5×108cfu/mL）備用。將上述稀釋的金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和沙門氏菌菌懸液 1 ∶1 ∶1（體積比）混合后，以體積比1%的接種量分別接種于事先裝有200 μL TSB 培養(yǎng)基的 96 孔微量板中，37 ℃下培養(yǎng) 24 h 后，微孔板檢測(cè)儀測(cè)其630 nm 下的光密度值A(chǔ)1，空白對(duì)照記為A1C?？瞻讓?duì)照組只加TSB 培養(yǎng)基，且試驗(yàn)組及對(duì)照組均進(jìn)行3 次平行試驗(yàn)[10]。

1.3.2 結(jié)晶紫染色法測(cè)定生物被膜的黏附率（B 值）

將96 孔板中培養(yǎng)結(jié)束后的培養(yǎng)液棄去，并于每空中加入300 μL 的磷酸鹽緩沖液沖洗，反復(fù)沖洗3 次以去除未黏附的浮游菌；然后于每孔中添加200 μL 無水甲醇固定15 min，棄去懸浮液后于60 ℃下干燥1 h；隨后添加200 μL 的2%結(jié)晶紫染液染色20 min，蒸餾水沖洗孔壁至沖洗液無色；干燥后于每孔中添加300 μL的33%冰醋酸靜置10 min；微孔板檢測(cè)儀震蕩10 min后測(cè)定A2和A2c[11]。生物被膜黏附率（B 值）的計(jì)算公式為：

式中：A1、A2為培養(yǎng)和染色后的光密度值；A1c、A2c為空白對(duì)照的光密度值。

1.3.3 EDTA 對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

1.3.3.1 EDTA 濃度對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

采用二倍稀釋法配制不同濃度的乙二胺四乙酸溶液，將其加入到TSB 培養(yǎng)基中使其最終質(zhì)量濃度為0、0.25、0.5、1、2 mmol/L[12]。96 微量孔板中每孔加入200 uL 含不同EDTA 質(zhì)量濃度的TSB 培養(yǎng)基，以1%的接種量加入食源性混合菌菌懸液（金黃色葡萄球菌-大腸桿菌-沙門氏菌）后于37 ℃下培養(yǎng)24 后測(cè)其黏附率，平行試驗(yàn)3 次，并以不同濃度EDTA 對(duì)3 種食源性病原菌單獨(dú)形成生物被膜的抑制作用進(jìn)行對(duì)比。

1.3.3.2 EDTA 加入時(shí)間對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

96 孔板接種混合菌菌懸液后分別于37 ℃下培養(yǎng) 4、8、12、16、20、24、28、32、36、40、44、48 h 時(shí)加入0.25 mmol/L 的EDTA，并以未加EDTA 的不同時(shí)間段黏附率作對(duì)比，繪制未含EDTA 和含EDTA 的混合菌生物被膜的生長曲線[13]。

1.3.3.3 二價(jià)陽離子對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

在含有 0.25 mmol/L EDTA 的 TSB 中加入 Mg2+、Ca2+、Fe2+，接種1%的混合菌菌懸液并于37 ℃下培養(yǎng)24 h 后測(cè)其生物被膜黏附率[14]。

1.3.3.4 不同濃度EDTA 對(duì)混合菌AI-2 活性的影響

V.harveyi BB170 活化后于 30 ℃、200 r/min 培養(yǎng)過夜，將菌懸液稀釋至OD630nm=0.4 后用新鮮AB 培養(yǎng)基稀釋5 000 倍備用?；旌暇鷳乙航臃N于含0、0.25、0.5、1、2 mmol/L EDTA 的 TSB 培養(yǎng)基中 37 ℃下培養(yǎng)24 h 后，于13 000 r/min 下離心5 min 后取其上清液。上清液經(jīng)0.22 μm 濾膜過濾后，取20 μL 過濾后的上清液加入事先裝有200 μLTSB 培養(yǎng)基的96 孔微量板中，并取20 μL TSB 培養(yǎng)基加入事先裝有200 μLTSB培養(yǎng)基的96 孔微量板中作為對(duì)照。30 ℃、120 r/min 恒溫培養(yǎng)，Synergy H1 全功能微孔板檢測(cè)儀每1 h 測(cè)一次發(fā)光值，直至5 h，試驗(yàn)結(jié)果以相對(duì)活性強(qiáng)度表示[15]。

1.3.3.5 掃描電鏡觀察EDTA 對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

將經(jīng)無水乙醇浸泡過夜的0.5 cm×0.5 cm 的鐵片滅菌后放于含有 0、0.25、0.5、1、2 mmol/L EDTA 的 TSB培養(yǎng)基試管中，接種1%的混合菌菌懸液后37 ℃下連續(xù)培養(yǎng)5 d 后即可形成穩(wěn)定的生物被膜。將培養(yǎng)后的鐵片用鑷子取出，用無菌PBS 漂洗以去除浮游菌，放于4 ℃預(yù)冷的2.5%戊二醛浸泡4 h 后，依次用50%、60%、70%、80%、90%的乙醇浸泡10 min，再用100%的乙醇中浸泡2 次，每次15 min。醋酸異戊酯置換2 次，每次15 min 后冷凍干燥，噴金后用掃描電鏡觀察[16]。

2 結(jié)果與分析

2.1 EDTA濃度對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

不同濃度EDTA 對(duì)單一食源性病原菌生物被膜和混合菌生物被膜的抑制作用如圖1 所示。

圖1 EDTA 質(zhì)量濃度對(duì)生物被膜黏附率的影響Fig.1 Effect of EDTA mass concentration on the adhesion rate of biofilm

由圖1 可知，隨EDTA 質(zhì)量濃度的增加，金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、沙門氏菌分別形成的單一菌生物被膜及混合菌生物被膜的黏附度均逐漸降低。未添加EDTA 時(shí)，混合菌的黏附度為0.038 9，當(dāng)添加0.25 mmol/L 的EDTA 時(shí)，其黏附度下降了16.5%，當(dāng)添加EDTA 的質(zhì)量濃度逐漸增大時(shí)，黏附度下降雖有所減緩，但仍起到了抑制作用；未添加EDTA 時(shí)，金黃色葡萄球菌的黏附度為0.097 2、大腸桿菌為0.074 2、沙門氏菌為0.031 1，混合菌生物被膜的黏附度明顯低于金黃色葡萄球菌和大腸桿菌單獨(dú)形成生物被膜的黏附度，但高于沙門氏菌，這是因?yàn)樵诨旌暇锉荒ぶ械娜昃ハ啻嬖谥偁幾饔茫绕涫歉锾m氏陰性菌和革蘭氏陽性菌間的競爭力較強(qiáng)，這導(dǎo)致了混合菌生物被膜的黏附度要低于單一菌；當(dāng)添加不同質(zhì)量濃度的EDTA 時(shí)，對(duì)金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、沙門氏菌單獨(dú)形成生物被膜的抑制率明顯高于EDTA 對(duì)混合菌生物被膜的抑制率，因混合菌生物被膜中的菌種間的相互作用，使得其分泌的胞外多糖等物質(zhì)復(fù)雜多樣，從而增強(qiáng)了混合菌生物被膜的抵抗力。這符合Wang 等[17]研究發(fā)現(xiàn)，食源性病原菌腸道沙門氏菌（Salmonella enterica） 和血清型鼠傷寒沙門氏菌（Salmonella enterica serovar Typhimurium）形成的混合病原菌生物被膜比單菌株生物膜更具耐藥性。

2.2 EDTA加入時(shí)間對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

EDTA 加入時(shí)間對(duì)生物被膜黏附率的影響見圖2。

圖2 EDTA 加入時(shí)間對(duì)生物被膜黏附率的影響Fig.2 Effect of EDTA join time on the adhesion rate of biofilm

從圖2 可看出，隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加，混合菌生物被膜的黏附度呈現(xiàn)先增加后減少的趨勢(shì)，培養(yǎng)24 h 時(shí)黏附度高達(dá)0.038 6；當(dāng)階段性添加EDTA 后，混合菌黏附度同未含EDTA 時(shí)的趨勢(shì)相同；4 h～28 h 間的各個(gè)階段添加0.25 mmol/L EDTA 時(shí)，其明顯低于未含EDTA 的黏附度，尤其在培養(yǎng)初期時(shí)，黏附度下降了53.5%；隨著時(shí)間的增加，混合菌生物被膜的黏附度逐漸降低，在培養(yǎng)24 h 時(shí)黏附度下降率僅為15.3%；但在培養(yǎng)32 h～48 h 的各個(gè)階段加入EDTA 后基本無抑菌作用。因與同種微生物的浮游狀態(tài)相比，生物被膜的形成是十分復(fù)雜的，需歷經(jīng)4 個(gè)時(shí)期，即黏附期、發(fā)展期、成熟期和分離期[18]。當(dāng)培養(yǎng)32 h 時(shí)生物被膜已基本處于成熟期，此階段的生物被膜耐藥性強(qiáng)，會(huì)對(duì)抗生素和宿主免疫系統(tǒng)產(chǎn)生更強(qiáng)的抵抗力[19-20]。

2.3 二價(jià)陽離子對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

二價(jià)金屬陽離子對(duì)生物被膜黏附率的影響見圖3。

圖3 二價(jià)金屬陽離子對(duì)生物被膜黏附率的影響Fig.3 Effect of Divalent metal cation on the adhesion rate of biofilm

如圖3 所示，在含EDTA 的培養(yǎng)基中分別添加了Mg2+、Ca2+、Fe2+后，EDTA-Mg、EDTA-Ca、EDTA-Fe 培養(yǎng)基中的混合菌生物被膜黏附度高于未含金屬離子的，混合菌生物被膜的黏附度在EDTA-Mg 中的較在只含EDTA 培養(yǎng)基中的增加率為2.4%、EDTA-Ca 為8.1%、EDTA-Fe 為11.4%，說明EDTA 螯合不同二價(jià)金屬離子對(duì)食源性混合菌生物被膜的形成起到了保護(hù)作用，且保護(hù)作用強(qiáng)度為Fe2+>Ca2+>Mg2+。Banin[21]等研究發(fā)現(xiàn)，特定的二價(jià)金屬陽離子（濃度可完全飽和EDTA）會(huì)使得EDTA 具有較低的親和力，且它們產(chǎn)生的靜電作用有助于增強(qiáng)生物被膜的黏性，使得混合菌生物被膜具有較強(qiáng)穩(wěn)定性。

2.4 不同濃度EDTA對(duì)混合菌AI-2活性的影響

添加不同質(zhì)量濃度的EDTA 對(duì)混合菌釋放群體感應(yīng)信號(hào)分子AI-2 的影響如圖4 所示。

圖4 EDTA 質(zhì)量濃度對(duì)AI-2 活性的影響Fig.4 Effect of EDTA mass concentration on AI-2 activity

V.harveyi BB170 的發(fā)光強(qiáng)度受到群體感應(yīng)信號(hào)分子AI-2 的調(diào)控，細(xì)菌活性越強(qiáng)其釋放的AI-2 信號(hào)分子的活性越強(qiáng)，則其發(fā)光值越大。由圖4 可知，隨著EDTA 質(zhì)量濃度的增大，其AI-2 相對(duì)活性逐漸降低。當(dāng)僅添加0.25 mmol/L 的EDTA 時(shí)，AI-2 相對(duì)活性已明顯降低。此試驗(yàn)再次證明了EDTA 對(duì)混合菌生物被膜有抑制作用，推測(cè)其可能是通過減少細(xì)菌數(shù)量和菌體活性來達(dá)到抑制作用。

2.5 掃描電鏡觀察EDTA對(duì)混合菌生物被膜形成的影響

用掃描電鏡觀察在不同濃度EDTA 影響下混合菌生物被膜形態(tài)的變化，結(jié)果見圖5～圖9。

圖5 EDTA 濃度 0 mmoL/L（×2 000）Fig.5 EDTA concentration 0 mmoL/L（×2 000）

圖6 EDTA 濃度 0.25 mmoL/L（×2 000）Fig.6 EDTA concentration 0.25 mmoL/L（×2 000）

圖7 EDTA 濃度 0.5 mmoL/L（×2 000）Fig.7 EDTA concentration 0.5 mmoL/L（×2 000）

圖8 EDTA 濃度 1 mmoL/L（×2 000）Fig.8 EDTA concentration 1 mmoL/L（×2 000）

圖9 EDTA 濃度 2 mmoL/L（×2 000）Fig.9 EDTA concentration 2 mmoL/L（×2 000）

如圖5 所示，混合菌極易在小鐵片表面黏附而形成緊密黏連的生物被膜，3 種病原菌通過分泌的胞外多糖及其它有機(jī)物質(zhì)將自身及其余兩種菌包裹后在鐵片上形成大片緊密的生物被膜。在混合菌生物被膜中，金黃色葡萄球菌呈球狀，大腸桿菌和沙門氏菌呈桿狀，且球狀菌體明顯大于桿狀菌體數(shù)量，這是因?yàn)樵诨旌暇锉荒ぶ校瘘S色葡萄球菌為優(yōu)勢(shì)菌，其生長過程中分泌的物質(zhì)抑制了其它兩株菌的生長。圖6～9 體現(xiàn)了添加不同質(zhì)量濃度的EDTA 后混合菌生物被膜的生長狀態(tài)。從圖可以看出添加0.25 mmol/L 的EDTA 培養(yǎng)5 d 后，其生物被膜已出現(xiàn)明顯的脫落，菌體以單個(gè)狀態(tài)分散，混合菌生物被膜已遭到明顯破壞；添加0.5 mmol/L 的EDTA 后混合菌生物被膜不僅生物被膜遭到破壞，且分離出的單個(gè)菌數(shù)量已明顯減少；添加1 mmol/L 的EDTA 后僅有微量浮游的單個(gè)病原菌；而添加2 mmol/L 的EDTA 后已看不見病原菌，鐵片上僅剩細(xì)菌分泌的胞外多糖等物質(zhì)。這進(jìn)一步證實(shí)了EDTA 對(duì)混合菌生物被膜的形成有一定的抑制作用。

3 結(jié)論

本研究以96 孔微量板作為單一菌和混合菌生物被膜的黏附載體，通過結(jié)晶紫染色法測(cè)定了不同質(zhì)量濃度的EDTA 及添加二價(jià)金屬陽離子對(duì)混合菌生物被膜形成的影響，并通過群體感應(yīng)信號(hào)分子活性的檢測(cè)和掃描電鏡形態(tài)的觀察進(jìn)一步證實(shí)了EDTA 對(duì)混合菌生物被膜形成的影響。結(jié)果表明，EDTA 對(duì)混合菌生物被膜有抑制作用，且隨著EDTA 質(zhì)量濃度的增加，混合菌生物被膜的黏附度逐漸降低；EDTA 僅對(duì)28 h（黏附期）前的混合菌生物被膜有抑制作用，當(dāng)生物被膜處于32 h（成熟期）后再添加EDTA 時(shí)已基本無抑制作用；添加二價(jià)金屬陽離子Mg2+、Ca2+、Fe2+后對(duì)混合菌生物被膜起到了穩(wěn)定作用；AI-2 信號(hào)分子相對(duì)活性的檢測(cè)和掃描電鏡觀察生物被膜的形態(tài)進(jìn)一步證實(shí)了不同質(zhì)量濃度的EDTA 對(duì)混合菌生物被膜有一定的抑制作用。

食品加工環(huán)境的不同，形成食源性病原菌生物被膜的結(jié)構(gòu)也會(huì)不同，且目前國內(nèi)外學(xué)者主要致力于研究EDTA 對(duì)單一菌種生物被膜的抑制作用，對(duì)混合菌生物被膜研究鮮少。因此，探究EDTA 對(duì)混合菌生物被膜的抑制作用對(duì)食品實(shí)際生產(chǎn)中防控混合菌生物被膜的污染具有重要意義。根據(jù)文獻(xiàn)[22]可知，乙二胺四乙酸作為食品添加劑時(shí)的國家標(biāo)準(zhǔn)限量為0.075 g/kg，約為0.668 mmol/L，因試驗(yàn)證明在添加0.25 mmol/L 乙二胺四乙酸時(shí)對(duì)食源性混合菌生物被膜已有明顯抑制作用，因此在食品實(shí)際生產(chǎn)中，可選用0.25 mmol/L～0.5 mmol/L 的添加量作為對(duì)混合菌生物被膜的抑制劑。