孫偉 劉杉杉 周佳 黃雪飛 吳強(qiáng)
摘要:豬傳染性胃腸炎在全世界范圍內(nèi)暴發(fā),臨床癥狀主要以仔豬腹瀉、嘔吐和脫水為主,嚴(yán)重者可導(dǎo)致死亡,給生豬養(yǎng)殖造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。隨著混合感染加劇,特別是與TGE類(lèi)似病癥的傳染病的出現(xiàn),單純依靠臨床觀(guān)察和病理變化,很難對(duì)該病做出準(zhǔn)確診斷,因此需要借助于免疫學(xué)和分子生物學(xué)檢測(cè)技術(shù)。本文就免疫學(xué)和分子生物學(xué)技術(shù)在TGE診斷中的最新應(yīng)用情況進(jìn)行綜述,以期為T(mén)GE的防控提供一定的科學(xué)參考。
關(guān)鍵詞:豬傳染性胃腸炎;免疫學(xué);分子生物學(xué);診斷技術(shù);研究進(jìn)展
豬傳染性胃腸炎(transmissible gastroenteritis,TGE)是由豬傳染性胃腸炎病毒(transmissible gastroenteritis virus,TGEV)感染引起的一種高度接觸性烈性傳染病。TGEV與豬群高發(fā)病率密切相關(guān),臨床癥狀主要以腹瀉、嘔吐和脫水為主。不同年齡和品種的豬群均易感,其中2周齡以?xún)?nèi)仔豬感染TGEV后,可出現(xiàn)嚴(yán)重腹瀉,病死率高達(dá)100%[1]。1933年美國(guó)首次出現(xiàn)TGE,并在1946年由Doyle和Hutchingd首次分離并鑒定第一株TGEV[2]。隨后,TGE相繼出現(xiàn)在日本、英國(guó)等歐洲、北美洲和亞洲等多個(gè)國(guó)家和地區(qū)。我國(guó)自上世紀(jì)60年代首次發(fā)病以來(lái),TGE不斷在我國(guó)大部分地區(qū)流行,并呈現(xiàn)逐年上升的趨勢(shì)。TGEV給全世界的養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。本文就TGE的診斷技術(shù)和研究現(xiàn)狀做如下綜述,以期為T(mén)GE的有效預(yù)防和研究提供科學(xué)參考。
1病原特征
TGEV是一種有囊膜的、單股正鏈RNA病毒,分類(lèi)學(xué)上屬于冠狀病毒科a冠狀病毒屬成員。病毒粒子呈圓形或橢圓形,直徑約為100_150nm[3]。TGEV基因組全長(zhǎng)28.6kb,共編碼4種結(jié)構(gòu)蛋白和3種非結(jié)構(gòu)蛋白[4]。
TGEV對(duì)外界的抵抗力較強(qiáng),20℃存放2周或是35℃存放24h,仍具有感染性。糞尿和腸道組織中的病毒粒子,在低溫下保存數(shù)月,滴度仍無(wú)明顯改變。但TGEV對(duì)光和紫外線(xiàn)敏感,經(jīng)照射后很快失活。乙醚、氯仿、甲醛、去氧膽酸鈉等有機(jī)溶劑作用后很快失活。
2診斷技術(shù)研究
TGE是一種高度接觸性傳染病,易和豬流行性腹瀉病毒(porcine epidemic diarrhea virus,PED)、豬A群輪狀病毒(porcine A group rotavirus,PGAR)混合感染,且三者臨床癥狀、傳播途徑類(lèi)似,很難區(qū)分。因此,快速診斷對(duì)于TGE的有效防控具有十分重要的意義。然而,目前很難對(duì)TGE做出臨床確診,仍需要借助于分子生物學(xué)或是免疫學(xué)方法,才能做出最終的鑒別診斷。
2.1免疫學(xué)診斷技術(shù)
2.1.1酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定
酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(Enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測(cè)方法敏感性高、特異性強(qiáng),且操作簡(jiǎn)單,可同時(shí)對(duì)大量樣本進(jìn)行病原和血清抗體檢測(cè)。宋振輝等[5]通過(guò)原核系統(tǒng)表達(dá)的TGEV衣殼蛋白為抗原,建立了一種檢測(cè)TGE的間接ELISA方法,相比于商品化的抗體檢測(cè)試劑盒,特異性、敏感性和符合率分別達(dá)到了93.8%、93.5%和93.5%。屈月等[6]在此基礎(chǔ)上進(jìn)行了改進(jìn),建立了由TGEVN蛋白單克隆抗體和多克隆抗體構(gòu)成的夾心ELISA方法。結(jié)果表明,該方法具有良好的重復(fù)性,與其他病原體無(wú)交叉反應(yīng)。同樣,原核表達(dá)TGEVS基因主要的抗原位點(diǎn)序列,并通過(guò)該重組蛋白建立的間接ELISA方法與TGEV包被的ELISA方法相比較,檢測(cè)結(jié)果符合率也高達(dá)90%以上。尹杰等[7]基于編碼S基因的B、C抗原位點(diǎn),建立的間接ELISA方法特異性和重復(fù)性均較好,且敏感性遠(yuǎn)高于血清中和試驗(yàn),有望應(yīng)用于TGEV的檢疫和進(jìn)行流行病學(xué)調(diào)查。郭宏偉等[8]對(duì)N蛋白進(jìn)行了表達(dá),建立了可檢測(cè)TGEV血清抗體的間接ELISA方法,通過(guò)與中和試驗(yàn)比較,符合率為100%,且檢測(cè)假陽(yáng)性和假陰性率低。
2.1.2病毒中和試驗(yàn)
S蛋白突出于TGEV病毒粒子表面,是唯一能夠誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生中和抗體和提供免疫保護(hù)作用的結(jié)構(gòu)蛋白。然而研究發(fā)現(xiàn),TGEV與豬呼吸道冠狀病毒(porcine respiratory coronavirus,PRCV)序列存在高度的相似度,利用中和試驗(yàn)檢測(cè)TGEV抗體時(shí)兩者之間存在交叉反應(yīng),降低了診斷的特異性,因此限制了中和試驗(yàn)在TGE診斷的應(yīng)用。
2.1.3膠體金技術(shù)
膠體金免疫層析技術(shù)具有操作簡(jiǎn)單、靈敏度高、診斷結(jié)果直觀(guān)等優(yōu)點(diǎn),目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用于細(xì)菌、病毒和寄生蟲(chóng)等動(dòng)物性疾病診斷。常亮等[9]利用檸檬酸納還原法制備的膠體金試紙條,可特異性檢測(cè)出低至150μg/mL的TGEV,該試紙條可在常溫下保存1年之久,有望用于生產(chǎn)實(shí)際。李嘉琛[10]等研發(fā)了一種可標(biāo)記TGEV單抗的膠體金顆粒,將其包被在玻璃纖維膜上,并分別以羊抗鼠lgG和TGEV單抗為質(zhì)控線(xiàn)和檢測(cè)線(xiàn)。結(jié)果顯示,該試紙條檢測(cè)靈敏度為102TCID50/O.1mL,且與RT-PCR檢測(cè)結(jié)果和進(jìn)口試紙卡吻合。
2.2分子生物學(xué)診斷技術(shù)
2.2.1RT-PCR技術(shù)
PCR技術(shù)自出現(xiàn)以來(lái),廣泛應(yīng)用于分子生物學(xué)領(lǐng)域。RT-PCR是指以mRNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增的技術(shù)。早在1997年,Pa-ton等[11]建立了一種基于S基因序列,檢測(cè)TGEV的RT-PCR方法,可用于與PRCV鑒別診斷。通過(guò)對(duì)臨床樣品進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)RT-PCR敏感性?xún)?yōu)于傳統(tǒng)的病毒分離和ELISA檢測(cè)手段。Dong等[12]坷針對(duì)N基因保守區(qū)建立了RT-PCR檢測(cè)方法,通過(guò)對(duì)臨床樣品檢測(cè)發(fā)現(xiàn),特異性和重復(fù)性100倍優(yōu)于普通PCR。王黎等[13]針對(duì)N基因保守序列建立的RT-PCR方法,完成了幾百份臨床樣品的檢測(cè),靈敏度高達(dá)1Opg。
2.2.2巢式RT-PCR (RT-nPCR)技術(shù)
巢式PCR是一種變異的聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng),通過(guò)采用兩對(duì)特異性引物對(duì)目的基因進(jìn)行擴(kuò)增,大大提高了反應(yīng)的敏感性和特異性。20世紀(jì)80年代以來(lái),出現(xiàn)了一種新的名為PRCV的TGEV變異毒株。與TGEV相比較,僅在S基因的5端672位和681位之間出現(xiàn)了缺失。美國(guó)學(xué)者Kim[14]基于S基因缺失片段,首次建立了可用于PEDV和PRCV鑒別診斷的RT-nPCR技術(shù),可直接對(duì)糞便樣品進(jìn)行檢測(cè)。隨后,Jung等[15]建立了一種新的雙重RT-nPCR技術(shù),可同時(shí)檢測(cè)出組織病理切片中PEDV和TGEV,與原位雜交技術(shù)相比較,吻合率為100%。Salem等”[16]進(jìn)一步建立了多重RT-nPCR,可同時(shí)檢測(cè)出發(fā)生腹瀉的樣品中PEDV、TGEV和PRV感染情況。該方法可檢測(cè)到的TGEV下限濃度為102TCID50/mL。Rodrl guez等[17]通過(guò)對(duì)TGEV高度保守區(qū)設(shè)計(jì)引物,建立了可用于檢測(cè)組織培養(yǎng)和臨床樣品中TGEV含量的RT-nPCR,有助于對(duì)豬場(chǎng)TGEV做出診斷。
2.2.3雙重或是多重RT-PCR
雙重或多重RT-PCR可通過(guò)在檢測(cè)體系中加入1對(duì)以上的特異性引物,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)兩種以上病原微生物檢測(cè)的目的,該方法在混合感染樣品檢測(cè)中顯得尤為重要。TGEV常和PEDV、PGAR混合感染,且臨床癥狀、病理變化和流行病學(xué)極為相似,因此需要借助實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)技術(shù)才可以做出確診。
早在2007年,Kim等[14]就建立了同時(shí)可以檢測(cè)和定量PEDV和TGEV的多重RT-PCR法。人為感染試驗(yàn)結(jié)果顯示,腹瀉剛一出現(xiàn)便可采用該方法檢測(cè)到PEDV和TGEV。張坤等[15]根據(jù)PEDVM基因、TGEVN基因、PGARVP7基因建立的多重PCR可檢測(cè)到最低35pg限量的三聯(lián)疫苗混合RNA。通過(guò)對(duì)75份豬糞便樣品進(jìn)行檢測(cè)分析,與常規(guī)RT-PCR相比較,該技術(shù)特異性強(qiáng)、敏感度高,可用于檢測(cè)腹瀉樣品中的PEDV、TGEV和PGAR。我國(guó)學(xué)者陳芳等[19]為了對(duì)TGE和PED混合感染做出準(zhǔn)確的鑒別診斷,建立了同時(shí)可檢測(cè)這兩種病原體的雙重PCR方法,結(jié)果表明可檢測(cè)出lOpg TGEV RNA和lOOpg PEDV RNA。閆若潛等[20]也建立了特異性較好的PEDV和TGEV二重PCR檢測(cè)方法,可檢測(cè)到lOTCID50/mL的病毒含量。
2.2.4熒光定量PCR(qRT-PCR)技術(shù)
qRT-PCR技術(shù)具有靈敏度高、可實(shí)時(shí)定量的特點(diǎn),已經(jīng)廣泛用于分子生物學(xué)和醫(yī)學(xué)檢測(cè),對(duì)于疾病的高通量檢測(cè)具有明顯的優(yōu)勢(shì)。2007年,Bai等[21]建立的基于TaqMan探針的qRT-PCR方法,可檢測(cè)15.3拷貝/μL的質(zhì)粒DNA,遠(yuǎn)高于普通PCRl.53x103拷貝/μL的檢測(cè)極限,且具有良好的重復(fù)性和特異性。Vemula-palli等[22]通過(guò)對(duì)TGEV的S基因進(jìn)行序列比對(duì),設(shè)計(jì)出特異性引物并引入綠色熒光蛋白作為內(nèi)參,建立的TaqMan熒光定量RT-PCR技術(shù),可用于糞便樣品檢測(cè),靈敏度可達(dá)2.8個(gè)拷貝,且能與其他種豬呼吸道病毒冠狀病毒鑒別診斷。龔雙燕等[23]建立的SYBR Green Ⅱ qRT-PCR檢測(cè)方法可用于提高初乳中TGEV檢出率。通過(guò)對(duì)130份腹瀉母豬的初乳進(jìn)行檢測(cè),qRT-PCR可檢測(cè)出10份陽(yáng)性樣品,而普通PCR僅檢測(cè)5份,說(shuō)明建立的熒光定量PCR檢測(cè)敏感性高,更加適用于病毒微量的樣品檢測(cè),提高了檢出率。侯月娥等[24]建立的雙重TaqMan熒光定量一步法qRT-PCR,可同時(shí)檢測(cè)PEDV和TGEV,靈敏度均可達(dá)101個(gè)拷貝,可快速完成對(duì)臨床樣品的檢測(cè)。
2.2.5反轉(zhuǎn)錄環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)
環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(Loop-Media ted lsothermal Amplifi-cation,LAMP)是一種新的核酸擴(kuò)增方法,其可在等溫條件下擴(kuò)增出DNA/RNA,并具有較高的特異性和靈敏性,且無(wú)需特殊的設(shè)備,已經(jīng)廣泛用于口蹄疫病毒、流感病毒以及豬水皰病毒等多種RNA病毒的檢測(cè)。Chen等[25]針對(duì)TGEV保守的N基因,設(shè)計(jì)出6對(duì)特異性引物,可檢測(cè)到1Opg病毒RNA,靈敏度遠(yuǎn)高于普通PCR。Li等[26]采用3對(duì)N基因的特異性引物,通過(guò)優(yōu)化條件后,60℃孵育30min便可以較高靈敏度檢測(cè)出TGEV,并能與其他病毒進(jìn)行鑒別診斷。該方法簡(jiǎn)便易行,適用于TGEV現(xiàn)場(chǎng)診斷。
3小結(jié)與展望
TGE在世界范圍內(nèi)廣泛流行,給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。因此,對(duì)TGE高效、特異性診斷顯得尤為重要。目前,對(duì)于TGE尚需要借助實(shí)驗(yàn)室診斷技術(shù),才能減少診斷的誤差,提高診斷的準(zhǔn)確性。其中,分子生物學(xué)診斷技術(shù)具有高效、快捷、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),在實(shí)驗(yàn)室中得到了廣泛的應(yīng)用。RT-nPCR和多重PCR的出現(xiàn),提高了檢測(cè)的效率和特異性,特別是qRT-PCR技術(shù)的應(yīng)用大大提高了檢測(cè)的特異性和靈敏性。但是,受到儀器設(shè)備條件的限制,尚無(wú)法應(yīng)用到臨床現(xiàn)場(chǎng)診斷。
隨著科技的進(jìn)步,多種便捷式的檢測(cè)手段問(wèn)世,有望對(duì)豬病現(xiàn)場(chǎng)進(jìn)行TGE診斷。近幾年,膠體金診斷試紙條的出現(xiàn)對(duì)于提高臨床檢測(cè)提供了巨大的方便,特別適用于廣大基層獸醫(yī)工作者,這也是今后科學(xué)研發(fā)的一個(gè)重要方向。目前豬病復(fù)雜多樣,且多為混合感染,這給疾病的鑒別診斷帶來(lái)了很大的挑戰(zhàn)。因此需要綜合運(yùn)用多種檢測(cè)方法,揚(yáng)長(zhǎng)避短,才能提高檢測(cè)的靈敏性和特異性,更好服務(wù)于我國(guó)乃至世界的養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展。
參考文獻(xiàn):
[1] Zhang X,Shj H Y,Chen J F,ef al.Identification of cellular pro-teome using two-dimensional difference gel elctrophoresis in STcells infected with transmissible gastroenteritis coronavirus [J].Pro—teome Science,2013,11(1):31-31.
[2]黃海龍,胡桂學(xué),陶淑霞.豬傳染性胃腸炎和豬流行性腹瀉診斷方法研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2004,25(3):43-46.
[3] Tajima M.Morphology of transmissible gastroenteritis virus of pigS[J].Archiv Fu r Die Gesamte Virusforschung,1970,29(1):105-108.
[4]滿(mǎn)坤,于萍萍,湯波,等.豬傳染性胃腸炎病毒強(qiáng)毒株的分離鑒定[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2017,(11):205-207.
[5]宋振輝,郭萬(wàn)柱,張鸚俊.豬傳染性胃腸炎病毒核衣殼蛋白的表達(dá)及在ELISA中的初步應(yīng)用[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2009,17(2):201-205.
[6]屈月,葛俊偉,唐麗杰,等.豬傳染性胃腸炎病毒雙抗體夾心ELlSA檢測(cè)方法的建立[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2013,35(5):364-368.
[7]尹杰,楊恒,曹三杰,等.豬傳染性胃腸炎病毒S基因B、C位點(diǎn)的克隆與表達(dá)及間接ELISA方法的建立[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,2015,51(1):7-10.
[8]郭宏偉,鄭鳴,喬宏興,等.豬傳染性胃腸炎病毒N蛋白原核表達(dá)和間接ELISA檢測(cè)方法的建立[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2016,43(9):2296-2301.
[9]常亮,陳伯祥,楊明,等.豬傳染性胃腸炎免疫膠體金診斷試劑條的研制[J].畜牧獸醫(yī)雜志,2014,33(6):22-24.
[10]李嘉琛.豬傳染性胃腸炎病毒ELlSA抗體檢測(cè)方法的建立及膠體金免疫層析試紙條的研制[D].北京:中國(guó)獸醫(yī)藥品檢查所,2017.
[11]Paton D,Ibata G,Sands J,et al. Detection of transmissible gas-troenteritis Virus by RT-PCR and differentiati0n from porcine respirato-ry coronavlrus [J].Journal of Virological Methods,1997,66(2):303-309.
[12]Dong L J,Zhang Y M,Lei H E,et a1 Establishment of RT—PCR fortransmissible gastroentemls virus[J]. JounaI of Northwest A&F Uni—verSity,2012
[13]王黎,李碧,周遠(yuǎn)成,等,豬傳染性胃腸炎病毒RT—PCR檢測(cè)方法的建立及臨床應(yīng)用[J]中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào),2015,35(2):190一194
[14]Kim S H,Kim I J,Pyo H M,etaI Multiplex rea-time RT—PCR for theSimUltaneoUS detection and quantification Of transmissibIe gaS—troenteritis virus and porcine epidemlc diarrhea virus[J].Journal ofVirologicaIMethods,2007,146(1):172—177
[15]Kwonil J,Junghyum K,OKjin K,et al.Dfferentiation betweenporcine epidemiC diarrhea virus and fransmissible gastroenteritiSvirus in formalin-fixed paraffin—embedded tissues by multipexRT-nesfed PCR and comparison with in situ hybridizafion[J].Journalof VirobgicaI Methods,2003,108(1):41—47.
[16]OIga P B MultipLex nested RT-PCR for the detection of porcineenteric viruses[J]. Journa of Virological Methods,2010,165(2):283—293
[17]Rodri guez E,Betancourt A,Relova D,efaI.DeveIopment of anested polymerase Chain reaCtion test for the diagnOSiS of transmls—sibIe gastroenteritis of pigs[J].Revue Scientifique Et Technique,2012,31(3):1033—1044.
[18]張坤豬病毒性腹瀉多重RT-PCR診斷方法的建立和應(yīng)用及豬輪狀病毒的分離[D]武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[19]陳芳,劉惠莉,孫紅立,等多重RT-PCR檢測(cè)豬傳染性胃腸炎病毒和豬流行性腹瀉病毒[J]中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào),2005,25(1):9—12.
[20]閏若潛,安春霞,劉淑敏,等.豬傳染性胃腸炎與流行性腹瀉病毒二重RT-PCR檢測(cè)方法的建立及應(yīng)用[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2012,39(9):38—42
[21]Bai X H,F(xiàn)eng L,Chen J F,et al. Development of TaqMan Fluo—rescenCe QUantitative RT—PCR ASSav for Detection Of TransmissibleGastroenteritis Virus of Swine[J].Acfa Vetenrinaria Et Zootecsinica,20O7:476-481.
[22]Vemuapali R,Gulani J,Santrich C. A real-time TaqMan?RT—PCR assay With an interenaI amplification control for rapid detec-tion of transmissilble gastroenteritis virus in swine fecal samples[J].Journal of Virological Methods,2009,162(1):231—235
[23]龔雙燕,李小璟,李幽幽,等.豬傳染性胃腸炎病毒SYBR Green 熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及在初乳檢測(cè)上的應(yīng)用[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2017,33(5):1076—1081.
[24]侯月娥,伍建敏,李中圣.PEDV和TGEV雙重TaqMan熒光定量一步法RT-PCR檢測(cè)方法的建立及應(yīng)用[J]中國(guó)動(dòng)物傳染病學(xué)報(bào),2017.25(1):19-25
[25] Chen Q. Li J, Fang X E,et al. Detection of swine tronsmissiblegastroenteritis coronavirus using loop-mediated isothermal amplifi-cation[J]. Virology Journal. 2010,7(1):1-5
[26]U P C. Ren X F Reverse transcription loop-mediated isothermalamplification for rapid detection of transmissible gastroenteritis virus[J].Current Micro biology. 2011, 62(3): 1074-1080