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表觀擴(kuò)散系數(shù)與缺氧誘導(dǎo)因子-1α、核因子-κB在布加綜合征大鼠模型中的相關(guān)性初探

2020-04-08 01:54:10朱楠張?zhí)鹛?/span>成德雷
肝膽胰外科雜志 2020年1期
關(guān)鍵詞:肝細(xì)胞肝臟陽(yáng)性

朱楠,張?zhí)鹛?,成德?/p>

(1.安徽省五河縣人民醫(yī)院 影像科,安徽 蚌埠 233300;2.安徽省立醫(yī)院 介入放射科,安徽 合肥230001)

布加綜合征(Budd-Chiari syndrome,BCS)是肝靜脈(hepatic vein,HV)和(或)其開口以上的下腔靜脈(inferior vena cava,IVC)阻塞導(dǎo)致的淤血性肝損傷,若不及時(shí)治療,最終可進(jìn)展為肝硬化[1-2]。既往研究發(fā)現(xiàn),缺氧誘導(dǎo)因子-1α(hypoxia-inducible factor-1α,HIF-1α)、核因子-κB(nuclear factor-κB,NF-κB)是調(diào)節(jié)BCS病理?yè)p傷的重要因子,其在BCS病程中參與調(diào)節(jié)肝星型細(xì)胞活化、細(xì)胞外基質(zhì)沉積、微循環(huán)灌注等[3-4],這些均影響細(xì)胞內(nèi)外水分子彌散,理論上可早于肝臟形態(tài)學(xué)變化而被表觀擴(kuò)散系數(shù)(apparent diffusion coefficient,ADC)檢測(cè)[5]。已有報(bào)道ADC值在評(píng)估脂肪肝、乙肝后肝硬化等肝損傷中的價(jià)值[6],但目前在BCS中的研究報(bào)道較少。因此,本研究參照既往文獻(xiàn)建立大鼠BCS動(dòng)物模型[4],動(dòng)態(tài)檢測(cè)IVC結(jié)扎后肝臟ADC值與HIF-1α、NF-κB的變化,初步探討其在BCS肝損傷中的相關(guān)性。

1 材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物和試劑

本研究經(jīng)安徽省立醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(編號(hào):20170104),自安徽省立醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心購(gòu)買體質(zhì)量235~305 g的健康雄性SD大鼠135只[許可證號(hào):SCXK(蘇)2005-0001],在12小時(shí)明/暗交替光照下,溫度15~25 ℃,濕度50%~60%條件下清潔飼養(yǎng)。

3F微導(dǎo)管(日本泰爾茂),RevertAidTM逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Thermo Scientific公司),ECL超敏發(fā)光試劑盒(Thermo公司),HIF-1α、NF-κB一抗均為兔抗1:300稀釋(ZSbio公司),PBS液(ZSbio公司),β-Actin(Santa Cruz公司),PicTureTM檢測(cè)試劑(Zymed公司),山羊抗小鼠及山羊抗兔IgG購(gòu)自ZSbio公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 分組及BCS模型制備:按數(shù)字表法將135只大鼠隨機(jī)分為3組:正常組15只;模型組和假手術(shù)組各60只,分為術(shù)后1、4、8、12周4個(gè)亞組,每亞組15只。大鼠BCS模型制備:常規(guī)消毒麻醉后,于劍突下正中開腹分離肝鐮狀韌帶,暴露肝后段IVC,平行緊貼IVC以3 F微導(dǎo)管,并以0號(hào)線環(huán)繞結(jié)扎后抽出,逐層縫合關(guān)腹(見圖1)。假手術(shù)組不結(jié)扎肝后段IVC,其他過(guò)程同模型組。正常組僅常規(guī)飼養(yǎng),不做任何處理,本研究參考同類研究動(dòng)物實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)[7-8],正常組僅觀察研究終點(diǎn)12周這個(gè)時(shí)間點(diǎn),該組所有時(shí)間點(diǎn)相關(guān)病理生理數(shù)據(jù)均用12周的數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。

圖1 模型組結(jié)扎IVC

1.2.2 MRI掃描及DSA:MRI掃描:正常組于造模后第12周,模型組及假手術(shù)組分別于實(shí)驗(yàn)后1、4、8、12周隨機(jī)取9只大鼠,常規(guī)消毒麻醉后,仰臥位腹部加壓固定于腕關(guān)節(jié)線圈中心,以GE HDXT-1.5T磁共振機(jī)行常規(guī)T1WI、T2WI序列檢查及仰臥軸面DWI檢查。掃描參數(shù)為TR 1 250 ms,TE 65 ms,F(xiàn)OV 55 mm×55 mm,層間距0.2 mm,層厚3.0 mm,反轉(zhuǎn)角90°,激勵(lì)次數(shù)8,矩陣192×192。b值取800 s/mm2,自旋回波-回波平面成像加脂肪抑制。測(cè)量各組肝臟ADC值,ROI大小約15~20 mm2,盡量避開膽管、血管及肝臟邊緣,分別在肝左、右葉共取2個(gè)ROI測(cè)得數(shù)值的平均值做進(jìn)一步分析。DSA:各組大鼠于任意一側(cè)下肢消毒、鋪巾,以21 G靜脈留置針穿刺股靜脈,注射對(duì)比劑觀察IVC血流情況。

1.2.3 HE及免疫組化:正常組于造模后第12周,模型組及假手術(shù)組分別于術(shù)后1、4、8、12周行MRI檢查后,取MRI測(cè)量ROI相應(yīng)層面的新鮮肝組織適量,用10%福爾馬林固定24 h,石蠟包埋,制作組織切片,用于HE、免疫組織化學(xué)染色。免疫組織化學(xué)染色:石蠟切片脫蠟水化,3% H2O2室溫孵育5~10 min后PBS沖洗。滴加一抗,室溫孵育30~60 min后PBS沖洗。滴加通用型IgG抗體(Fab段)-HRP多聚體,室溫孵育10~20 min后PBS沖洗,應(yīng)用DAB溶液顯色,蒸餾水沖洗、復(fù)染、脫水、封片。以PBS代替一抗作為陰性對(duì)照,采用已知陽(yáng)性片作為陽(yáng)性對(duì)照,陽(yáng)性表達(dá)為結(jié)構(gòu)清晰的細(xì)胞胞漿棕黃染色。

1.2.4 Real-time PCR:肝組織液氮研磨后加入1 mL TRIzol勻漿,嚴(yán)格按照說(shuō)明書步驟提取總RNA,提取出的RNA逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,行Real-time PCR檢測(cè)。PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 2 min;95 ℃ 5 s,60 ℃ 10 s,40個(gè)循環(huán)。引物序列:β-actin上游序列:5′-CCCATC TATGAGGGTTACGC-3′,下游序列:5′-TTTAATGTC ACGCACGATTTC-3′;HIF-1α上游序列:5′-TGACCA CTGCTAAGGCATCA-3′,下游序列:5′-GGCTCCTT GGATGAGCTTTG-3′;NF-κB上游序列5′-AAGATCT GCCGAGTAAACCG-3′,下游序列:5′-TCCCGTGAA ATACACCTCAA-3′;基因相對(duì)表達(dá)量以2-△△Ct計(jì)算。

1.2.5 Western blotting:肝組織細(xì)胞裂解、離心后收集上清液,按照1:4加入5X SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液。沸水浴加熱10 min,冷卻到室溫,上樣到SDSPAGE膠加樣孔內(nèi),每孔5~20 μL。濃縮、分離后300 mA恒流轉(zhuǎn)膜90 min。漂洗5 min,室溫封閉2 h。一抗4 ℃孵育過(guò)夜,加入洗滌液(PBST),每次10 min,共3次,相應(yīng)二抗室溫孵育2 h。加入PBST洗滌液,每次10 min,共3次。使用ECL試劑盒檢測(cè)蛋白,以Image J軟件分析條帶灰度值,相對(duì)表達(dá)量依照內(nèi)參照結(jié)果計(jì)算。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

采用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料以(±s)表示,同一時(shí)間點(diǎn)各組ADC值、HIF-1α、NF-κB比較采用單因素方差分析;模型組、假手術(shù)組組內(nèi)各亞組比較采用單因素方差分析;兩兩比較采用LSD檢驗(yàn)。ADC與HIF-1α、NF-κB相關(guān)性分析采用以Pearson法。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 BCS模型大鼠建模情況

正常組存活15只;假手術(shù)組術(shù)后1、4、8、12周亞組分別存活15、14、15、15只;正常組及假手術(shù)組活動(dòng)如常、反應(yīng)機(jī)警,DSA均無(wú)陽(yáng)性表現(xiàn)。模型組術(shù)后1、4、8、12周亞組分別存活14、13、14、13只,活動(dòng)逐漸減少、反應(yīng)遲鈍,毛色灰暗,存活大鼠均成功建立BCS模型,肝后段IVC管腔變窄,遠(yuǎn)端擴(kuò)張,4周后逐漸見側(cè)支循環(huán)形成(圖2)。

圖2 模型組12周DSA圖:肝后段IVC管腔閉塞(紅箭),遠(yuǎn)端擴(kuò)張,見廣泛側(cè)支循環(huán)形成(黃箭)

2.2 BCS模型大鼠MRI表現(xiàn)

各組大鼠常規(guī)MRI T1WI掃描肝實(shí)質(zhì)信號(hào)均勻,肝表面光整(圖3A~C)。正常組與假手術(shù)組ADC值差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);正常組ADC值均高于模型組(P<0.05);模型組與假手術(shù)組ADC值整體差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,隨后兩兩比較,模型組均低于同一時(shí)間的假手術(shù)亞組(P<0.05),見表1。

模型組ADC值隨時(shí)間進(jìn)展先下降后升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,表1);隨后各亞組間兩兩比較,1周組高于4周組、1周組高于8周組、4周組低于12周組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),ADC值在4周組最低,見圖3D和表1。

2.3 BCS模型大鼠HE及免疫組化結(jié)果

正常組及假手術(shù)組大鼠觀察至第12周,HE染色均無(wú)陽(yáng)性表現(xiàn),肝細(xì)胞規(guī)律排列,形態(tài)正常,肝血竇未見明顯擴(kuò)張(圖4A~B)。模型組大鼠肝臟病理?yè)p傷逐漸加重,1周組肝細(xì)胞規(guī)律排列,形態(tài)正常,肝血竇未見擴(kuò)張(圖4C);4周組肝細(xì)胞呈玻璃樣變性,肝血竇輕度擴(kuò)張伴少量紅細(xì)胞淤積(圖4D);8周組肝細(xì)胞玻璃樣變性加重,肝血竇擴(kuò)張伴較多紅細(xì)胞淤積(圖4E);12周組肝細(xì)胞壞死,胞漿紅染,肝血竇明顯擴(kuò)張伴大量紅細(xì)胞淤積(圖4F)。

圖3 各組大鼠肝臟T1WI圖

表1 各組大鼠ADC值(×10-3 mm2/s)比較(各亞組n=9,±s)

表1 各組大鼠ADC值(×10-3 mm2/s)比較(各亞組n=9,±s)

注:與1周組比,*P<0.05;與4周組比,#P<0.05;與8周組比,△P<0.05;與12周組比,☆P<0.05;正常組 vs 模型4周組、8周組,均P<0.05;假手術(shù)組 vs 模型4周組、8周組,均P<0.05。

時(shí)間 模型組 假手術(shù)組 正常組 F值 P值1周 1.23±0.08#△ 1.26±0.07 1.27±0.08 1.497 0.244 4周 1.03±0.09*☆ 1.28±0.05 1.27±0.08 34.199 0.001 8周 1.12±0.09* 1.28±0.06 1.27±0.08 10.079 0.001 12周 1.18±0.07# 1.27±0.08 1.27±0.08 4.045 0.031 F值 11.184 1.143 — — —P值 0.001 0.934 — — —

正常組(圖5A)、假手術(shù)組(圖5B)觀察至第12周,HIF-1α未見陽(yáng)性染色,模型組第4周HIF-1α(圖5C)陽(yáng)性染色最顯著,位于血管內(nèi)皮細(xì)胞、匯管區(qū)間質(zhì)細(xì)胞和膠原組織;正常組(圖5D)、假手術(shù)組(圖5E)觀察至第12周NF-κB未見陽(yáng)性染色,模型組第4周NF-κB(圖5F)陽(yáng)性染色最顯著,位于血管內(nèi)皮細(xì)胞、匯管區(qū)間質(zhì)細(xì)胞和膠原組織。

2.4 BCS模型大鼠HIF-1α檢測(cè)結(jié)果

組間比較,術(shù)后1、4、8、12周,同一時(shí)間點(diǎn),三組之間HIF-1α的mRNA及蛋白表達(dá)水平均存在統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,兩兩比較發(fā)現(xiàn)正常組與假手術(shù)組無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),模型組高于假手術(shù)組和正常組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。

圖4 術(shù)后12周各組大鼠肝臟病理圖片(HE,×200)

組內(nèi)比較,隨著梗阻時(shí)間延長(zhǎng),模型組HIF-1α的mRNA及蛋白水平先升高后下降,BCS模型造模后4周最高,整體差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=877.911、333.136,P<0.05),兩兩比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05)。假手術(shù)組內(nèi)比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。正常組只有一個(gè)時(shí)間點(diǎn)的數(shù)值,不做比較。詳見表2和圖6。

2.5 BCS模型大鼠NF-κB檢測(cè)結(jié)果

組間比較,術(shù)后1、4、8、12周,同一時(shí)間點(diǎn),三組之間NF-κB的mRNA及蛋白表達(dá)水平均存在統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,兩兩比較發(fā)現(xiàn)正常組與假手術(shù)組無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),模型組高于假手術(shù)組和正常組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。

組內(nèi)比較,隨著梗阻時(shí)間延長(zhǎng),模型組NF-κB的mRNA及蛋白水平先升高后下降,BCS模型造模后4周最高,整體差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=265.148、334.147,P<0.05),兩兩比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05)。假手術(shù)組內(nèi)比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。正常組只有一個(gè)時(shí)間點(diǎn)的數(shù)值,不做比較。詳見表3和圖6。

2.6 各指標(biāo)間相關(guān)性分析

模型組ADC值與HIF-1α、NF-κB負(fù)相關(guān);HIF-1α與NF-κB正相關(guān);詳見圖7A~C和表4。

3 討論

BCS隨著肝靜脈回流受阻后淤血缺氧加重,可造成肝細(xì)胞水腫、肝微循環(huán)障礙、細(xì)胞外基質(zhì)沉積等,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)外水分子和灌注的改變,可早于肝臟形態(tài)學(xué)改變被DWI檢測(cè)[5-6]。

圖5 各組大鼠免疫組化圖片(×200)

表2 三組大鼠HIF-1α mRNA及蛋白比較(各組n=9,±s)

表2 三組大鼠HIF-1α mRNA及蛋白比較(各組n=9,±s)

組別1周 4周 8周 12周 F(P)值mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白正常組 1.03±0.11 0.31±0.04 1.03±0.11 0.31±0.04 1.03±0.110.31±0.04 1.03±0.110.31±0.04 - -假手術(shù)組 1.05±0.10 0.31±0.03 1.04±0.08 0.30±0.02 1.01±0.090.28±0.04 1.02±0.110.31±0.03 1.022(0.309) 0.714(0.547)模型組 1.70±0.19 0.65±0.04 7.26±0.87 1.28±0.06 4.67±0.241.04±0.07 3.26±0.240.79±0.03 877.911(0.001)333.136(0.001)F值 119.816 253.294 1617.693 1379.092 632.139 1435.154 593.070 1085.194 P值 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001

圖6 各組HIF-1α、NF-κB蛋白表達(dá)圖

表3 三組大鼠NF-κB mRNA及蛋白比較(各組n=9,±s)

表3 三組大鼠NF-κB mRNA及蛋白比較(各組n=9,±s)

組別1周 4周 8周 12周 F(P)值mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白 mRNA 蛋白正常組 1.02±0.080.33±0.02 1.02±0.08 0.33±0.02 1.02±0.080.33±0.02 1.02±0.080.33±0.02 - -假手術(shù)組 1.01±0.09 0.35±0.04 0.99±0.12 0.36±0.08 1.02±0.100.32±0.06 0.98±0.090.34±0.07 0.482(0.697) 0.861(0.471)模型組 1.79±0.18 0.72±0.09 6.87±0.78 1.45±0.09 4.77±0.641.19±0.12 3.57±0.370.88±0.11 265.148(0.001)334.147(0.001)F值 467.294 158.382 548.342 810.293 576.327 682.753 664.178 187.423 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01

圖7 各指標(biāo)相關(guān)性散點(diǎn)圖

表4 ADC值與HIF-1α、NF-κB相關(guān)性分析(相關(guān)系數(shù)r)

HIF-1α是調(diào)節(jié)參與細(xì)胞對(duì)缺氧反應(yīng)的轉(zhuǎn)錄因子,在缺氧期間高表達(dá),進(jìn)而誘導(dǎo)肝臟損傷[9-10]。NF-κB是與免疫球蛋白K輕鏈基因增強(qiáng)子B位點(diǎn)特異性結(jié)合的核蛋白因子,在各種類型的肝損傷及肝纖維化中發(fā)揮作用[11]。本研究發(fā)現(xiàn)模型組HIF-1α、NF-κB水平均高于正常組及假手術(shù)組,且互為正相關(guān),提示其可能相互調(diào)節(jié)并參與了BCS模型肝損傷的進(jìn)展。模型組HIF-1α、NF-κB先升后降,不同于其他原因肝病中隨肝損傷進(jìn)展持續(xù)上升的報(bào)道[10,12-13],說(shuō)明其誘導(dǎo)BCS肝損傷的機(jī)理有所不同,可能是肝臟淤血缺氧后上調(diào)HIF1α表達(dá),激活其下游TGF-β1、PDGF-B等信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化,上調(diào)NF-κB,進(jìn)而誘導(dǎo)肝臟淤血缺氧損傷[12,14];其后隨側(cè)支循環(huán)緩解淤血缺氧,從而下調(diào)HIF-1α、NF-κB的水平,但其始終高于正常,說(shuō)明側(cè)支循環(huán)僅可部分緩解淤血缺氧,而無(wú)法從根本解決BCS淤血性肝損傷[15]。

本研究中,模型組ADC值低于正常組及假手術(shù)組,說(shuō)明BCS肝組織存在水分子彌散受限,模型組的ADC值先下降后上升,與HIF-1α、NF-κB水平先上升后下降形成負(fù)相關(guān),不同于其他原因肝病中隨肝損傷進(jìn)展持續(xù)下降的報(bào)道[16-17],這可能是因?yàn)殡S著IVC結(jié)扎時(shí)間延長(zhǎng),肝淤血缺氧加重,引發(fā)HIF1α持續(xù)高表達(dá)及氧自由基增加,激活NF-κB及TGF-β1等信號(hào),導(dǎo)致其下游靶基因的激活和HSC的活化,抑制ECM降解[12-14];另一方面,HV回流受阻,減弱水分子擴(kuò)散能力和微循環(huán)灌注,肝細(xì)胞線粒體腫脹[5],改變細(xì)胞膜的流動(dòng)性和通透性,降低ADC值[5,18],故而與HIF-1α、NF-κB負(fù)相關(guān),這與病理結(jié)果中肝細(xì)胞腫脹、肝竇淤血相符,提示ADC值可反映BCS肝淤血缺氧程度。模型組隨著側(cè)支循環(huán)建立,緩解淤血缺氧及氧化應(yīng)激,細(xì)胞內(nèi)外水分子擴(kuò)散及微循環(huán)的代償性改善表現(xiàn)為ADC值升高以及HIF-1α、NF-κB下調(diào)[12-14],這提示三者的變化與淤血缺氧密切相關(guān)。然而,ADC值雖有升高,仍低于正常,說(shuō)明側(cè)支循環(huán)雖部分緩解了淤血,但肝臟病理?yè)p傷仍緩慢進(jìn)展,這與大量臨床報(bào)道相符[15,19],說(shuō)明只有介入開通梗阻靜脈才是治療BCS的根本手段。

值得注意的是,本研究還存在局限性:大鼠肝臟體積較小,呼吸運(yùn)動(dòng)及肺底和腹腔氣體等均可能影響ADC值及病理取材的準(zhǔn)確性。大鼠生命周期有限,尚無(wú)法完美模擬人體長(zhǎng)達(dá)數(shù)十年的BCS病程。

本研究建立大鼠BCS動(dòng)物模型,動(dòng)態(tài)檢測(cè)了ADC值、HIF-1α、NF-κB的變化,發(fā)現(xiàn)隨著IVC結(jié)扎時(shí)間延長(zhǎng),BCS肝臟ADC值與HIF-1α、NF-κB負(fù)相關(guān),三者隨著側(cè)支循環(huán)緩解淤血缺氧,改善細(xì)胞水腫及微血管灌注而升高(下降),說(shuō)明這幾個(gè)指標(biāo)與BCS的肝淤血缺氧損傷存在一定相關(guān)性,可作為無(wú)創(chuàng)評(píng)估BCS肝損傷的一個(gè)新的選擇。

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MALDI-TOF MS直接鑒定血培養(yǎng)陽(yáng)性標(biāo)本中的病原菌
IL-17A促進(jìn)肝部分切除后IL-6表達(dá)和肝臟再生
肝細(xì)胞程序性壞死的研究進(jìn)展
肝細(xì)胞癌診斷中CT灌注成像的應(yīng)用探析
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