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不同分子量雙參多糖抗氧化活性研究

2020-06-05 02:34李彩藝謝文靜王福生
中國民族民間醫(yī)藥 2020年8期
關鍵詞:超氧蒸餾水陰離子

李彩藝 謝文靜 王福生

大理大學藥學與化學學院,大理 671000

多糖是由10個及以上的單糖通過糖苷鍵連接而成的糖,屬于高分子化合物。研究表明許多植物多糖具有免疫調節(jié)、降血脂、降血糖、抗腫瘤等生物活性[1]。雙參(Triplostegiaglandulifera)為川續(xù)斷科雙參屬植物,又稱蘿卜參、對對參、童子參、肚拉、土洋參和一支蒿等,主要產(chǎn)于云南、西藏、四川等地[2-3],課題組前期對雙參小分子化合物進行了系列研究,尚未見文獻報道雙參多糖的研究。本課題旨在研究雙參不同分子量雙參多糖的抗氧化活性,以期為進一步研究雙參多糖結構與活性提供參考依據(jù)。

1 儀器與材料

1.1 儀器 HPLC-1260型高效液相色譜儀;FY135型中草藥粉碎機(天津泰斯特儀器有限公司);湘立離心機TD5A-WS(湖南湘立科學儀器有限公司);Shodex OHpak 804色譜柱(300 mm×7.5 mm)。

1.2 材料 右旋糖苷系列標準品180 Da(批號:140637-201203)、2500 Da(批號:140638-201203)、4600 Da(批號:140639-201203)、7100 Da(批號:140640-201203)、10000 Da(批號:140641-201203)、21400 Da(批號:140642-201203)、41100 Da(批號:140643-201203)、84400 Da(批號:140644-201203)、133800 Da(批號:140645-201203)、2000 kDa(批號:140646-201203)均購自中國食品藥品檢定研究院;1 mol/L Tis-Hcl緩沖液(批號:20190219,北京索萊寶公司)、DPPH(1,1-二苯基-2-苦基肼自由基,批號:ZZZQK-EE,梯希愛化成工業(yè)發(fā)展有限公司),水楊酸、H2O2、鄰苯三酚、VC均購自國藥集團化學試劑有限公司。

雙參植物于2017年10月采自于云南省大理州云龍縣五寶山,經(jīng)大理大學段寶忠教授鑒定為川續(xù)斷科雙參屬植物雙參(TriplostegiaglanduliferaWall.)的地下根,植物樣本(編號:WFS-20171017)存放于大理大學藥學與化學學院王福生教授課題組。

2 方法

2.1 提取與分離 取雙參塊根進行干燥(50 ℃恒溫干燥),利用粉碎機粉碎雙參塊根至80目篩制成干粉備用。稱取干燥的雙參粉末1 Kg,加入95%乙醇2 L冷浸過夜,棄上清,濾出藥渣,加入2 L蒸餾水置于索式提取器中加熱回流,每次2 h,此操作重復三次,合并續(xù)濾液,經(jīng)減壓濃縮后利用Sevag法去除蛋白,萃取后上層為蛋白質層,棄去,濃縮下層濾液成浸膏200 g溶解至蒸餾水中通過AB-8大孔吸附樹脂柱層析脫去色素等小分子雜質,依次采用蒸餾水、30%甲醇-水和60%甲醇-水洗脫劑洗脫。以苯酚硫酸法監(jiān)測合并具有同一峰型的洗脫成分即得雙參粗多糖,將雙參粗多糖減壓濃縮至600 mL。采用分步醇沉的方法,依次加入無水乙醇至醇沉濃度分別為 40%,60%和80%,置4 ℃冰箱內過夜。3500 rpm離心10 min,沉淀冷凍干燥分別得不同分子量的雙參多糖TGPA、TGPB和TGPC。

2.2 不同分子量雙參多糖相對分子質量測定

2.2.1 色譜條件 色譜柱:Shodex OHpak 804(300 mm×7.5 mm);流動相:超純水;濃度:標準品及樣品質量濃度均為1 mg/mL;進樣量:10 μL;體積流量:0.5 mL/min;柱箱溫度:35℃;氮氣流速:1.3 mL/min,蒸發(fā)光檢測器蒸發(fā)溫度:55℃;霧化溫度:45℃。

2.2.2 含量測定 將右旋糖酐標準品180、2500、4600、7100、10000、21400、41100、84400、133800 Da、2000 KDa依次進樣,測定保留時間。以相對分子質量對數(shù)(log Mw)為縱坐標保留時間(tR)為橫坐標繪制標準曲線。根據(jù)線性回歸方程計算樣品的Mw。

2.3 清除DPPH活性作用的測定 精密稱取DPPH粉末0.0128 g于50 mL容量瓶加入無水甲醇定容至刻度線,配制成0.65 mmol/L的DPPH-甲醇溶液,將多糖溶液配制成濃度為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL的樣品溶液,向96孔板中加入50 μL不同濃度的樣品溶液,每個樣品濃度設5個復孔,再向各孔中加入150 μL DPPH甲醇溶液,以相同濃度的Vc溶液作陽性對照組,蒸餾水作空白對照,于室溫黑暗處放置30 min后,酶標儀517 nm波長處測定吸光度值。根據(jù)公式1計算TGPA、TGPB和TGPC的清除率。

公式1=(Ablank-Asample)/Ablank

2.4 清除超氧陰離子作用測定 按照 Kao 等方法[4],將多糖溶液配制成濃度0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL的樣品溶液。取10 mL試管加入1 mL多糖溶液,依次向試管中加入0.05 mol/L Tis-HCl(pH=8.2)4.5 mL,25 mmol/L鄰苯三酚0.4 mL,于25℃水浴反應5 min后,加入8 mmol/L HCl 1 mL終止反應,以相同濃度的Vc作陽性對照組,蒸餾水作空白對照組。于299 nm處測定吸光度值,根據(jù)公式2計算不同醇沉濃度多糖對超氧陰離子的清除率。

公式2=(Ablank-Asample)/Ablank

3 結果

3.1 相對分子量的測定 根據(jù)系列不同分子量系列的標準品,按照相對分子質量對數(shù)(log Mw)為縱坐標;保留時間(tR)為橫坐標繪制標準曲線,得曲線方程式為:y=-0.3491x+9.9531,R2=0.994。根據(jù)高效凝膠出峰時間(圖2所示)可知TGPA分子量范圍為1600~2000 KDa ;TGPB分子量范圍為630~2000 KDa ;TPGC分子量范圍為230~2000 KDa。其中TGPA主要的分子量為2000 KDa、TGPB主要為 691830KDa、 TGPC主要為575439KDa。如圖1所示。

3.2 抗氧化活性 由圖2可知,TGP-(A-C) 對DPPH和超氧陰離子的清除作用結果顯示:在不同濃度下TGPA、TGPB和TGPC均對DPPH自由基和超氧陰離子均有一定的清除作用,其清除能力呈濃度依賴性。不同分子量的雙參多糖對DPPH的清除作用效果沒有太大的差距。而對于超氧陰離子的清除作用中,TGPC清除超氧陰離子的效果最為顯著。TGPA和TGPB對超氧陰離子的清除也有一定的效果,其中TGPA的清除效果最弱。

4 結論

近年來,隨著多糖研究的不斷深入,發(fā)現(xiàn)植物多糖具有很多良好的生物活性。例如抗腫瘤、抗疲勞、降血糖等生物活性。而對雙參多糖的研究尚未見其報道。本實驗將雙參多糖經(jīng)水提醇沉、Sevag法脫蛋白、AB-8大孔吸附樹脂柱分離,分步醇沉得到不同分子量的雙參多糖。以蒸餾水作流動相,蒸發(fā)光檢測器檢測,采用不同分子量標準品建立標準曲線,從而確定雙參多糖的分子量。理論上,分步醇沉中,低體積分數(shù)的乙醇溶液沉淀下來的雙參多糖相對分子質量越大,而上清液部分則是相對分子質量小的雙參多糖或寡糖,隨著醇沉的次數(shù)增多,沉淀體積越來越少,離心后依舊存在少量沉淀部分存在上清液中,導致分子量存在交叉。由于交叉存在量很少可忽略不計。綜合藥理活性結果表明:不同分子量段的雙參多糖均對DPPH體系和超氧陰離子體系具有清除作用,TGPA、TGPB和TGPC對DPPH的清除作用遠遠低于Vc的清除作用,而對超氧陰離子的清除作用中可以看出TGPC的清除作用遠大于TGPA和TGPB雙參多糖,當濃度達到1 mg/mL時清除超氧陰離子的作用與抗壞血酸作用相當。從而可以進一步推測在TGPC雙參多糖具有更好的清除作用,繼而為雙參均一多糖的分離純化、結構表征、藥理活性及其作用機制的進一步研究提供了基礎材料。

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