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復(fù)合酶輔助高壓法提取金針菇黃酮的純化及活性測定

2020-06-23 03:02:22王廣慧譚吉麗杜艷超楊靜怡尚雅楠任麗娜
中國飼料 2020年7期
關(guān)鍵詞:金針菇大孔蒸餾水

王廣慧,譚吉麗,杜艷超,楊靜怡,尚雅楠,任麗娜

(綏化學(xué)院食品與制藥工程學(xué)院,黑龍江綏化 152061)

金針菇(FLammuLina veLutipes(Fr.)Sing)屬于典型的木腐生菌類,口感香脆滑嫩、味道鮮美,而且含有多種生物活性物質(zhì)如多糖、黃酮類化合物和其他免疫調(diào)節(jié)蛋白等,其中金針菇黃酮在抗氧化、抗腫瘤、抗誘變和改善記憶等方面具有明顯功效(譚一羅等,2018),可開發(fā)為人及動物的保健食品。大孔吸附樹脂因其具有理化性質(zhì)穩(wěn)定,不溶于強(qiáng)酸、強(qiáng)堿和有機(jī)溶劑中,對有機(jī)物選擇性好,不受無機(jī)鹽等離子和低分子化合物影響,節(jié)省費(fèi)用等諸多優(yōu)點(diǎn),常被用于天然產(chǎn)物中有效成分的分離及純化,但目前對大孔樹脂純化金針菇黃酮的研究報(bào)道較少。王廣慧(2016)對復(fù)合酶輔助高壓法提取金針菇黃酮的工藝條件進(jìn)行了優(yōu)化研究,本文將在此基礎(chǔ)上繼續(xù)探討利用此法提取的金針菇黃酮經(jīng)X-5型大孔樹脂純化后的抑菌性及抗氧化性問題,并對X-5型大孔樹脂純化金針菇黃酮的最佳工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,以期能為金針菇黃酮的開發(fā)利用提供一定的理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑 金針菇、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)、大腸桿菌(Escherichia coli)、金黃色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus)、沙門氏菌(salmonella enteritidis),由綏化學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室提供;X-5型大孔吸附樹脂,購自鄭州勤實(shí)科技有限公司;亞硝酸鈉、硝酸鋁、乙醇、氫氧化鈉等化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純,購自天津市博迪化工有限公司;木瓜蛋白酶、纖維素酶,購自北京奧博星生物科技有限責(zé)任公司。

1.2 主要儀器 HL-2型恒流泵,上海青浦滬西儀器廠;752型紫外-可見分光光度計(jì),上海菁華科技儀器有限公司;TGL-20bR型冷凍離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;PHS-25酸度計(jì),上海偉業(yè)儀器廠;YXQ-LS-75SⅡ型立式壓力蒸汽滅菌器,上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;FW100型高速萬能粉碎機(jī),天津市泰斯特儀器有限公司;普通玻璃層析柱(16 mm×240 mm),上海青浦滬西儀器廠;牛津杯(內(nèi)徑6 mm),上海魯碩實(shí)業(yè)有限公司;ZD-85型氣浴恒溫振蕩器,江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 黃酮含量的測定 采用硝酸鋁-亞硝酸鈉法測定金針菇中黃酮的含量。標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制及線性回歸方程的獲得參見王廣慧(2016)報(bào)道的方法。

1.3.2 復(fù)合酶輔助高壓法提取金針菇黃酮 將金針菇干品用高速萬能粉碎機(jī)粉碎,過80目篩。稱取金針菇干粉,放入錐形瓶中,按照 1:35(g/mL)的料液比加入pH為6的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液和樣品量1.00%的復(fù)合酶 (木瓜蛋白酶和纖維素酶按質(zhì)量比1:1混合)。將錐形瓶放入50℃恒溫水浴鍋中酶解80 min。然后在115℃下進(jìn)行高壓熱水浸提40 min。提取后以3500 r/min離心處理10 min,將上清液蒸發(fā)濃縮后加入3倍體積濃度為95%的乙醇,于4℃下醇沉12 h,將多糖等雜質(zhì)離心除去,留上清液備用(王廣慧,2016)。

1.3.3 X-5型大孔吸附樹脂的預(yù)處理 稱取X-5型大孔樹脂放于錐形瓶中,加入體積濃度為95%的乙醇浸泡24 h后,先用95%乙醇洗至流出液清亮、無渾濁,再用蒸餾水洗至無醇味。然后分別用酸堿處理,即以5%(g/g)的 HCl溶液浸泡 4 h,蒸餾水洗至中性,再用 4%(g/g)的NaOH溶液浸泡4 h,蒸餾水洗至中性,備用。按如下公式計(jì)算大孔樹脂的吸附率和解析率:

式中:C1、C2、C3分別為上樣液黃酮質(zhì)量濃度、飽和時(shí)流出液黃酮質(zhì)量濃度、洗脫液黃酮質(zhì)量濃度,mg/mL;V1、V2、V3分別表示飽和時(shí)上樣液消耗的體積、飽和時(shí)流出液體積、洗脫液體積,mL。

1.3.4 X-5型大孔吸附樹脂純化金針菇黃酮工藝的優(yōu)化 將處理后的樹脂裝入層析柱中,裝柱高度為12 cm。先以樹脂對金針菇黃酮的飽和吸附率為評價(jià)指標(biāo),分別探討樣品液pH、樣品液濃度、樣品液流速對吸附率的影響,然后再以黃酮解吸率為評價(jià)指標(biāo),分別考察洗脫液濃度、洗脫速率、洗脫劑用量對解析率的影響(張星等,2017;吳海霞等,2013;王國軍等,2013)。

1.3.5 純化前后金針菇黃酮純度的對比 在最佳條件下進(jìn)行吸附和洗脫,對比吸附前的黃酮純度和洗脫后的黃酮純度,即通過計(jì)算黃酮在解析液及樣品液烘干后物質(zhì)中所占的比例,得到純化倍數(shù)。做平行試驗(yàn)3次。

1.3.6 純化后金針菇黃酮的抑菌能力檢測 采用抑菌圈法測定純化后金針菇黃酮對金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、沙門氏菌4種常見菌種的抗菌活性(曹培杰等,2019;許偉等,2010)。

1.3.6.1 菌懸液的制備 將活化后的菌種放置在37℃恒溫振蕩器中,以轉(zhuǎn)速120 r/min連續(xù)振蕩培養(yǎng)約24 h。當(dāng)菌懸液在波長600 nm處OD值為0.1時(shí)取出備用。此時(shí)菌體濃度約為106~107菌落形成單位(cfu/mL)。

1.3.6.2 抑菌試驗(yàn) 在LB培養(yǎng)基平板上加入各菌懸液0.1 mL,用涂布棒涂布均勻,插入牛津杯。將0.1 mL不同質(zhì)量濃度(mg/mL)經(jīng)生理鹽水稀釋的金針菇黃酮溶液加入杯中,以生理鹽水作為對照,置于37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后觀察統(tǒng)計(jì)抑菌圈大小,并評價(jià)其抑菌效果。所有試驗(yàn)均設(shè)3組平行。

1.3.7 金針菇黃酮的抗氧化性研究 根據(jù)楊文建等(2017)和弓威等(2015)的方法進(jìn)行金針菇黃酮的抗氧化研究。

1.3.7.1 對DPPH·清除能力的測定 在具塞試管中加入濃度為1.0×10-4mol/L的DPPH溶液3.5 mL和無水乙醇0.5 mL,閉光靜置30 min,測定其在517 nm下吸光度A0;以0.5 mL樣品液代替0.5 mL無水乙醇,其余同上,測出吸光度A1;取 3.5 mL無水乙醇與0.5 mL樣品液,相同波長下測得吸光度A2。以3.5 mL無水乙醇和0.5 mL蒸餾水的混合液作為空白對照。平行測定3次,取平均值。同時(shí)以Vc為對照。

1.3.7.2 對O2-·清除能力的測定 向試管中加入2.8 mL pH 8.2的Tris-HCl緩沖液 (50 mmol/L)及0.1 mL不同濃度的黃酮提取液,放入25℃恒溫水浴鍋中,保溫10 min,加入0.1 mL同樣條件下預(yù)溫的60 mmol/L鄰苯三酚 (以60 mmol/L鹽酸配制),立即搖勻,倒入比色杯中,在420 nm處每隔0.5 min測一次吸光值,此吸光值記為A1。

用0.1 mL同樣條件下預(yù)溫的HCl溶液(60 mmol/L)代替鄰苯三酚,其余步驟同上,測得吸光值A(chǔ)2;保留鄰苯三酚,但用0.1 mL蒸餾水替代黃酮提取液,其余操作同上,測得吸光值A(chǔ)0。平行測定3次,取平均值。同時(shí)以Vc作為對照。

1.3.7.3 對OH·清除能力的測定 在試管中加入1.0 mL不同濃度的黃酮提取液,然后依次加入2.00 mL的 1.8 mmoL/mL FeS04溶液、1.5 mL的1.8 mmoL/mL水楊酸-乙醇、0.10 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.03%的H2O2溶液,振蕩混合,放入37℃恒溫水浴鍋中保溫30 min,然后在510 nm下測定吸光度值 A1;用 0.10 mL蒸餾水代替 H2O2,重復(fù)上述操作,測得吸光度值A(chǔ)2;保留過氧化氫,但用蒸餾水代替黃酮提取液,重復(fù)上述操作,測得吸光值A(chǔ)0。以Vc作為對照。

1.3.7.4 對ABTS·清除能力的測定 精密稱取ABTS 40.00 mg,依次加入10 mL蒸餾水,8.00 mL的1.0 mg/mL過硫酸鉀,在室溫避光條件下靜置16 h,然后轉(zhuǎn)移到250 mL容量瓶中,加32 mL蒸餾水,用無水乙醇定容至刻度,放置10 h備用。

在5只試管中依次加入0.5 mL不同濃度的黃酮提取液、1.5 mL 95%乙醇、2 mL配好的ABTS溶液,混合,靜置30 min,在734 nm波長下測出吸光度值A(chǔ)1;用2 mL蒸餾水代替ABTS溶液,其他步驟同上,測得吸光度A2;保留ABTS溶液,但以95%乙醇代替黃酮提取液,其他步驟同上,測出吸光度值A(chǔ)0。同時(shí)以Vc作為對照。

2 結(jié)果與分析

2.1 線性回歸方程 按照王廣慧(2016)所述方法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性回歸方程為y=0.0949x+0.0024,R2=0.9992,其中 y 為吸光度值,x為蘆丁濃度(mg/mL)。

2.2 X-5型大孔樹脂純化金針菇黃酮工藝的優(yōu)化

2.2.1 樣品液pH對飽和吸附率的影響 用5%鹽酸溶液和2%的NaOH溶液調(diào)節(jié)樣品液pH,分別設(shè)定為 4、5、6、7、8,上樣流速為 0.35 mL/min,上樣濃度為1.2 mg/mL,進(jìn)行吸附試驗(yàn)并計(jì)算飽和吸附率(即當(dāng)流出液的濃度達(dá)到初始濃度的1/10時(shí),即可認(rèn)為樹脂已吸附飽和)。每個(gè)樣品做三組平行試驗(yàn),取平均值,試驗(yàn)結(jié)果見圖1。

由圖1可知,樣品液pH太大和太小都不利于黃酮的吸附,原因可能是在弱酸狀態(tài)下,黃酮類化合物以分子形式存在,容易被大孔樹脂吸附,但酸性較強(qiáng)時(shí),黃酮分子中的氧原子易形成鹽而帶上正電荷,不易被吸附;在偏堿性的狀態(tài)下,黃酮分子羥基中的氫易解離,所以不容易被大孔樹脂吸附。因此選擇pH 5作為X-5大孔吸附樹脂吸附金針菇黃酮的最佳pH。

2.2.2 樣品液濃度對飽和吸附率的影響 調(diào)節(jié)樣品液pH為5,設(shè)定樣品液濃度分別為0.8、1.0、1.2、1.4、1.6 mg/mL, 上樣流速為 0.35 mL/min,進(jìn)行吸附試驗(yàn)并計(jì)算飽和吸附率。試驗(yàn)結(jié)果見圖2。

由圖2可知,當(dāng)樣品液濃度為1.4 mg/mL時(shí),金針菇黃酮的吸附率最大,原因可能是樣品液濃度太大,超過了樹脂吸附的極限,黃酮就會過早流出,不易被吸附,導(dǎo)致吸附率降低;樣品液濃度太小,不足以被大孔樹脂吸附。因此選擇1.4 mg/mL濃度作為X-5大孔吸附樹脂吸附金針菇黃酮的最適濃度。

2.2.3 樣品液流速對飽和吸附率的影響 在樣品液濃度為1.4 mg/mL,pH為5的條件下,設(shè)定樣品液流速分別為 0.20、0.35、0.5、0.65、0.80 mL/min,進(jìn)行吸附試驗(yàn)并計(jì)算飽和吸附率。試驗(yàn)結(jié)果見圖3。

由圖3可知,樣品液流速為0.2 mL/min時(shí)吸附率最高,原因可能是流速較慢時(shí)提取液與樹脂接觸的時(shí)間較長,有利于黃酮類物質(zhì)擴(kuò)散到樹脂內(nèi)部,從而提高了吸附率。

2.2.4 洗脫劑濃度對解析率的影響 在最佳條件下吸附飽和的樹脂用蒸餾水清洗至無色,然后用乙醇洗脫。乙醇體積分?jǐn)?shù)分別為40%、50%、60%、70%、80%,洗脫流速為2 mL/min,乙醇用量為50 mL,計(jì)算總黃酮解析率。試驗(yàn)結(jié)果見圖4。

由圖4可知,當(dāng)洗脫劑體積分?jǐn)?shù)為70%時(shí),洗脫效果最好,原因可能是由于70%乙醇溶液與黃酮的極性最接近。根據(jù)“相似者相溶”的原理,此乙醇濃度下最有利于黃酮的洗脫。

2.2.5 洗脫劑流速對解析率的影響 采用70%乙醇溶液50 mL進(jìn)行洗脫,設(shè)定洗脫劑流速分別為 1、2、3、4、5 mL/min,計(jì)算總黃酮解析率。 試驗(yàn)結(jié)果見圖5。

由圖5可知,洗脫速率越慢解析率越高,洗脫速率太快不宜于金針菇黃酮的洗脫,原因可能是流速越慢洗脫劑與樹脂的接觸越充分,洗脫的也更徹底,因此選擇1 mL/min為金針菇黃酮的最佳洗脫速率。

2.2.6 洗脫劑用量對解析率的影響 采用70%乙醇溶液以1 mL/min的速率進(jìn)行洗脫,設(shè)定洗脫劑用量為 10、20、30、40、50、60 mL,計(jì)算總黃酮解析率。試驗(yàn)結(jié)果見圖6。

由圖6可知,在洗脫劑用量為60 mL時(shí),樹脂上吸附的黃酮類化合物完全被洗出,因此選洗脫液的最佳用量為60 mL。

2.3 純化前后金針菇黃酮純度的對比 由表1可知,三組平行試驗(yàn)中純化后金針菇黃酮的純度平均是純化前的1.83倍,可見用此工藝條件純化金針菇黃酮效果較好。

表1 純化前和純化后的黃酮純度

2.4 純化后金針菇黃酮的抑菌性研究結(jié)果 由表2可知,在測試濃度范圍內(nèi),幾個(gè)菌種的培養(yǎng)基上均有抑菌圈形成,可見金針菇黃酮對4種菌體均有不同程度的抑制作用,其抑菌效果隨著金針菇黃酮濃度的增大而增強(qiáng)。抑菌程度大小的順序?yàn)椋捍竽c桿菌>沙門氏菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌。

表2 黃酮濃度對菌種抑菌圈直徑的影響

2.5 金針菇黃酮的抗氧化性研究結(jié)果

2.5.1 對DPPH·清除能力的測定結(jié)果 由圖7可知,當(dāng)濃度為0.25~0.85 mg/mL時(shí),金針菇黃酮和Vc對DPPH·的清除率都隨著濃度的加大而升高,但在同濃度下金針菇黃酮的清除率明顯低于Vc。

2.5.2 對O2-·清除能力的測定結(jié)果 由表3可知,在一定濃度下,隨著時(shí)間的延長,金針菇黃酮和VC對O2-·的清除率都呈下降趨勢。當(dāng)濃度為0.25~0.85 mg/mL時(shí),二者對O2-·的清除率都隨著濃度的加大而提高,但金針菇黃酮的清除率總體上來看比相同濃度時(shí)的Vc低。

2.5.3 對OH·清除能力的測定結(jié)果 由圖8可知,當(dāng)濃度為0.25~0.85 mg/mL時(shí),金針菇黃酮和VC對OH·的清除率都隨濃度的增加而增加,但在同濃度下,金針菇黃酮對OH·的清除能力比Vc弱。

2.5.4 對ABTS·清除能力的測定結(jié)果 由圖9可知,當(dāng)濃度為0.25~0.85 mg/mL時(shí),金針菇黃酮和Vc對ABTS·的清除率均隨二者濃度的增加而升高,但當(dāng)濃度相同時(shí),前者的清除率明顯弱于后者。

3 結(jié)論

本文主要是對采用復(fù)合酶輔助高壓法提取的金針菇黃酮經(jīng)X-5型大孔樹脂純化后的抑菌和抗氧化能力進(jìn)行檢測,同時(shí)對X-5型大孔樹脂純化金針菇黃酮的條件進(jìn)行了優(yōu)化研究。根據(jù)研究結(jié)果得出如下結(jié)論:

表3 黃酮與Vc清除超氧陰離子自由基能力比較

3.1 X-5型大孔樹脂可以作為純化金針菇黃酮的介質(zhì),其最佳吸附條件為:濃度1.4 mg/mL,pH 5,上樣流速為0.2 mL/min;最佳洗脫條件為:濃度70%的乙醇60 mL,洗脫速率1 mL/min。在此條件下得到的黃酮純度是純化前的1.83倍。

3.2 抑菌試驗(yàn)表明:金針菇黃酮對大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌均有不同程度的抑制作用,其抑菌效果隨著金針菇黃酮濃度的增大而增強(qiáng)。抑菌程度大小的順序?yàn)?大腸桿菌>沙門氏菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌。

3.3 抗氧化試驗(yàn)表明:Vc和金針菇黃酮溶液均具有抗氧化作用,金針菇黃酮和Vc溶液對DPPH自由基、羥基自由基、超氧陰離子自由基和ABTS自由基的清除能力均隨著濃度的增加而增大;金針菇黃酮對這四種自由基的清除能力均要弱于Vc。

由以上研究結(jié)果可知,利用復(fù)合酶輔助高壓法提取金針菇黃酮后采用X-5型大孔樹脂進(jìn)行純化處理,此工藝流程可行。

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