殷杰 趙勝利 蔡曉明 袁輝宗 李俊杰 竺楓

[摘要] 目的 分析基于無翅型MMTV整合位點家族（Wnt）/β-連環(huán)蛋白（β-catenin）信號通路，血管內(nèi)皮生長因子（VEGF）基因轉(zhuǎn)染骨髓源內(nèi)皮祖細(xì)胞（EPCs）移植對大鼠缺血皮瓣的治療作用。 方法 培養(yǎng)誘導(dǎo)分化大鼠EPCs，脂質(zhì)體介導(dǎo)VEGF轉(zhuǎn)染EPCs。Wistar大鼠制備缺血皮瓣模型分為對照組、VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、Wnt/β-catenin信號通路激活劑氯化鋰（LiCl）組。VEGF-EPCs組與NC-EPCs組皮瓣分別注射PcDNA3.1（+）/VEGF165質(zhì)粒、PcDNA3.1（+）/NC空載對照質(zhì)粒，對照組注射PBS溶液，LiCl組注射LiCl。酶聯(lián)免疫吸附實驗（ELISA）檢測血清VEGF水平;觀察大鼠皮瓣存活情況;激光多普勒血液檢測儀檢測皮瓣蒂部血流;HE染色計算皮瓣毛細(xì)血管密度;Western blotting檢測皮瓣組織Wnt/β-catenin信號通路相關(guān)蛋白表達(dá)。 結(jié)果 鏡下觀察分離培養(yǎng)的EPCs外觀呈“鋪路石”狀，經(jīng)鑒定符合EPCs表面抗原。VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組血清VEGF水平、皮瓣存活率、PU值、毛細(xì)血管密度高于對照組，且VEGF-EPCs組高于NC-EPCs組、LiCl組，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05），NC-EPCs組與LiCl組比較，差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P>0.05）。VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量高于對照組，LiCl組高于VEGF-EPCs組與NC-EPCs組，VEGF-EPCs組高于NC-EPCs組，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）。 結(jié)論 VEGF基因轉(zhuǎn)染骨髓源EPCs移植能促進(jìn)大鼠缺血皮瓣的存活，改善血液循環(huán)，增加微血管密度，其機制與Wnt/β-catenin信號通路的激活有關(guān)。

[關(guān)鍵詞] 血管內(nèi)皮生長因子;皮瓣移植;無翅型MMTV整合位點家族;β-連環(huán)蛋白;內(nèi)皮祖細(xì)胞

[中圖分類號] R622? ? ? ? ? [文獻(xiàn)標(biāo)識碼] A? ? ? ? ? [文章編號] 1673-9701（2021）31-0036-05

[Abstract] Objective To analyze the therapeutic effects of vascular endothelial growth factor （VEGF） gene transfection of bone marrow-derived endothelial progenitor cells（EPCs） transplantation on ischemic flaps in rats based on the wingless-type mouse mammary tumor virus （MMTV） integration site family （Wnt）/β-catenin signaling pathway. Methods The rat EPCs were cultured and induced to differentiate， and the EPCs were transfected with liposome-mediated VEGF. The Wistar rats were divided into control， VEGF-EPCs， negative control （NC）-EPCs and Wnt/β-catenin signaling pathway activator lithium chloride（LiCl） groups to prepare the ischemic flap models. These Wistar rats in the VEGF-EPCs group， NC-EPCs group， control group and LiCl group were respectively injected with PcDNA3.1（+）/VEGF165 plasmid， PcDNA3.1（+）/NC empty control plasmid， phosphate buffer saline （PBS） solution and LiCl into the skin flaps. Serum VEGF levels were measured by enzyme-linked immunosorbent assay （ELISA）， the survival of rat flaps was observed， blood flow at the tip of the flap was measured by laser Doppler blood detector， HE staining was performed to calculate the capillary density of flap， and Western blotting was adopted to detect the expression of proteins related to Wnt/β-catenin signaling pathway in flap tissue. Results The appearance of EPCs was “paving stone” under microscope， which was identified as meeting the surface antigen of EPCs. Serum VEGF levels， flap survival rate， PU value， and capillary density in the VEGF-EPCs group， NC-EPCs group， and LiCl group were higher than those of the control group， and those of the VEGF-EPCs group were higher than those of the NC-EPCs group and LiCl group，the difference was statistically significant（P<0.05）. However，there were no significant differences between the NC-EPCs group and the LiCl group in the above-mentioned indices （P>0.05）. The relative expression of β-catenin and c-myc protein in the VEGF-EPCs group， NC-EPCs group and LiCl group was higher than that in the control group. Meanwhile，the relative expression of β-catenin and c-myc protein in the LiCl group was higher than that in the VEGF-EPCs group and NC-EPCs group， and that in the VEGF-EPCs group was higher than that in the NC-EPCs group，the difference was statistically significant（P<0.05）. Conclusion VEGF gene transfection of bone marrow-derived EPCs transplantation can promote the survival of ischemic flaps， improve blood circulation and increase microvascular density in rats， and the mechanism is related to the activation of Wnt/β-catenin signaling pathway.

[Key words] Vascular endothelial growth factor; Flap transplantation; Wingless-type MMTV integration site family; β-catenin; Endothelial progenitor cells

皮瓣移植是治療軟組織缺損的有效方式，在肌腱、大血管、神經(jīng)干、關(guān)節(jié)、骨等組織裸露的新鮮創(chuàng)面/陳舊性創(chuàng)傷和器官再造中均有應(yīng)用[1]。移植部位皮瓣血管的新生與血運重建是影響皮瓣存活的關(guān)鍵，干細(xì)胞治療技術(shù)的發(fā)展，為血運重建的治療研究提供了新的方向[2]。血管內(nèi)皮組細(xì)胞（Endothelial progenitor cells，EPCs）作為血管內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞，能在一定的生理或病理條件刺激下，從骨髓動員至外周血，參與損傷血管的修復(fù)與再生[3]。研究證實[4]，缺血肢體中植入EPCs，可改善血運，證實了EPCs移植治療的可行性。但在糖尿病、老年人及高膽固醇血癥人群中，因血液循環(huán)中EPCs少，應(yīng)用有限。血管內(nèi)皮生長因子（Vascular endothelial growth factor，VEGF）是調(diào)控EPCs向內(nèi)皮分化的重要細(xì)胞因子，在促進(jìn)EPCs的分裂、增殖、遷移與血管構(gòu)建方面有強大的調(diào)控作用[5]。故本研究探討VEGF基因轉(zhuǎn)染骨髓源EPCs移植對缺血皮瓣大鼠模型的治療情況及無翅型MMTV整合位點家族（Wingless-type MMTV integration site family，Wnt）/β-連環(huán)蛋白（β-catenin）信號通路在其中的調(diào)控作用，以期為皮瓣移植及相關(guān)缺血性疾病的治療提供參考。

1 材料與方法

1.1 實驗動物

Wistar大鼠，45只，4周齡，體重60～90 g，購自廣州賽業(yè)百沐生物科技有限公司，許可證號SCXK（粵）2020-0055。任選40只大鼠隨機分為對照組、VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、Wnt/β-catenin信號通路激活劑氯化鋰（LiCl）組，每組10只。

1.2 藥物、試劑與儀器

PcDNA3.1（+）/VEGF165質(zhì)粒、PcDNA3.1（+）/NC空載對照質(zhì)粒（上海生工生物工程有限公司構(gòu)建合成），LiCl（含量≥98%，美國HARVEY公司），兔抗鼠CD34+、CD133+、血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子受體-2（VEGFR-2+）、β-catenin、反式激活活性蛋白（cell-myc，c-myc）一抗，辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔二抗（德國默克公司），脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑LipofectamineTM2000[貝克曼庫爾特商貿(mào)（中國）有限公司]，酶聯(lián)免疫吸附實驗（Enzyme linked immunosorbent assay，ELISA）VEGF試劑盒（上海廣銳生物科技有限公司），CheniDoc XRS化學(xué)發(fā)光成像分析系統(tǒng)（美國Bio-rad公司），PeriFlux 5000激光多普勒血液檢測儀（帕瑞醫(yī)學(xué)科技有限公司），M500熒光顯微鏡（賽默飛世爾科技中國有限公司），Attune NxT流式細(xì)胞儀[賽默飛世爾科技（中國）有限公司]。

1.3 方法

1.3.1 EPCs分離培養(yǎng)及鑒定? 任選5只Wistar大鼠，2%戊巴比妥鈉過量麻醉處死（100 mg/kg），75%酒精浸泡10 min，于無菌工作臺取四肢長骨，放置于含有10 mL PBS的平皿中，剪骨刀沿長骨中間剪開，PBS溶液沖洗骨髓腔，獲得骨髓細(xì)胞反復(fù)吹打均勻，250目濾網(wǎng)過濾，1000 r/min離心5 min，收集底部細(xì)胞，加入Histopaque-1083細(xì)胞分離液，2000 r/min離心30 min，吸取第二層單核細(xì)胞，PBS清洗、吹打混勻，1000 r/min離心10 min，棄上清，調(diào)整細(xì)胞濃度為107/mL接種于鋪有纖維連接蛋白的塑料培養(yǎng)皿中，37℃，5%CO2環(huán)境培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，每3～4 天換液1次，待細(xì)胞生長融合至80%時，以0.25%胰酶+0.02%乙二胺四乙酸二鈉消化，1∶2比例傳代分瓶。取第2代晚期EPCs，胰酶消化后PBS重懸，調(diào)整細(xì)胞密度為1×106個/mL，分成每管100 μL，加入CD34+、CD133+、VEGFR-2+兔抗鼠單克隆抗體，室溫避光孵育30 min，PBS洗滌后重懸細(xì)胞，以流式細(xì)胞技術(shù)鑒定細(xì)胞免疫表型。

1.3.2 PcDNA3.1（+）/VEGF165體外轉(zhuǎn)染EPCs? 培養(yǎng)第7 天，細(xì)胞融合率達(dá)到70%左右，EPCs以1.0×107/L密度接種于24孔板中，每孔5個復(fù)孔，分別設(shè)為對照組、VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組，其中VEGF-EPCs組與NC-EPCs組嚴(yán)格按照Lipofectamine TM2000脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染說明書要求轉(zhuǎn)染PcDNA3.1（+）/VEGF 165質(zhì)粒、PcDNA3.1（+）/NC空載對照質(zhì)粒，對照組不轉(zhuǎn)染任何質(zhì)粒，LiCl組加入40 μM的LiCl。

1.3.3 缺血皮瓣制備及細(xì)胞移植? 根據(jù)參考文獻(xiàn)[6-7]制備缺血皮瓣模型，2%戊巴比妥鈉50 mg/kg腹腔注射麻醉，取俯臥位固定，備皮消毒，于背部設(shè)計蒂部位于雙側(cè)髂棘連線上的隨意型超比例皮瓣，造成遠(yuǎn)端部分組織缺血，大小約為2 cm×8 cm，沿標(biāo)記線切開皮瓣四邊達(dá)深筋膜。在皮瓣形成后分別于距離皮瓣蒂部4.5、6、7.5 cm，距皮瓣邊緣各1 cm的深筋膜層選擇6個對稱注射部位點，VEGF-EPCs組注射含有5×105個VEGF-EPCs的PBS 500 μL，NC-EPCs組注射5×105個NC-EPCs的PBS 500 μL，對照組僅予以注射PBS 500 μL，LiCl組注射含有LiCl的PBS 500 μL，注射后以3-0尼龍線將皮瓣原位縫合，分籠飼養(yǎng)，于術(shù)后4 d斷蒂。

1.3.4 ELISA檢測血清VEGF水平? 于斷蒂后7 d（皮瓣術(shù)后11 d）后抽取尾靜脈血，離心分離上層血清，保存于-20℃環(huán)境，按照ELISA試劑盒說明書檢測VEGF水平，以酶標(biāo)儀讀取450 nm處吸光度值，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算各組VEGF水平。

1.3.5 皮瓣存活率、皮瓣供血及毛細(xì)血管密度檢測? 尾靜脈抽血后麻醉固定大鼠，背部皮瓣拍照，以Image-Pro Plus軟件分析皮瓣存活率。皮瓣存活率=（皮瓣總面積-皮瓣壞死面積）/皮瓣總面積×100%，皮瓣壞死判斷標(biāo)準(zhǔn)：顏色發(fā)黑、質(zhì)地較硬，有組織回縮表現(xiàn)，或有壞死創(chuàng)面形成。以激光多普勒血液檢測儀檢測皮瓣蒂部血流灌注，記錄PU值（灌注單位）。PU值檢測后切取皮瓣標(biāo)本，10%中性甲醛固定，酒精梯度脫水，常規(guī)石蠟包埋，制作4 μm厚度切片，HE染色，中性樹膠封片，隨機選5個視野，計算視野中毛細(xì)血管密度（血管斷面數(shù)目/面積）。

1.3.6 Western blotting檢測Wnt/β-catenin信號通路蛋白表達(dá)情況? 剩余皮瓣液氮中研磨，Trizol試劑盒提取總RNA，逆轉(zhuǎn)錄獲得cDNA，細(xì)胞裂解液裂解后，離心取上層清液，BCA試劑盒鑒定蛋白總量，取適量蛋白樣品加入等體積上樣緩沖液，100℃水浴加熱5 min使蛋白變性，十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰氨凝膠電泳分離，轉(zhuǎn)膜，37℃、5%脫脂奶粉封閉孵育1 h，加入β-catenin（1∶500）、c-myc（1∶800）一抗稀釋液，4℃孵育過夜，加入二抗稀釋液（1∶2000），常規(guī)孵育30 min，ECL顯影、定影，凝膠成像系統(tǒng)掃描分析灰度值析，以目的蛋白與GAPDH內(nèi)參灰度值比值表示目的蛋白相對表達(dá)量。

1.4 統(tǒng)計學(xué)方法

采用SPSS 20.0統(tǒng)計學(xué)軟件分析處理數(shù)據(jù)，計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（x±s）表示，多組間比較采用單因素方差分析，兩組間比較采用LSD-t檢驗，P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 EPCs形態(tài)觀察及鑒定

分選后的細(xì)胞24 h內(nèi)貼壁生長，形態(tài)為圓形或類圓形，培養(yǎng)第3～10 天可見EPCs克隆，集落中心細(xì)胞密度較高，細(xì)胞呈梭形、三角形或多邊形;傳代后3 d低倍鏡下見細(xì)胞呈“鋪路石”樣外觀（封三圖3）。流式細(xì)胞儀鑒定晚期EPCs表達(dá)CD34+、CD133+、VEGFR-2+，陽性細(xì)胞比率分別為（13.52±1.23）%、（1.23±0.23）%、（38.58±4.36），符合EPCs表面抗原。

2.2 各組大鼠血清VEGF水平比較

各組大鼠血清VEGF水平比較，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.001）;與對照組比較，VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組血清VEGF水平更高（P<0.05）;與VEGF-EPCs組比較，NC-EPCs組與LiCl組血清VEGF水平更低（P<0.05）;NC-EPCs組與LiCl組血清VEGF水平比較，差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P>0.05）。見表1。

2.3 各組大鼠皮瓣存活率、PU值及毛細(xì)血管密度比較

各組大鼠皮瓣存活率、PU值、毛細(xì)血管密度比較，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.001）;與對照組比較，VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組大鼠皮瓣存活率、PU值及毛細(xì)血管密度更高（P<0.05）;與VEGF-EPCs組比較，NC-EPCs組與LiCl組皮瓣存活率、PU值及毛細(xì)血管密度更低（P<0.05）;NC-EPCs組與LiCl組皮瓣存活率、PU值及毛細(xì)血管密度比較，差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P>0.05）。見表2。

2.4 各組大鼠皮瓣組織β-catenin、c-myc蛋白表達(dá)比較

各組大鼠皮瓣組織β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量比較，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.001）;與對照組比較，VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組的β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量更高（P<0.05）;與VEGF-EPCs組比較，NC-EPCs組β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量更低，LiCl組β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量更高（P<0.05）;與NC-EPCs組比較，LiCl組β-catenin、c-myc蛋白對表達(dá)量更高（P<0.05）。見表3、圖1。

3 討論

近年來，隨著社會生活節(jié)奏的加快，車禍、重物砸傷引起的軟組織缺損及各種心血管并發(fā)癥造成的器官及肢體遠(yuǎn)端缺血病例增加，常規(guī)保守治療難以達(dá)到滿意的效果，需皮瓣移植治療[8]。及時的血運重建是皮瓣移植再植存活的基本條件，血管的新生是再植皮瓣血運重建的關(guān)鍵，涉及血管形成和血管生成兩種機制[9]。EPCs移植是目前治療性血管生成技術(shù)的重要研究內(nèi)容，而VEGF作為調(diào)控EPCs分化的細(xì)胞因子，在促進(jìn)血管形成方面有重要作用。本研究通過驗證VEGF基因體外轉(zhuǎn)染骨髓源EPCs移植治療缺血皮瓣大鼠模型，觀察其皮瓣存活情況，并探討相關(guān)機制，旨在為組織及器官缺血的研究提供參考。

利用組織工程與基因技術(shù)促進(jìn)血管新生的細(xì)胞因子植入損傷部位，以促進(jìn)局部血管再生和血運重建，達(dá)到組織修復(fù)的目的是皮瓣移植治療的目的。EPCs是近年來干細(xì)胞治療技術(shù)中研究較多的細(xì)胞類型，具有多向分化潛能，在骨髓、胚胎組織、脂肪組織及臍帶血中廣泛存在，其中骨髓中的含量最為豐富，增殖能力更強且獲取方便[10-11]。EPCs在組織缺血時能從骨髓中動員遷移至缺血部位，分化為成熟的內(nèi)皮細(xì)胞，促進(jìn)新生血管的形成，且被證實對于促進(jìn)慢性傷口組織再生有極大的潛能[12-13]。雖然以EPCs為主的干細(xì)胞治療技術(shù)具有多種優(yōu)勢，但在老年人、糖尿病等骨髓造血能力較弱人群中，其循環(huán)中的EPCs缺乏，無法滿足治療需要，如何使能力有限的EPCs獲得更好的促血管生成作用成為學(xué)者們的研究重點。VEGF是一種糖基化分泌性多肽因子，可由內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、骨骼肌細(xì)胞及成纖維細(xì)胞分泌，參與胚胎時期的心血管系統(tǒng)形成，促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的增殖、遷移，增加血管的通透性并能調(diào)整血管密度，其中VEGF165是其主要表型[14-15]。本研究中通過脂質(zhì)體介導(dǎo)，將VEGF165基因轉(zhuǎn)染至誘導(dǎo)分化成功的EPCs，注射于大鼠缺血皮瓣，結(jié)果VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組血清VEGF水平、皮瓣存活率、PU值、毛細(xì)血管密度高于對照組，且VEGF-EPCs組高于NC-EPCs組、LiCl組，NC-EPCs組與LiCl組比較，差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P>0.05），說明VEGF基因轉(zhuǎn)染骨髓源EPCs移植與Wnt/β-catenin信號通路的激活均可促進(jìn)大鼠缺血皮瓣血管形成和血管生成，更利于缺血皮瓣的存活。

Wnt/β-catenin信號通路是生物體進(jìn)化過程中高度保守的通路，在調(diào)控細(xì)胞的增殖、生長、分化、維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定中有重要作用，參與缺血周邊組織血管的新生[16]。研究發(fā)現(xiàn)[17]，多功能干細(xì)胞向內(nèi)皮細(xì)胞分化依賴于β-catenin介導(dǎo)的Wnt/β-catenin信號通路的調(diào)控作用。β-catenin是Wnt/β-catenin通路的關(guān)鍵調(diào)控蛋白，在無小分子Wnt配體的情況下，胞質(zhì)內(nèi)β-catenin被磷酸化降解，導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)內(nèi)游離的β-catenin水平下降，在缺血缺氧條件下機體受Wnt信號刺激，Wnt/β-catenin通路被激活，促進(jìn)散亂蛋白磷酸化，抑制β-catenin的磷酸化，使非磷酸化的β-catenin在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)堆積易位進(jìn)入細(xì)胞核，促進(jìn)其下游靶基因c-mys的表達(dá)[18]。研究發(fā)現(xiàn)[19]，Wnt/β-catenin能與VEGF基因啟動子中TCF位點結(jié)合，參與VEGF基因的轉(zhuǎn)錄、調(diào)控。Jiang等[20]發(fā)現(xiàn)，在小鼠四肢缺血模型中通過破壞β-catenin與細(xì)胞因子之間的相互作用，可抑制缺血性損傷后的血管生成，并損害Wnt/β-catenin信號的傳導(dǎo)。本研究結(jié)果中VEGF-EPCs組、NC-EPCs組、LiCl組β-catenin、c-myc蛋白相對表達(dá)量高于對照組，LiCl組高于VEGF-EPCs組與NC-EPCs組，VEGF-EPCs組高于NC-EPCs組，說明VEGF基因轉(zhuǎn)染骨髓源EPCs能提高缺血皮瓣組織中Wnt/β-catenin信號通路蛋白的表達(dá)。

綜上所述，VEGF基因轉(zhuǎn)骨髓源EPCs移植治療大鼠缺血皮瓣能促進(jìn)皮瓣存活，改善皮瓣供血，促進(jìn)毛細(xì)血管的生成，其機制可能與Wnt/β-catenin信號通路的調(diào)控有關(guān)?？煽紤]將VEGF基因轉(zhuǎn)染骨髓源移植作為皮瓣移植治療的研究方向。

[參考文獻(xiàn)]

[1] Liu S，Liang W，Song K，et al. Keloid skin flap retention and resurfacing in facial keloid treatment[J].Aesthetic Plast Surg，2018，42（1）：304-309.

[2] Chehelcheraghi F，Bayat M，Chien S. Effect of mesenchymal stem cells and chicken embryo extract on flap viability and mast cells in rat skin flaps[J]. J Invest Surg，2020，33（2）：123-133.

[3] Li Z，Yang A，Yin X，et al. Mesenchymal stem cells promote endothelial progenitor cell migration，vascularization，and bone repair in tissue-engineered constructs via activating CXCR2-Src-PKL/Vav2-Rac1[J]. FASEB J，2018，32（4）：2197-2211.

[4] 靳文學(xué)，喬秀蘭. 遠(yuǎn)志皂苷元對內(nèi)皮祖細(xì)胞移植治療急性心肌梗死模型大鼠心功能的影響[J].中國老年學(xué)雜志，2019，39（2）：413-418.

[5] 趙斌. 基于EPCs及VEGF165促血管生成作用促進(jìn)組織工程神經(jīng)修復(fù)大段周圍神經(jīng)缺損[D]. 天津：天津醫(yī)科大學(xué)，2019.

[6] 茅東升，張旭東，鄭麗君，等. 大鼠碾壓撕脫皮瓣模型建立及皮瓣血運情況檢測[J]. 中華燒傷雜志，2015，31（1）：58-61.

[7] 黃永軍，黃東，牟勇，等. bFGF對促進(jìn)大鼠移植缺血皮瓣血管化的實驗研究[J]. 中華顯微外科雜志，2010，33（1）：38-40.

[8] 孟叢鵬，葉曙明，荊玨華. 誘導(dǎo)膜技術(shù)聯(lián)合皮瓣移植治療小腿感染性骨及軟組織缺損[J]. 中國修復(fù)重建外科雜志，2020，34（6）：93-97.

[9] 田夢，王鋼仁，徐曉靜，等. 自體富血小板血漿凝膠聯(lián)合皮瓣移植修復(fù)治療難愈性創(chuàng)面的臨床效果[J].中國醫(yī)藥導(dǎo)報，2019，16（28）：110-113.

[10] Shao YJ，Tao J，Yu BB，et al. Berberine-promoted CXCR4 expression accelerates endothelial repair capacity of early endothelial progenitor cells in persons with prehypertension[J]. Chin J Integr Med，2018，24（12）：897-904.

[11] Son Y，Kwon SM，Cho JY. CD276（B7-H3） Maintains proliferation and regulates differentiation in angiogenic function in late endothelial progenitor cells[J]. Stem Cells，2019，37（3）：382-394.

[12] Kado M，Tanaka R，Arita K，et al. Human peripheral blood mononuclear cells enriched in endothelial progenitor cells via quality and quantity controlled culture accelerate vascularization and wound healing in a porcine wound model[J]. Cell Transplant，2018，27（7）：1068-1079.

[13] Kaushik K，Das A. Endothelial progenitor cell therapy for chronic wound tissue regeneration[J]. Cytotherapy，2019， 21（11）：1137-1150.

[14] Zhu Y，Wang Y，Jia Y，et al. Roxadustat promotes angiogenesis through HIF-1α/VEGF/VEGFR2 signaling and accelerates cutaneous wound healing in diabetic rats[J]. Wound Repair Regen，2019，27（4）：324-334.

[15] Fan J，Lv H，Li J，et al. Roles of Nrf2/HO-1 and HIF-1α/VEGF in lung tissue injury and repair following cerebral ischemia/reperfusion injury[J]. J Cell Physiol，2019， 234（6）：7695-7707.

[16] Wang Y，Wu Z，Tian J，et al. Intermedin protects HUVECs from ischemia reperfusion injury via Wnt/β-catenin signaling pathway[J]. Ren Fail，2019，41（1）：159-166.

[17] Yu G，Liu P，Shi Y，et al. Stimulation of endothelial progenitor cells by microRNA-31a-5p to induce endothelialization in an aneurysm neck after coil embolization by modulating the Axin1-mediated β-catenin/vascular endothelial growth factor pathway[J]. J Neurosurg，2019，9：1-9.

[18] Haybar H，Khodadi E，Shahrabi S. Wnt/β-catenin in ischemic myocardium：Interactions and signaling pathways as a therapeutic target[J]. Heart Fail Rev，2019，24（3）：411-419.

[19] 熊文倩. 雌激素介導(dǎo)的Wnt/β-catenin信號通路調(diào)控子宮內(nèi)膜異位癥上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的作用機制研究[D]. 武漢：華中科技大學(xué)，2016.

[20] Jiang L，Yin M，Wei X，et al. Bach1 represses Wnt/β-catenin signaling and angiogenesis[J]. Circ Res，2015， 117（4）：364-375.

（收稿日期：2021-03-04）