肖琦 蔣彩霞 史慧 趙霞玲 錢雯嫻 朱家平 張馮禧 溫立斌 汪偉 何孔旺

摘要：為評估目前常用商品化非洲豬瘟熒光定量PCR檢測試劑盒，參考OIE推薦的非洲豬瘟病毒（ASFV）熒光定量PCR方法合成引物和探針，建立非洲豬瘟病毒qPCR檢測方法（OIE-qPCR）;并與市面4種ASFV檢測試劑盒進(jìn)行了比較。以人工合成的ASFV p72基因TA克隆重組質(zhì)粒為陽性標(biāo)準(zhǔn)品，OIE-qPCR可以檢測到10～102 copies;而4種ASFV熒光定量PCR檢測試劑盒中，進(jìn)口試劑盒TF-qPCR能檢測到10 copies，進(jìn)口試劑盒ID-qPCR和國產(chǎn)試劑盒QD-qPCR能檢測到10～102 copies，而國產(chǎn)試劑盒LY-qPCR能檢測到102 copies。對健康豬組織樣及臨床模擬樣品的檢測結(jié)果顯示：OIE-qPCR與4種檢測試劑盒之間的符合率為92.60%～99.03%。其中，陽性樣品CT值的相關(guān)系數(shù)為0.988～0.997（Perason法），表明各試劑盒之間相關(guān)性良好;但在檢測病毒核酸含量較低的樣品時，各試劑盒結(jié)果之間存在一定差異，其中，TF-qPCR試劑盒顯示更高的陽性檢出率，ID-qPCR試劑盒和LY-qPCR試劑盒次之。本研究為臨床選用非洲豬瘟病毒快速檢測試劑盒提供了依據(jù)。

關(guān)鍵詞：非洲豬瘟病毒;檢測;熒光定量PCR;靈敏性;穩(wěn)定性;敏感性

中圖分類號：S852.65+1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A文章編號：1002-1302（2021）02-0119-06

收稿日期：2020-11-13

基金項目：江蘇省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)（生豬）產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系生物安全創(chuàng)新團(tuán)隊項目（編號：JATS[2019]403）。

作者簡介：肖琦（1980—），女，遼寧丹東人，博士，助理研究員，主要從事豬病及人獸共患病防控研究。E-mail：xiaoqi_2122@163.com。

通信作者：何孔旺，研究員，主要從事豬病及人獸共患病防控研究。E-mail：kwh2003@263.net。

非洲豬瘟自從2018年8月在我國首次報道[1]以來，對我國養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[2]。病原的快速檢測在防控非洲豬瘟上發(fā)揮著十分重要的作用。實時熒光PCR因其特異性高、敏感性好，是目前應(yīng)用最為廣泛的非洲豬瘟檢測技術(shù)[3]。市場上主流使用的試劑盒的品牌較多，既有國產(chǎn)品牌，也有進(jìn)口品牌。在實際使用過程中，各種品牌非洲豬瘟病毒熒光定量PCR檢測試劑盒的效果是否存在差異，相關(guān)報道較少。為了建立統(tǒng)一的參比方法，本研究參考OIE推薦的非洲豬瘟病毒熒光PCR方法[4]合成引物和探針，建立非洲豬瘟病毒qPCR（簡稱OIE-qPCR）檢測方法，以人工合成的非洲豬瘟病毒p72蛋白基因TA克隆為陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品，以健康豬組織樣及臨床模擬樣品作為檢測對象，比較OIE-qPCR和4種臨床常用的非洲豬瘟病毒熒光定量PCR檢測試劑盒的靈敏性、穩(wěn)定性、特異性，為臨床檢測非洲豬瘟病毒時的試劑盒選用提供參考依據(jù)。

1材料與方法

1.1儀器與試劑

QuantStudio 6 Flex實時熒光定量PCR系統(tǒng)，購自美國應(yīng)用生物系統(tǒng)（ABI）公司;美國MP*FastPrep-24樣品均質(zhì)儀，購自美國MP公司。TIANDZ柱式動物DNAout試劑盒、柱式病毒DNAout試劑盒，購自北京天恩澤公司;TaKaRa Premix Ex TaqTM（Probe qPCR）、pMD19-T，購自寶生物工程（大連）有限公司。

1.2病毒株

豬圓環(huán)病毒2型p58株、豬偽狂犬病病毒Bartha-K61株、豬細(xì)小病毒NADL-2株、豬瘟病毒HCLV株、豬繁殖與呼吸綜合征病毒NJGC、豬流行性腹瀉病毒AH2012株，均由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所保存。

1.3商品化非洲豬瘟病毒檢測試劑盒

國產(chǎn)和進(jìn)口的商品化非洲豬瘟病毒檢測試劑盒各2種，共4種。國產(chǎn)試劑盒包括A公司非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒（簡稱QD-qPCR試劑盒）、B公司非洲豬瘟病毒實時熒光PCR檢測試劑盒（簡稱LY-qPCR試劑盒），進(jìn)口試劑盒有C公司非洲豬瘟（ASF）qPCR檢測試劑盒（TF-qPCR試劑盒）和D公司非洲豬瘟病毒DNA實時定量PCR檢測試劑盒（ID-qPCR試劑盒）。所有試劑盒均在其有效期內(nèi)使用。

1.4臨床健康豬樣品

1.4.1樣品來源共33份樣品。其中，豬脾臟、肝臟、腎臟、淋巴結(jié)等組織樣品均來自江蘇某菜市場，血清和唾液樣品來自江蘇某豬場。

1.4.2樣品處理

1.4.2.1組織樣品取100 mg組織樣品（脾臟、肝臟、腎臟、淋巴結(jié)）置于無菌破碎管中，加入1 mL無菌PBS（pH值7.2）和3顆鋼珠，在樣品均質(zhì)儀上勻漿處理，然后以12 000 r/min離心3 min，吸取上清200 μL，置于1.5 mL無菌離心管中，用于DNA提取。

1.4.2.2血清、唾液樣品血清、唾液樣品直接取上清200 μL，置于1.5 mL無菌離心管中，用于DNA提取。

1.4.3DNA提取組織樣品用TIANDZ柱式動物DNAout試劑盒，按其說明書提取DNA;血清、唾液樣品用TIANDZ柱式病毒DNAout試劑盒，按其說明書提取DNA。

1.5非洲豬瘟病毒p72陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的制備

1.5.1非洲豬瘟病毒p72全長基因合成根據(jù)GenBank中已登錄的非洲豬瘟病毒安徽株XCGQ（MK128995.1）序列，合成p72蛋白基因全長序列，長度1 941 bp，委托寶生物工程（大連）有限公司合成。置于-20 ℃保存。

1.5.2非洲豬瘟病毒p72全長基因質(zhì)粒構(gòu)建將人工合成的p72全長基因克隆至pMD19-T載體中，篩選獲得陽性重組質(zhì)粒，作為非洲豬瘟病毒p72基因核酸檢測的陽性標(biāo)準(zhǔn)品。

1.6非洲豬瘟病毒qPCR（OIE-qPCR）檢測方法的建立

1.6.1引物和探針參照OIE推薦的非洲豬瘟病毒熒光定量PCR方法[4]，合成引物和探針。引物和探針序列見表1，由寶生物工程（大連）有限公司合成。

1.6.2反應(yīng)體系與反應(yīng)條件參照OIE推薦的方法，OIE-qPCR反應(yīng)體系為20 μL，其中水5.1 μL、Mix 10 μL、ROXⅡ 0.4 μL、上游引物（10 μmol/L）1 μL、下游引物（10 μmol/L）1 μL、探針（10 μmol/L）0.5 μL、DNA模板2 μL;qPCR反應(yīng)程序為50 ℃ 120 s;95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s，58 ℃ 60 s，40個循環(huán)。

1.6.3結(jié)果判定標(biāo)準(zhǔn)陰性對照無CT值或無擴(kuò)增曲線;陽性對照CT值≤35，并出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線，判為試驗成立。檢測樣品CT值≤40，并出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線，判為陽性;檢測樣品無CT值或CT值>40，判為陰性。

1.6.4特異性試驗按照“1.4.3”節(jié)的方法提取豬圓環(huán)病毒2型、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬流行性腹瀉病毒核酸進(jìn)行OIE-qPCR特異性試驗。

1.7商品化非洲豬瘟病毒檢測試劑盒檢測方法

4種商品化非洲豬瘟病毒檢測試劑盒均為熒光定量PCR方法，按照各試劑盒說明書的要求進(jìn)行非洲豬瘟病毒核酸檢測。各試劑盒的反應(yīng)條件、結(jié)果判定標(biāo)準(zhǔn)等見表2。

1.8OIE-qPCR與4種商品化檢測試劑盒的比較

1.8.1靈敏性試驗將“1.5”節(jié)獲得的非洲豬瘟病毒核酸陽性標(biāo)準(zhǔn)品p72全長基因重組質(zhì)粒，用無菌ddH2O稀釋至103、102、101、100 copies/μL，用于 OIE-qPCR 及各商品化檢測試劑盒的靈敏度檢驗。

1.8.2重復(fù)性試驗用OIE-qPCR及各商品化檢測試劑盒分別檢測稀釋到103、102、101、100 copies/μL 的p72全長基因重組質(zhì)粒樣品，每個樣品設(shè)3個重復(fù)。

1.8.3組織樣品及模擬臨床樣品的檢測比較用OIE-qPCR及4種商品化檢測試劑盒檢測33份正常豬組織樣品和33份模擬臨床樣品（在陰性組織樣品中加入不同濃度的p72全長基因重組質(zhì)粒），比較各試驗盒的檢測符合率和相關(guān)系數(shù)。

2結(jié)果與分析

2.1OIE-qPCR檢測方法的建立

用建立的OIE-qPCR檢測方法，檢測不同稀釋度的非洲豬瘟病毒p72全長基因重組質(zhì)粒，能出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線（圖1）;而檢測豬圓環(huán)病毒2型、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬流行性腹瀉病毒等，均沒有出現(xiàn)擴(kuò)增曲線。

2.2OIE-qPCR與4種商品化檢測試劑盒靈敏性與穩(wěn)定性試驗

靈敏性試驗結(jié)果表明：OIE-qPCR的靈敏度可以檢測到101～102 copies;4種商品化非洲豬瘟病毒熒光定量PCR檢測試劑盒中，有1種試劑盒（TF-qPCR）能檢測到101 copies，有2種試劑盒（QD-qPCR和ID-qPCR）能檢測到101～102 copies，有1種試劑盒（LY-qPCR）能檢測到102 copies。

穩(wěn)定性試驗結(jié)果顯示：OIE-qPCR與4種商品化檢測試驗盒，在檢測103 copies和102 copies濃度的陽性標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒時均能100%檢出;在檢測 100 copies 時，所有檢測結(jié)果均為陰性;檢測濃度為101 copies的陽性質(zhì)粒時，TF-qPCR的陽性檢出率為100%，OIE-qPCR與QD-qPCR、ID-qPCR的陽性檢出率均只有33.3%，而LY-qPCR的陽性檢出率為0%（表3）。

2.3OIE-qPCR與4種商品化檢測試劑盒檢測組織樣品及臨床模擬樣品

用OIE-qPCR方法及4種商品化檢測試劑盒檢測33份臨床健康豬組織樣品及血清、唾液樣品，結(jié)果均為陰性;檢測33份臨床模擬樣品，結(jié)果出現(xiàn)一定差異（表4）。檢測結(jié)果顯示，OIE-qPCR方法檢測為陽性的22份樣品，4種商品化檢測試劑盒的檢測結(jié)果也均為陽性，且CT值之間均有良好的相關(guān)性，相關(guān)系數(shù)為0.988～0.997（PERASON法）。但用OIE-qPCR方法檢測為陰性的樣品中，有6份樣品用4種商品化檢測試劑盒分別檢測出1份（QD-qPCR試劑）、3份（LY-qPCR試劑盒）、4份（TF-qPCR試劑盒）和3份（ID-qPCR試劑盒）陽性，提示在檢測核酸含量處于臨界值的臨床樣品時，TF-qPCR試劑盒的陽性檢出率最高;在這6份檢測結(jié)果有差異的樣品中，僅1份樣品被3種試劑盒同時檢測為陽性，另有3份樣品被2種試劑盒檢測為陽性，其他2份樣品均只有1種試劑盒檢測為陽性，表明當(dāng)樣品中的非洲豬瘟病毒核酸含量較低時，各試劑盒的檢測結(jié)果存在一定的差異。此外，將用OIE-qPCR方法及4種商品化試劑盒檢測的CT值在30以上的14份樣品進(jìn)行相關(guān)性比對時，相關(guān)系數(shù)為0.503～0.952，進(jìn)一步表明當(dāng)樣品中的非洲豬瘟病毒核酸含量較低時，各試劑盒的檢測結(jié)果存在一定的差異。統(tǒng)計結(jié)果顯示，OIE-qPCR方法與4種商品化檢測試劑盒之間檢測結(jié)果的符合率為92.60%～99.03%（表5）。

3討論

非洲豬瘟最早于1921年在非洲肯尼亞被報告[5-6]，屬于重大動物疫病，豬一旦發(fā)病，死亡率可高達(dá)100%，給世界養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。但迄今為止，全球還沒有安全、有效的非洲豬瘟商品化疫苗和藥物，非洲豬瘟的防控主要依賴于嚴(yán)格的生物安全措施。

2018年8月我國首次報道非洲豬瘟疫情以來，經(jīng)過2年多的艱苦努力，我國非洲豬瘟防控工作取得了積極的成效，但是非洲豬瘟病毒已在我國定植，污染面較大，疫情點狀發(fā)生的態(tài)勢將在較長時期內(nèi)存在[7]。因此，迫切需要能夠在感染早期快速檢測出非洲豬瘟病毒的技術(shù)，及時發(fā)現(xiàn)非洲豬瘟病毒感染豬，及時撲滅疫情。我國農(nóng)業(yè)農(nóng)村部在2020年5月印發(fā)的2020年第二版《非洲豬瘟疫情應(yīng)急實施方案》中明確規(guī)定：具備良好生物安全防護(hù)水平的規(guī)模豬場，在出現(xiàn)非洲豬瘟疫情時，可以僅將發(fā)病豬舍作為疫點進(jìn)行處理;豬場在自檢時發(fā)現(xiàn)非洲豬瘟陽性豬，也只需要撲殺陽性豬及其同群豬，而對其余豬群在隔離觀察21 d無異常且檢測為陰性的情況下，可以就近屠宰或繼續(xù)飼養(yǎng)。這一政策的出臺和調(diào)整，為規(guī)模豬場及時篩查和發(fā)現(xiàn)非洲豬瘟陽性豬，精準(zhǔn)清除非洲豬瘟感染豬，保障豬群安全提供了政策保障，同時也對非洲豬瘟病毒檢測及篩查技術(shù)提出了更高的要求。

非洲豬瘟病毒常見的檢測技術(shù)包括檢測抗原的ELISA方法[8]、熒光抗體試驗[9]和試紙條檢測法[10]，以及檢測非洲豬瘟病毒核酸的PCR方法[11]、實時熒光PCR法[12-16]和等溫擴(kuò)增技術(shù)[17]等。2019年6月11日，中國動物疾病預(yù)防控制中心公布了通過專家評審的第二批非洲豬瘟現(xiàn)場快速檢測試劑名單，其中一共有34種試劑，全部為核酸檢測類，包括熒光定量PCR類28種和等溫擴(kuò)增類6種。但從實際應(yīng)用情況來看，熒光定量PCR檢測試劑盒應(yīng)用最為廣泛，但目前，對多種非洲豬瘟病毒熒光定量PCR檢測試劑盒的敏感性、特異性及穩(wěn)定性等尚缺乏較為系統(tǒng)的比較。

由于現(xiàn)有的非洲豬瘟病毒熒光定量PCR檢測試劑盒多數(shù)參照OIE推薦的以p72基因為靶標(biāo)的熒光定量PCR（OIE-qPCR）方法研制，所以我們以O(shè)IE-qPCR方法為參照，對臨床常用的4種商品化非洲豬瘟病毒核酸qPCR檢測試劑盒進(jìn)行評估。結(jié)果表明，OIE-qPCR方法與市面上使用較多的4種商品化非洲豬瘟病毒qPCR檢測試劑盒的符合率為92.60%～99.03%，在檢測臨床模擬強(qiáng)陽性樣品時，各試劑盒的檢測結(jié)果之間均具有良好的相關(guān)性;因此，在臨床檢測和診斷中，尤其是在檢測已明顯表現(xiàn)出非洲豬瘟臨床癥狀的病死豬樣品時，由于樣品中非洲豬瘟病毒核酸含量較高，所以幾種試劑盒均可以達(dá)到檢測要求。但是，在檢測非洲豬瘟病毒核酸含量較低的樣品（10～100 copies）時，OIE-qPCR方法與4種商品化試劑盒的檢測結(jié)果之間存在一定差異，僅進(jìn)口的TF-qPCR試劑盒能穩(wěn)定檢測到10 copies，進(jìn)口的ID-qPCR和國產(chǎn)的QD-qPCR以及OIE-qPCR的檢出范圍為10～102 copies，而另一種國產(chǎn)試劑盒LY-qPCR僅能檢測到102 copies。在6份檢測結(jié)果不一致的臨床模擬樣品中，進(jìn)口的TF-qPCR檢測出4份陽性樣品，ID-qPCR和LY-qPCR各檢測出3份陽性樣品，而QD-qPCR只檢測出1份陽性樣品;而且，各試劑盒檢出的陽性樣品之間，重合率非常低，僅有1份樣品同時被3種試劑盒檢測為陽性，另有2份樣品同時被2種試劑盒檢測為陽性，其他3份樣品均只有1種試劑盒檢測為陽性，表明在非洲豬瘟病毒核酸含量較低時，各試劑盒檢測的結(jié)果會出現(xiàn)較為明顯的差異。提示在臨床篩查時，一是盡量選擇敏感度高的試劑盒，二是當(dāng)樣品CT值在35或35以上時，以及在沒有CT值時，需要慎重判定結(jié)果，必要時可用不同的試劑盒重復(fù)檢測，或?qū)ωi群連續(xù)采樣監(jiān)測。

上述結(jié)果也提示，目前的非洲豬瘟病毒熒光定量PCR方法雖然敏感度較高、特異性強(qiáng)，但用于檢測拷貝量低的核酸樣品時（如未出現(xiàn)臨床癥狀的豬，或病毒感染早期的豬），還存在一定的局限。由于非洲豬瘟病毒在自然感染后的潛伏期為4～9 d，這也是早期診斷、早期精準(zhǔn)清除的關(guān)鍵時期，但由于在潛伏期內(nèi)，感染豬的排毒量通常比較低，因此，需要進(jìn)一步提高非洲豬瘟檢測試劑盒的敏感度，以便能夠盡早篩查出可能感染的豬，實現(xiàn)早期精準(zhǔn)清除。

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